崔振澤,徐 超,黃 燕**
(1.大連市兒童醫(yī)院 116000)
基于Th細胞平衡探討“宣降清”三法對RSV感染幼齡大鼠T-bet、GATA3表達的影響*
崔振澤1,徐 超1,黃 燕1**
(1.大連市兒童醫(yī)院 116000)
目的:觀察定喘湯“宣降清”三法對呼吸道合胞病毒(Respiratorysyncytical virus,RSV)感染幼齡大鼠肺組織內(nèi)T-bet、GATA3、和血清中IFN-γ、IL-4的表達的影響,并進一步闡明該方藥對調(diào)節(jié)Th1/Th2免疫平衡的作用機制。方法:選健康幼齡Wistar大鼠54只隨機分為6組,即正常組、RSV模型組、定喘湯組、分解劑組(包括宣、降、清三組),每組各9只。除正常組外,余各組用RSV(Long珠)病毒予大鼠滴鼻造模,滴鼻2h后各干預(yù)治療組分別予相應(yīng)的藥物灌胃,正常組和RSV模型組均以等體積的生理鹽水灌胃。采用Western Blot法檢測各組大鼠肺組織中T-bet和GATA3的蛋白表達水平,ELISA法檢測各組大鼠血清中INF-γ和IL-4細胞因子的含量。結(jié)果:1、定喘湯及各分解劑組均可不同程度的調(diào)節(jié)RSV感染后大鼠的一般狀態(tài)和降低RSV感染后的肺指數(shù)(P<0.05);2、RSV模型組和各干預(yù)組大鼠較正常組比較肺組織中T-bet蛋白表達均降低、GATA3蛋白表達均升高且具有顯著性差異(P<0.05),定喘湯及宣法組與RSV模型組比較均可上調(diào)T-bet蛋白表達及下調(diào)GATA3蛋白表達且具有顯著性差異(P<0.05);3、RSV模型組大鼠血清中INF-γ含量明顯降低、IL-4含量升高與正常組比較均具有顯著性差異(P<0.05),與模型組比較,定喘湯組可上調(diào)INF-γ含量、各干預(yù)組藥物均可下調(diào)IL-4含量且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)論:定喘湯“宣降清”三法對于RSV感染幼齡大鼠后體內(nèi)T-bet及INF-γ細胞因子具有明顯升高作用,而對GATA3及IL-4細胞因子則有明顯抑制效果,其具有調(diào)節(jié)Th1/Th2細胞免疫平衡能力,為定喘湯防治RSV感染有效性的重要機制之一。
宣降清 RSV 大鼠 Th1/Th2
呼吸道合胞病毒(Respiratorysyncytical virus,RSV)流行廣泛,是引起嬰幼兒嚴(yán)重下呼吸道感染(如細支氣管炎,支氣管炎或肺炎)的主要原因,因而被世界公認為重要的感染性致病原[1]。越來越多的研究表明[2-3],Th1/Th2細胞功能和比例失衡是RSV感染最重要的免疫異常,是RSV感染發(fā)病機制中的重要環(huán)節(jié)。而T盒轉(zhuǎn)錄因子(T-bet)和鋅指蛋白3(GATA-3)又分別是Th1和Th2細胞特異的轉(zhuǎn)錄因子,在各自Th細胞分化過程中中起重要作用。因此有決定Th1/h2細胞分化的特異轉(zhuǎn)錄因子T-bet和GATA-3已成為近年來研究的熱點,且探討T-bet/GATA-3平衡對于明確RSV感染的發(fā)病機制及探索在此環(huán)節(jié)上進行的干預(yù)治療具有重要意義。
而針對RSV感染所致喘息,中醫(yī)認為肺之宣發(fā)與肅降失衡,肺氣閉塞不通為喘息之主因,西醫(yī)學(xué)者則公認Th1/Th2功能失衡為其主要病機。且前期研究已證實[4]定喘湯對RSV感染大鼠的細胞免疫具有良性調(diào)節(jié)作用,那么該方對RSV感染后機體的Th1/Th2免疫失衡是否有影響作用值得思考。對此,本文就基于定喘湯獨特的“宣降清”三法理論為基礎(chǔ)來探討RSV感染后引起的Th1/Th2免疫失衡機制,以期為探求中西醫(yī)相通的發(fā)病機制及治療方法提供有力依據(jù)。
RSV Long株,來源于中國預(yù)防醫(yī)學(xué)科學(xué)院病毒所毒種室,凍存于-80℃冰箱備用。測定大鼠RSV病毒半數(shù)致死量LD50為10-2/ml。
健康3周齡左右的wistar大鼠54只,雌雄各半,SPF級,體重均為(30±10)g,由遼寧本溪長生生物技術(shù)有限公司提供。
定喘湯購于遼寧中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院中藥局。定喘湯組由麻黃 9 g,杏仁 9 g,半夏 9 g,蘇子 6 g,黃芩12 g,桑白皮9 g,白果9 g,款冬花9 g,甘草3 g組成;其中麻黃9 g,白果9 g組成宣法組;杏仁9 g,半夏9 g,蘇子6 g,款冬花9 g組成降法組;黃芩12 g,桑白皮9 g組成清法組。將以上各組藥物均按照傳統(tǒng)方法水煎2次混合后,制成含生藥2 g·ml-1的藥液備用。
電泳儀(DYY-10C);全外排Ⅱ級生物安全柜(SG403TXCE,美國Baker公司);MicroChemi化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(MicroChemi4.2);SDS-PAGE凝膠試劑盒(碧云天);T-bet、GATA3抗體(由北京博奧森生物技術(shù)有限公司);INF-γ、IL-4試劑盒(美國Ramp;D Systems公司)。
依據(jù)隨機數(shù)字表法,將wistar大鼠均分為6組,即正常組、RSV模型組、定喘湯組、宣法組、降法組及清法組,每組9只。
采用病毒液滴鼻法進行造模,即除正常組外,其余各組在乙醚麻醉下經(jīng)鼻腔接種RSV Long株病毒液,0.1 ml/只,正常組在同等條件下接種等量不含病毒的生理鹽水,每日1次,連續(xù)接種3天。
各組在RSV Long株病毒液滴鼻2 h后開始灌胃,各干預(yù)組給藥劑量相當(dāng)于60 kg成人臨床等效量,正常組與RSV模型組均予等體積的生理鹽水灌胃,1次/日。所有大鼠均在同一條件下飼養(yǎng),正常飲食,自由飲水。(人與大鼠等效劑量公式為:大鼠的劑量=6.3X mg·Kg-1)
各組大鼠分別于感染第7天取血后處死,將血置于血清分離管中,放置2小時,3000 r·min-1離心15 min,收集血清,后置于4℃度冰箱內(nèi)保存,待進行INF-γ和IL-4含量的ELISA檢測。無菌條件下取鼠肺組織,用于肺指數(shù)測定、SABC免疫組織化學(xué)法檢測及Western blotting檢測。
2.5.1 肺指數(shù)測定
稱各組大鼠肺臟重量,計算肺指數(shù)。肺指數(shù)=肺臟重量(g)/體重(g)×100%。
2.5.2 Western blotting檢測
取出凍存的肺組織制備勻漿,進行總蛋白提取,并測定蛋白濃度。取40-60 μg的蛋白樣品于12%SDS-PAGE凝膠中進行電泳,待目的蛋白接近凝膠底部時(以蛋白質(zhì)分子量Marker確定T-bet和GATA3的所在位置)停止電泳,4℃、120 V恒壓電轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,再加入抗T-bet、GATA3(1:1000)抗體,4℃封閉過夜,洗膜后,加入辣根過氧化物酶標(biāo)記的Ⅱ抗(1∶1000),室溫封閉1 h后發(fā)光顯影,凝膠成像系統(tǒng)照相。實驗結(jié)果采用Image J軟件分析,掃描灰度值,T-bet和GATA3的蛋白水平通過其Western blotting曝光條帶亮度與GAPDH相應(yīng)條帶亮度比值來確定。
2.5.3 SABC免疫組織化學(xué)法檢測
切片脫蠟至水,3%H2O2,室溫10 min滅活內(nèi)源性酶,水洗3次,每次5 min。加入復(fù)合消化液修復(fù)抗原20 min,滴加5%BSA封閉液,室溫放置20 min。滴加兔抗鼠TSLP抗體(1∶100倍稀釋),濕盒內(nèi)4℃過夜,每一批染色均設(shè)陰性對照,PBS代替一抗作為陰性對照。次日取出濕盒至室溫,PBS清洗3次,每次2 min。滴加生物素化山羊抗兔IgG,37℃放置20 min,PBS清洗3次,每次2min。滴加試劑SABC,37℃放置20 min,PBS清洗3次,每次5 min。DAB室溫顯色10 min,純凈水洗滌。脫水、透明、中性樹膠封片。用光學(xué)顯微鏡觀察,每張切片任選5個視野(×200),采集圖像后用圖像分析系統(tǒng)對結(jié)果進行半定量分析。陽性結(jié)果判定:以病變部位細胞上出現(xiàn)棕黃色顆粒為陽性表達,測定肺組織中陽性細胞的積分光密度值(IOD),以均值作為該樣本TSLP的相對表達,IOD值越大,說明其表達越多。
2.5.4 ELISA檢測
具體操作步驟嚴(yán)格按照試劑盒說明書操作。
采用SPSS17.0統(tǒng)計軟件,數(shù)據(jù)以xˉ±s來表示,采用單因素方差分析對各組進行比較分析,組間比較均選用LSD法,校正法選用Bonferroni法,P<0.05差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
實驗過程中,正常組大鼠精神狀態(tài)均保持良好,反應(yīng)靈活,行動敏捷,毛發(fā)潔白有光澤,活動、飲食、飲水、呼吸頻率均正常,體重逐漸增加;RSV模型組大鼠較正常組比較,反應(yīng)遲鈍,精神萎靡,行動緩慢,呼吸頻率加快,飲水、食量嚴(yán)重減少,體重嚴(yán)重減輕;定喘湯組大鼠較模型組比較,毛色潤澤,反應(yīng)靈活,呼吸較平穩(wěn),飲食、飲水略減少,體重接近正常;宣、降、清組與定喘湯組比較,分別有不同程度的精神狀態(tài)不佳,毛色失去光澤,倦怠少動,飲食、飲水量減少,體重減輕。
于實驗第7天(從第0天開始)測定正常組、RVS模型組及各藥物干預(yù)組大鼠肺指數(shù),變化情況見表1。
結(jié)果顯示,與正常組比較,RSV模型組及其余各組大鼠的肺指數(shù)均有明顯增高且具有顯著性差異(P<0.05);與RSV模型組比較,各干預(yù)組大鼠肺指數(shù)均有不同程度的降低,具有顯著性差異(P<0.05);與定喘湯比較,降法和清法組大鼠的肺指數(shù)增高有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
于實驗第7天(從第0天開始)取材,采用WB法測定正常組、RVS模型組及各藥物干預(yù)組大鼠肺組織的T-bet、GATA3蛋白表達。檢測的T-bet為聚偏二氟乙烯(polyvinylidene fluoride,PVDF)膜在相應(yīng)分子量區(qū)域(59 KDa)一條長方形抗原條帶,PVDF膜在相應(yīng)分子量區(qū)域(49 KDa)一條長方形抗原條帶即為所檢測的GATA3組織蛋白條帶,具體情況見圖1及表2。
表1 各組大鼠肺指數(shù)測定結(jié)果
圖1 各組大鼠肺組織T-bet、GATA3蛋白表達情況
表2 各組間肺組織WB檢測T-bet、GATA3的蛋白含量結(jié)果 (±s)
表2 各組間肺組織WB檢測T-bet、GATA3的蛋白含量結(jié)果 (±s)
注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,▼P<0.05;與定喘湯組比較,ΔP<0.05
組別正常組RSV模型組定喘湯宣法組降法組清法組例數(shù)9 9 9 9 9 9 T-bet 1.17±0.08 0.32±0.03*0.86±0.07*▼0.44±0.04*▼Δ 0.34±0.04*Δ 0.33±0.03*Δ GATA3 1.4±0.03 2.3±0.04*1.84±0.05*▼2.05±0.08*▼Δ 2.27±0.04*Δ 2.28±0.03*Δ
蛋白組學(xué)層面結(jié)果顯示,與正常組比較,RSV模型組與各干預(yù)組大鼠肺組織中T-bet蛋白表達量均降低且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),GATA3蛋白表達量均升高且具有顯著性差異(P<0.05);與RSV模型組比較,定喘湯組及宣法組均可上調(diào)T-bet蛋白表達量及下調(diào)GATA3的蛋白表達量(P<0.05);與定喘湯組比較,各分解劑組的T-bet蛋白表達量均降低且具有顯著性差異(P<0.05),GATA3蛋白表達量均升高且具有顯著性差異(P<0.05)。
圖2 各組大鼠肺組織T-bet表達情況(免疫組化X200)
圖3 各組大鼠肺組織GATA3表達情況(免疫組化X200)
于實驗第7天(從第0天開始)取材,采用免疫組化法測定正常組、RVS模型組及各藥物干預(yù)組大鼠肺組織的T-bet、GATA3表達量。正常組大鼠T-bet陽性表達呈棕色細顆粒狀,定位于肺間質(zhì)肺泡璧內(nèi)大部分細胞上,RSV模型組T-bet肺間質(zhì)基本不著色,其余各治療組均部分著色。正常組大鼠肺組織GATA3在肺間質(zhì)肺泡璧細胞上基本不著色,RSV模型組大鼠GATA3肺間質(zhì)大部分細胞著色,其余各治療組均部分著色。各組免疫組化法測定T-bet表達見圖2,GATA3表達見圖3,兩指標(biāo)分析見表3。
組織細胞層面結(jié)果顯示,與正常組比較,RSV模型組與各干預(yù)組大鼠肺組織中T-bet表達量均降低且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),GATA3表達量均升高且具有顯著性差異(P<0.05);與RSV模型組比較,定喘湯組及宣法組均可上調(diào)T-bet表達量且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),定喘湯組及各分解劑組均可下調(diào)GATA3表達量且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與定喘湯組比較,各分解劑組的T-bet表達量均降低且具有顯著性差異(P<0.05),GATA3蛋白表達量均升高且具有顯著性差異(P<0.05)。
于實驗第7天(從第0天開始)取材測定正常組、RVS模型組及各藥物干預(yù)組大鼠血清中的INF-γ、IL-4細胞因子含量,具體情況見下表:
與正常組比較,RSV模型組大鼠血清中INF-γ含量明顯降低且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),IL-4含量顯著升高且具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與RSV模型組比較,定喘湯組可上調(diào)INF-γ含量(P<0.05),各干預(yù)組藥物均可下調(diào)IL-4含量(P<0.05);與定喘湯組比較,宣、降、清三組大鼠血清中兩種指標(biāo)含量變化不明顯,無明顯差異(P>0.05)。
RSV感染所致的毛細支氣管炎和(或)肺炎屬中醫(yī)學(xué)“肺炎喘嗽”,其病因主要為外邪入侵肺衛(wèi),致使肺失肅降,閉郁不宣,化熱爍津為痰,肺氣又不通,致痰、熱、氣三者相互阻滯,則出現(xiàn)喘咳、呼吸急促、鼻煽、發(fā)熱、痰黃稠等癥狀。針對此癥候群,源于《攝生眾妙方》的定喘湯運用“方從法出、法隨證立”的理論依據(jù),對于肺氣不通、郁而化熱,以致痰熱互結(jié)、肺失宣降引起的喘息,功效甚佳。定喘湯君以宣法,臣以降法,佐以清法,融三法于一體,宣肺、降肺、清肺相輔相成,共湊定喘之功。而對于RSV感染后引起的喘息,肺之宣發(fā)與肅降失衡、免疫應(yīng)答的Th1與Th2失衡定有著不可言表的密切關(guān)系。
生理狀態(tài)下,機體內(nèi)T細胞(Th0、Th1、Th2)及所分泌的各類細胞因子以網(wǎng)絡(luò)形式存在并發(fā)揮作用,如Th0細胞按照一定比例向Th1和Th2分化,細胞因子間或相互協(xié)同、促進,或相互拮抗,分別行使各自不同的生理功能,來調(diào)節(jié)正常的免疫應(yīng)答,以維持機體在生理或病理水平上的平衡[5]。機體感染病毒后,其體內(nèi)T細胞及所分泌的細胞因子形成的網(wǎng)絡(luò)平衡即被打破,出現(xiàn)多種形式的改變,如Th1向Th2漂移、Th1向Th0漂移等反應(yīng)[6]。其中,T-bet細胞因子為Th1細胞系特異轉(zhuǎn)錄因子,其不僅對Th1細胞的發(fā)育有良好的促進作用,同時又可抑制Th2細胞因子的合成;它在Th1細胞活化過程中可激活I(lǐng)FN-γ的基因轉(zhuǎn)錄,而IFN-γ又可以逆向上調(diào)T-bet的表達水平,形成自分泌反饋環(huán),來進一步誘導(dǎo)Th0向Th1細胞分化;甚至T-bet都可以將已分化的Th2型細胞逆轉(zhuǎn)為Th1型細胞,同時可產(chǎn)生大量IFN-γ細胞因子[7],進而影響Th系統(tǒng)向Th1優(yōu)勢發(fā)展。而對于Th2反應(yīng),雖然多種細胞因子均可激活Th2系統(tǒng),但GATA-3卻是Th2細胞特異性轉(zhuǎn)錄因子,其不僅Th2細胞極化過程中起關(guān)鍵作用,還是Th2型細胞因子轉(zhuǎn)錄所必需的,主要是通過白細胞介素4(IL-4)基因啟動子上的兩個GATA-3結(jié)合位點直接激活I(lǐng)L-4,而激活I(lǐng)L-4又促進了Th2細胞的增殖及分化,參與所有Th2型細胞因子的轉(zhuǎn)錄[8]。由此可見,體現(xiàn)機體免疫狀態(tài)的Th1/Th2極化與T-bet、GATA-3的表達密切相關(guān),即T-bet、GATA-3決定了Th1/Th2平衡的穩(wěn)定性,因此探討T-bet/GATA-3的平衡對于明確RSV感染的發(fā)病機制及在此環(huán)節(jié)上的干預(yù)治療具有重要意義。本次實驗結(jié)果顯示:RSV感染后的幼齡大鼠體內(nèi)T-bet及IFN-γ水平明顯降低,而GATA-3及IL-4水平則顯著增高。一方面提示這幾種細胞因子可能參與了RSV發(fā)病過程中機體的炎癥反應(yīng),指標(biāo)含量的變化可進一步證明參與了Th1與Th2之間的轉(zhuǎn)化過程;另一方面提示T-bet與GATA-3轉(zhuǎn)錄因子反向的失衡表達很可能是通過調(diào)節(jié)細胞因子IFN-γ、IL-4的失衡表達,引起以IFN-γ為主的Th1型細胞因子分泌減少,和以IL-4為主的Th2型細胞因子分泌亢進,進而介導(dǎo)炎性細胞的滲出與趨化,參與炎癥病理性損害,激發(fā)了機體的免疫應(yīng)答系統(tǒng),引起RSV感染急性期的免疫功能紊亂。
表3 各組間肺組織免疫組化檢測T-bet、GATA3的積分光密度值測定結(jié)果(±s)
表3 各組間肺組織免疫組化檢測T-bet、GATA3的積分光密度值測定結(jié)果(±s)
注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,▼P<0.05;與定喘湯組比較,ΔP<0.05
組別正常組RSV模型組定喘湯宣法組降法組清法組例數(shù)9 9 9 9 9 9 T-bet 53.76±0.44 19.92±2.84*43.5±2.3*▼27.39±1.74*▼Δ 21.14±1.53*Δ 21.28±1.14*Δ GATA3 57.99±0.42 92.78±1.46*64.59±2.2*▼82.34±1.34*▼Δ 84.92±1.6*▼Δ 82.62±1.2*▼Δ
表4 定喘湯對大鼠血清INF-γ、IL-4細胞因子含量的影響 (±s,n=9)
表4 定喘湯對大鼠血清INF-γ、IL-4細胞因子含量的影響 (±s,n=9)
注:與正常組比較,*P<0.05;與模型組比較,▼P<0.05;與定喘湯組比較,ΔP<0.05
組別正常組RSV模型組定喘湯宣法組降法組清法組例數(shù)9 9 9 9 9 9 INF-γ 16.21±4.67 12.6±2.54*16.04±3.04▼13.35±2.00 12.93±2.67 12.81±2.37 IL-4 17.17±2.06 26.01±6.11*18.2±4.08▼18.77±3.81▼18.74±4.02▼19.45±6.35▼
針對RSV病毒導(dǎo)致的Th1/Th2細胞功能的異常或失衡,本研究運用定喘湯及宣、降、清分解劑對RSV感染后的幼齡大鼠進行了干預(yù),結(jié)果顯示,各干預(yù)組均不同程度的上調(diào)了T-bet、IFN-γ表達量及下調(diào)了GATA-3、IL-4細胞因子的含量,說明定喘湯及各宣、降、清分解劑均可不同程度的調(diào)節(jié)Th1/Th2的免疫失衡。尤其對于定喘湯組及宣法組而言,調(diào)節(jié)Th1/Th2細胞功能失衡的效果更加顯著(P<0.05)。宣法由麻黃和白果組成,其中麻黃辛溫,宣肺平喘;白果甘澀,斂肺定喘;兩藥合用,收散自如,相得益彰,即宣法以宣散與收斂并用來調(diào)節(jié)Th1/Th2的失衡。而集“宣、降、清”三法為一體的定喘湯對Th1/Th2的異常漂移具有更優(yōu)的調(diào)節(jié)作用,白果與麻黃收散發(fā)揮,合為君藥;杏仁降肺以止咳、款冬花溫肺化痰以止咳、半夏降逆化痰以止嘔、蘇子降氣以平喘,四藥共用為臣藥;黃芩、桑白皮皆性苦寒,清熱瀉肺以平喘,解內(nèi)蘊之痰熱,二者合為佐藥;甘草調(diào)和諸藥,用以使藥;以上諸藥合用,使定喘湯的宣發(fā)與清降之法在調(diào)節(jié)RSV感染后機體Th1/Th2的免疫失衡方面更具優(yōu)勢。
綜上所述,RSV感染后的免疫病理機制主要是Th1/Th2細胞功能的異常或失衡,其也可能是RSV感染日后演變?yōu)橄闹匾獧C制之一。而定喘湯的“宣、降、清”三法在調(diào)節(jié)Th1/Th2的免疫失衡方面,可以逆轉(zhuǎn)機體向Th2系統(tǒng)過度漂移狀態(tài),最終達到Th1/Th2細胞的平衡,從而達到治療RSV感染后喘息性疾病的目的。
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Study on Effect of“Xuan-Jiang-Qing”Theory on Expression of T-bet and GATA3 among Young Rats Infected with RSV Based on Th Cell Balance
Cui Zhenze,Xu Chao,Huang Yan
(Dalian Children’s Hospital,Dalian 116000,China)
This study was aimed to observe the method of“Xuan-Jiang-Qing”of Ding-Chuan(DC)decoction on the expression of T-bet and GATA3 of lung tissues,IFN-γ and IL-4 in serum of young rats infected with respiratory syncytial virus(RSV),in order to further explore the mechanism of Th1/Th2 immune balance.A total of 54 ealthy young Wistar rats were randomly divided into 6 groups,which were the normal group,RSV model group,DC decoction group,ascending(Xuan)therapy group,descending(Jiang)therapy group,pyretic clearing(Qing)therapy group,with 9 rats in each group.Except the normal group,rats in other groups were with RSV(Long bead)virus to establish the animal model.Two hours after intranasal medication,intragastric administration of corresponding medication was given to each intervention group.And equal volume of normal saline was given to the normal group and the RSV model group.Levels of T-bet and GATA3 protein in lung tissues were detected by Western blotting.Levels of INF-γ and IL-4 cytokines in serum were detected by ELISA.The results showed that DC decoction and each decomposing agent group can adjust the general condition of RSV infection and reduce the lung index after RSV infection(P<0.05).Compared with the normal group,the expression of T-bet protein in lung tissues was decreased and the expression of GATA3 protein was significantly higher in the RSV model group and each intervention group with significant difference(P<0.05).The expression of T-bet protein was up-regulated and the expression of GATA3 protein was down-regulated in DC decoction and ascending(Xuan)therapy group compared to the RSV model group with significant difference(P<0.05).Compared with the normal group,the content of INF-γ in serum of RSV model group was significantly decreased,and the content of IL-4 was increased with significant difference(P<0.05).Compared with the model group,DC decoction group can increase the content of INF-γ,and each intervention group can reduce the IL-4 content with statistical significance(P<0.05).It was concluded that the method of“Xuan-Jiang-Qing”of DC decoction can obviously increase T-bet and INF-γ cytokines,and inhibit GATA3 and IL-4 cytokines among RSV infected young rats.It can regulate Th1/Th2 cell immune balance.It is one of the important effectiveness mechanisms to prevent and treat RSV infection.
Xuan-Jiang-Qing,RSV,rat,Th1/Th2
10.11842/wst.2017.08.008
R725.6
A
2017-05-11
修回日期:2017-07-20
* 國家自然科學(xué)基金(No.81473726):定喘湯“宣降清三法”干預(yù)合胞病毒感染T-bet哮喘易感基因及代謝組學(xué)研究,負責(zé)人:崔振澤。遼寧省自然科學(xué)基金(2014020173):呼吸道合胞病毒感染后T-bet基因多態(tài)性及TSLP表達的研究,負責(zé)人:崔振澤。
** 通訊作者:黃燕(1963—),女(漢族),遼寧大連人,大連市兒童醫(yī)院呼吸科主任,碩士研究生導(dǎo)師,主要從事變態(tài)反應(yīng)性疾病及小兒呼吸系統(tǒng)疾病研究工作。
(責(zé)任編輯:韓覆蔓,責(zé)任譯審:王 晶)