張程斐,侯毅,劉銅華,孫文,吳麗麗,秦靈靈
甲炎康泰對(duì)自身免疫性甲狀腺炎模型大鼠Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移的影響*
張程斐1,侯毅1,劉銅華2**,孫文3,吳麗麗4,秦靈靈5
(1.北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院北京100078;2.北京中醫(yī)藥大學(xué)研究生院北京100029;3.北京中醫(yī)藥大學(xué)教育部中醫(yī)養(yǎng)生學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室北京100029;4.北京中醫(yī)藥大學(xué)中醫(yī)養(yǎng)生學(xué)研究所北京100029;5.北京中醫(yī)藥大學(xué)科技處北京100029)
目的:探討甲炎康泰對(duì)自身免疫性甲狀腺炎(AIT)大鼠Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移作用機(jī)制。方法:采用Lewis大鼠建立AIT大鼠40只,6周后隨機(jī)分為模型組、甲炎康泰低、中、高劑量組,每組10只,每天分別按去離子水、0.708、1.417、2.834 g·kg-1劑量連續(xù)灌胃8周。檢測血清TgAb、TPOAb;Th1、Th2細(xì)胞分布比例及Th1/ Th2比率;檢測血漿中IL-4、IL-5、IFN-γ、TNF-α和IL-1α含量;HE染色觀察甲狀腺組織的病理;免疫組織化學(xué)檢測甲狀腺IFN-γ、IL-4蛋白表達(dá)。結(jié)果:甲炎康泰高劑量組能夠下降A(chǔ)IT大鼠TPOAb、TGAb水平,降低甲狀腺炎發(fā)生率、Th1與Th2細(xì)胞分布比例以及Th1/Th2比率;降低血漿IFN-γ、TNF-α、IL-1α、IL-4、IL-5含量;降低甲狀腺IFN-γ、IL-4蛋白表達(dá)。結(jié)論:甲炎康泰具有降低AIT大鼠甲狀腺自身抗體的作用,可能與通過調(diào)節(jié)細(xì)胞因子水平和Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移有關(guān)。
甲炎康泰自身免疫性甲狀腺炎大鼠Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移
自身免疫性甲狀腺疾病(Autoimmune Thyroid Dis?ease,AITD)是由自身免疫功能紊亂,引起特異性甲狀腺自身抗體的產(chǎn)生和甲狀腺內(nèi)淋巴細(xì)胞的浸潤,以甲狀腺結(jié)構(gòu)破壞和功能減退為主要特征的器官特異性自身免疫疾病。在AITD發(fā)病的作用機(jī)制中,細(xì)胞因子發(fā)揮了非常重要的作用[1]。正常狀態(tài)下Th1與Th2型細(xì)胞所分泌的細(xì)胞因子保持動(dòng)態(tài)平衡,若其中任何一個(gè)因子處于劣勢或優(yōu)勢狀態(tài),此平衡將偏移而導(dǎo)致自身免疫性疾病的產(chǎn)生。研究顯示在AITD的發(fā)病機(jī)制中,Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移顯現(xiàn)了十分關(guān)鍵的作用[2]。本研究將建立自身免疫性甲狀腺炎大鼠為模型,觀察中藥復(fù)方甲炎康泰對(duì)Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移的作用機(jī)制。
1.1 主要儀器試藥
CM1900恒冷冰凍切片機(jī)(北京普瑞賽司儀器有限公司);Thermo labsystem MK3酶標(biāo)儀(美國Thermo公司);Avantij-25I型低溫真空高速離心機(jī)(美國Beck?man公司);M1600掃描儀(深圳清華紫光公司);激光共聚焦顯微鏡(德國GmbH公司);OLYMPUS BH-2光鏡(日本奧林巴斯公司);PL202-S電子天平(瑞士梅特勒-托利多儀器有限公司);蒸汽消毒箱(上海申安器械廠);FD53型高溫干燥箱(德國Binder公司);BD FACS CantoTMⅡ流式細(xì)胞儀(美國BD公司);其他手術(shù)相關(guān)器械。
碘化鈉溶液(瑪雅試劑有限公司產(chǎn)品,批號(hào):MA?YA-CR-2831),豬甲狀腺球蛋白(美國Sigma公司,批號(hào):018K7012V),弗氏不完全佐劑(美國Sigma公司,批號(hào):SLBL9742V),弗氏完全佐劑(美國Sigma公司,批號(hào):SLBM2184V),TPO-Ab Elisa kit(武漢華美生物工程有限公司,批號(hào):C3968470338),TGAb Elisa kit(EX?PANDBIO,批號(hào):201605);二甲苯、無水乙醇(北京化工廠);伊紅(美國Sigma公司),免疫組化一抗IFN-r(美國Sigma公司,批號(hào):R02332);免疫組化一抗IL-4(美國Sigma公司,批號(hào):ab9811),Mayer'蘇木素染液(北京索萊寶科技有限公司,批號(hào):20161213),羊血清工作液(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,批號(hào):WK161525),檸檬酸(北京化工廠,批號(hào):20130123),檸檬酸鈉(上海麥克林生化科技有限公司,批號(hào):C10046927),DAB顯色試劑盒(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,批號(hào):K162418A),超敏二步免疫組化檢測試劑(北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,批號(hào):K166616J),大鼠外周淋巴細(xì)胞分離液(北京索萊寶科技有限公司,批號(hào):20151017),4%多聚甲醛溶液(北京索萊寶科技有限公司,批號(hào):SL26171504),紅細(xì)胞裂解液(德國Miltenyi Biotec,批號(hào):130-094-183),Antirat CD3 FITC(美國eBioscience公司,批號(hào):11-0030-82),Rat IFN-GMA PE(批號(hào):559499)、Rat IL-4 PE(批號(hào):555082)及MS IgG1 KPA ITCL PE(批號(hào):554680),均購自美國BD公司。Rat IFN-γ(批號(hào):A311101)、TNF-α(批號(hào):A311129)、IL-1α(批號(hào):A311105)、IL-4(批號(hào):A311121)及IL-5(批號(hào):B311185)均購自北京曠博生物技術(shù)股份有限公司。
碘化鈉溶液:將64 mg碘化鈉溶于100 mL水溶液中,配制出含量為0.064%的溶液。現(xiàn)用現(xiàn)配,注意避光。乳化劑的配制:首先用PBS配制濃度為0.1%的豬甲狀腺球蛋白(Porcine Throglobulin,PTg),然后按等容積比例與弗氏完全佐劑(Complete Freund's Adjuvant,CFA)混合,研磨成乳劑。Tg終濃度為0.05%,即100 ug Tg/0.2 mL乳化劑。弗氏不完全佐劑(Incomplete Freund's Adjuvant,IFA)配制方法同CFA。
1.2 實(shí)驗(yàn)藥物
甲炎康泰復(fù)方顆粒劑(購于北京中醫(yī)藥大學(xué)東方醫(yī)院)水溶液:柴胡、郁金、浙貝母、玄參、夏枯草、穿山龍、烏梅、山慈菇、黃芪顆粒劑,加入雙蒸水制備成100 mL水溶液,置4℃冰箱備用。甲炎康泰已申請(qǐng)專利(專利號(hào):CN106421633A)。
1.3 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
SPF級(jí)Lewis大鼠50只,4周齡,體重80±10 g,雌性。購于北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司,許可證號(hào):SYXK(京)2015-0015。
2.1 分組與造模
按文獻(xiàn)方法[3]制作AIT模型:隨機(jī)抽取10只大鼠為正常對(duì)照組,其余均造模。自實(shí)驗(yàn)第1周起,造模鼠自由飲用0.064%NaI,非造模鼠自由飲用雙蒸水。第3周除非造模鼠外,各組造模鼠初次免疫:弗氏完全佐劑甲狀腺球蛋白乳劑在大鼠足墊、背部皮下、頸部皮下分別多點(diǎn)注射0.2 mL/只/次,共注射2次,中間間隔2天。加強(qiáng)免疫:第4-8周分別在大鼠足墊、背部皮下、頸部皮下分別多點(diǎn)注射0.2 mL/只/次。造模是否成功驗(yàn)證方法:眶靜脈取血,酶聯(lián)免疫吸附法(Elisa)檢測外周血清中TPOAb、TGAb抗體水平。
2.2 給藥方法
造模成功后,各組給藥量參照人與動(dòng)物之間體表面積比例(劑量換算用)表折算[4],甲炎康泰低、中、高劑量組每天分別給予大鼠甲炎康泰顆粒劑0.708、1.417、2.834 g·kg-1灌胃,正常組與模型組大鼠予每天以同體積去離子水1 mL·100 g-1。連續(xù)給藥8周。
2.3 指標(biāo)及檢測方法
2.3.1 流式樣本處理及實(shí)驗(yàn)方法
流式細(xì)胞術(shù)檢測Th1細(xì)胞、Th2細(xì)胞的分布比例及Th1/Th2比率。治療結(jié)束后,1%戊巴比妥鈉麻醉,腹主動(dòng)脈取血5 mL,置于肝素鈉采血管中,分離血漿待測,在采血管中加入紅細(xì)胞裂解液,渦旋孵育、洗滌、重懸細(xì)胞,調(diào)至每個(gè)樣本包含5×105單個(gè)核細(xì)胞/mL。
檢測Th1、Th2細(xì)胞時(shí),每組細(xì)胞樣品中加入配好的刺激劑(含佛波酯、離子酶素、高爾基體阻斷劑、布雷菲德菌素A的1640培養(yǎng)液),37℃恒溫箱內(nèi)培養(yǎng)刺激5 h,加入anti-rat CD3 FITC、anti-rat CD4 FITC進(jìn)行細(xì)胞表面染色,破膜固定后加入Rat IFN-GMA PE、Rat IL-4 PE或同型對(duì)照MS IgG1 KPA ITCL PE進(jìn)行胞內(nèi)染色,37℃孵育30 min。利用流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測。
2.3.2 Th1、Th2細(xì)胞相關(guān)細(xì)胞因子的檢測
采用流式高通量多因子檢測技術(shù)檢測血漿中Th1和Th2細(xì)胞相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)。參考Fan[5]報(bào)道的方法,運(yùn)用Aimplex大鼠單因子檢測試劑盒Rat IFN-γ、TNF-α、IL-1α、IL-4及IL-5均購自北京曠博生物技術(shù)股份有限公司檢測血漿中Th1和Th2細(xì)胞相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)情況,用流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測。
2.3.3 大鼠甲狀腺病理觀察
使用半定量形態(tài)學(xué)分析大鼠發(fā)生AIT的陽性率。采用奧林巴斯DP2-BSW顯微照相系統(tǒng),400倍光鏡下每張HE染色切片隨機(jī)照取5個(gè)視野,應(yīng)用Image-Pro Plus 6.0軟件測量整個(gè)截面與截面內(nèi)炎細(xì)胞的面積。自身免疫性甲狀腺炎的病理診斷標(biāo)準(zhǔn):甲狀腺組織內(nèi)炎細(xì)胞與整個(gè)組織的面積比值>2%[6]即為陽性,之后計(jì)算各組大鼠發(fā)生AIT的陽性率。
2.3.4 免疫組織化學(xué)分析
染色強(qiáng)度分析:每例切片隨機(jī)取10個(gè)視野,400倍光鏡下采集圖像。運(yùn)用Image-Pro Plus 6.0,Media Cy?bernetics系統(tǒng)進(jìn)行吸光度檢測,分別分析IL-4、IFN-γ的積分光密度(IOD)平均值,進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理。
2.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS 20.0統(tǒng)計(jì)軟件處理數(shù)據(jù),數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(xˉ±s)表示,組間比較采用方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
3.1 外周血中TPOAb、TGAb濃度測定
由表1可知:與正常組比較,模型組大鼠TPOAb、TGAb濃度顯著升高(P<0.01);與模型組比較,甲炎康泰高劑量組大鼠TPOAb明顯下降(P<0.05)。與模型組比較,甲炎康泰高劑量組大鼠TGAb顯著下降(P<0.01)。
3.2 各組大鼠甲狀腺組織的病理變化
正常組可見大量完整甲狀腺濾泡,大小適中,腔內(nèi)紅色膠質(zhì)充盈均勻,濾泡上皮細(xì)胞完整;模型組間質(zhì)和濾泡壁呈炎性細(xì)胞浸潤,大量濾泡腔變小以及被破壞,腔內(nèi)膠質(zhì)不均或減少,濾胞壁變薄、破壞;治療組間質(zhì)內(nèi)淋巴細(xì)胞浸潤較模型組明顯減少,濾泡上皮細(xì)胞較為完整,膠質(zhì)含量略減少,但較模型組輕微,濾泡結(jié)構(gòu)完整。高劑量組略好于中、低劑量組(圖1)。
表1 各組大鼠血清中TPOAb、TGAb含量比較(xˉ±s,n=10)
正常組、模型組、甲炎康泰低、中、高劑量組大鼠自身免疫性甲狀腺炎的發(fā)生率分別為0,100%,20%,20%,10%。與正常組比較,模型組甲狀腺炎的發(fā)生率明顯升高(P<0.01);與模型組比較,治療組甲狀腺炎的發(fā)生率明顯降低(P<0.01),但三組間比較無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(表2)。
3.3 Th1細(xì)胞、Th2細(xì)胞的分布比例及Th1/Th2比率變化
由表3可知,與正常組比較,模型組Th1和Th2細(xì)胞分布比例以及Th1/Th2比率顯著上升(P<0.01);與模型組比較,甲炎康泰高劑量組Th1細(xì)胞分布比例顯著降低(P<0.01),甲炎康泰高劑量組Th2細(xì)胞分布比例降低(P<0.05),甲炎康泰高劑量組Th1/Th2比率降低(P<0.05)。
圖1 大鼠甲狀腺石蠟切片HE染色光鏡觀察結(jié)果(×200)
表2 各組大鼠甲狀腺炎發(fā)生率情況(xˉ±s,n=10)
表3 各組大鼠外周血中Th1和Th2細(xì)胞的分布比例變化的比較(xˉ±s,n=4)
3.4 Th1、Th2細(xì)胞相關(guān)細(xì)胞因子的表達(dá)情況
由表4可知,與正常組比較,模型組IFN-γ、TNF-α、IL-1α均顯著升高(P<0.01);與模型組比較,甲炎康泰高劑量組IFN-γ降低且有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與模型組比較,甲炎康泰低、高劑量組TNF-α降低且有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);與模型組比較,甲炎康泰低、高劑量組IL-1α降低且有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),高劑量組IL-1α極顯著降低(P<0.01)。
由表5可知,與正常組比較,模型組IL-4顯著升高(P<0.05),IL-5極顯著升高(P<0.01);與模型組比較,甲炎康泰低、中、高劑量組IL-4顯著降低(P<0.05);與模型組比較,甲炎康泰低劑量組IL-5顯著降低(P<0.05),高劑量組IL-5極顯著降低(P<0.01)。
圖2 各組大鼠外周血中Th1、Th2細(xì)胞分布比例及Th1/Th2比率變化的比較
3.5 各組大鼠甲狀腺IFN-γ、IL-4蛋白表達(dá)變化
鏡下可見甲狀腺組織IFN-γ免疫陽性物呈棕色位于甲狀腺上皮細(xì)胞核中,提示IFN-γ蛋白表達(dá)在甲狀腺上皮細(xì)胞核中,見圖3和表6;IL-4免疫陽性物呈棕色位于甲狀腺濾泡質(zhì)中,提示IL-4蛋白表達(dá)在甲狀腺濾泡質(zhì)中,見圖4和表7。比較各組平均光密度值,正
常組大鼠甲狀腺組織內(nèi)有較少IFN-γ、IL-4蛋白表達(dá),模型組大鼠IFN-γ、IL-4蛋白表達(dá)均呈現(xiàn)陽性。與模型組比較,甲炎康泰低、中、高劑量組IFN-γ、IL-4蛋白表達(dá)顯著減少(P<0.01)。
表4 甲炎康泰對(duì)大鼠血清中Th1相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)的影響(xˉ±s,n=4)
表5 甲炎康泰對(duì)大鼠血清中Th2相關(guān)細(xì)胞因子表達(dá)的影響(xˉ±s,n=4)
圖3 各組大鼠甲狀腺組織IFN-γ染色(×400)
圖4 各組大鼠甲狀腺組織IL-4染色(×400)
AITD以特異性甲狀腺自身抗體的產(chǎn)生和甲狀腺組織內(nèi)炎性細(xì)胞浸潤為主要特征。近年其發(fā)病率持續(xù)增長,約占世界人口12%,女性患病率是男性10倍多,尤其絕經(jīng)后婦女更頻繁[7]。西醫(yī)目前無特異性治療藥物及方法。AITD可歸屬于中醫(yī)“癭病”的范疇,病機(jī)在于氣滯、血瘀、痰凝。甲炎康泰是多年臨床治療自身免疫性甲狀腺疾病的經(jīng)驗(yàn)方,具有疏肝化瘀、軟堅(jiān)散結(jié)之功效。前期研究療效結(jié)果顯示經(jīng)甲炎康泰治療6個(gè)月后,TgAb與TPOAb總有效率分別為97.22%、94.44%[8],其治療AITD的臨床療效確切。本研究進(jìn)一步對(duì)其作用機(jī)制進(jìn)行探討,病理結(jié)果顯示,與模型組比較,甲炎康泰治療組甲狀腺炎的發(fā)生率顯著降低(P<0.01),主要表現(xiàn)為淋巴細(xì)胞浸潤程度的降低。甲狀腺自身抗體檢測結(jié)果顯示,甲炎康泰低、中、高劑量組大鼠TGAb、TPOAb表達(dá)水平均下降,高劑量組TPOAb濃度下降有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),TGAb顯著下降(P<0.01)。提示甲炎康泰具有減輕特異性甲狀腺自身抗體的產(chǎn)生以及降低甲狀腺內(nèi)淋巴細(xì)胞浸潤的作用。
甲狀腺組織內(nèi)Ts細(xì)胞數(shù)量下降或功能減退,減弱了對(duì)B淋巴細(xì)胞和Th細(xì)胞的抑制作用。B淋巴細(xì)胞在輔助性T細(xì)胞(Th細(xì)胞)的作用下增生并大量分泌抗甲狀腺自身抗體,從而導(dǎo)致AITD的發(fā)生。因此,Th細(xì)胞活化及Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移是本疾病一條核心的共同通路[9]。因分泌細(xì)胞因子的功能差異,Th細(xì)胞可分為Th1和Th2兩個(gè)細(xì)胞亞群,Th1型細(xì)胞主要產(chǎn)生TNF-α,IFN-γ和IL-1α等細(xì)胞因子,介導(dǎo)細(xì)胞免疫;Th2細(xì)胞可分泌IL-4、IL-5等細(xì)胞因子,介導(dǎo)I型超敏反應(yīng)與體液免疫[10]。正常狀態(tài)下Th1與Th2型細(xì)胞所分泌的細(xì)胞因子保持動(dòng)態(tài)平衡,若其中任何一個(gè)因子處于劣勢或優(yōu)勢狀態(tài),此平衡將偏移而導(dǎo)致自身免疫性疾病的產(chǎn)生。因此在AITD的發(fā)病機(jī)制中,Th1/Th2細(xì)胞平衡偏移顯現(xiàn)了十分關(guān)鍵的作用。故本實(shí)驗(yàn)采用流式細(xì)胞術(shù)檢測大鼠外周血中Th1和Th2細(xì)胞的分布比例變化,研究顯示,模型組小鼠Th1和Th2細(xì)胞比例高于正常組小鼠Thl和Th2細(xì)胞比例,說明細(xì)胞免疫和體液免疫共同參與了AITD的發(fā)病[11,12]。且模型組Th1/Th2比率(較正常組Th1/Th2比率而言,提示AITD的發(fā)生與Th細(xì)胞活化向Th1細(xì)胞偏移有關(guān)。甲炎康泰低、中、高劑量組均能降低Th1、Th2與Th1/Th2比例,且高劑量組療效顯著。
表6 各組大鼠甲狀腺IFN-γ蛋白表達(dá)(xˉ±s,n=10)
表7 各組大鼠甲狀腺IL-4蛋白表達(dá)(xˉ±s,n=10)
TNF-α、IFN-γ、IL-1α和IL-4、IL-5分別是Th1和Th2型細(xì)胞因子的代表,在功能上互相拮抗保持平衡,常作為Thl/Th2型細(xì)胞因子動(dòng)態(tài)平衡的指標(biāo)。TNF-α可加強(qiáng)異常免疫反應(yīng),引起甲狀腺組織內(nèi)的炎性破壞[13];IFN-γ可促進(jìn)B細(xì)胞與T細(xì)胞分化,增強(qiáng)NK細(xì)胞殺傷活性,激活單核巨噬細(xì)胞,且注射IFN-γ于EAT高易感品系小鼠甲狀腺中可誘導(dǎo)EAT[14];IL-1α是重要的致炎細(xì)胞因子,幾乎影響各種類型的細(xì)胞[15,16]。甲炎康泰治療組與模型組相比較TNF-α、IFN-γ、IL-1α水平均明顯下降,高劑量組最為顯著。提示甲炎康泰具有抑制Th1型細(xì)胞因子和減緩Th細(xì)胞活化向Th1細(xì)胞偏移作用。IL-4可通過抑低Th1型細(xì)胞產(chǎn)生的細(xì)胞因子,而降低Th1型細(xì)胞異常應(yīng)答所引起的組織損傷[17];IL-5可引起B(yǎng)淋巴細(xì)胞的增殖、分化和成熟,加快甲狀腺自身抗體的大量分泌,激發(fā)了甲狀腺濾泡細(xì)胞的生長及其功能的提高,導(dǎo)致甲狀腺功能亢進(jìn)癥。本研究顯示模型組和治療組IL-5均高于對(duì)照組,與Gopalakrishnan S等研究結(jié)果一致[18]。對(duì)比模型組,甲炎康泰低、中、高劑量組IL-4、IL-5水平均明顯下降,提示甲炎康泰有促使Th2型細(xì)胞因子回歸正常趨勢的作用,可防止Th2型細(xì)胞因子因拮抗Th1型細(xì)胞因子而過亢。
綜上所述,由此推測甲炎康泰治療自身免疫性甲狀腺疾病,可能與顯著降低細(xì)胞因子水平、調(diào)節(jié)Th1/ Th2細(xì)胞平衡偏移有關(guān)。甲炎康泰治療作用的具體細(xì)胞因子作用機(jī)制有待于進(jìn)一步研究。
1Caturegli P,Kimura H,Rocchi R,et al.Autoimmune Thyroid Diseases. Curr Opin Rheumatol,2007,19(1):44-48.
2Karanikas G,Schuetz M,Wahl K,et al.Relation of anti-TPO autoanti?body titre and T-lymphocyte cytokine production patterns in Hashimoto' s thyroiditis.Clin Endocrinol(Oxf),2005,63(2):191-196.
3Verginis P,Stanford M M,Carayanniotis G.Delineation of Five Thyro?globulin T Cell Epitopes with Pathogenic Potential in Experimental Au?toimmune Thyroiditis.J Immunol,2002,169(9):5332-5337.
4熊遠(yuǎn)珍.實(shí)驗(yàn)動(dòng)物與人用藥量的新?lián)Q算.江西醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),1997,04:41.
5Fan X,Wang J,Hou J,et al.Berberine alleviates ox-LDL induced in?flammatory factors by up-regulation of autophagy via AMPK/mTOR sig?naling pathway.J Transl Med,2015,13(1):1-11.
6Bagchi N,Brown T R,Sundick R S.Thyroid cell injury is an initial event in the induction of autoimmune thyroiditis by iodine in obese strain chickens.Endocrinology,1995,136(11):5054-5060.
7Duntas L H.The Role of Iodine and Selenium in Autoimmune Thyroid?itis.Horm Metab Res,2015,47(10):721-726.
8鄧?yán)?甲炎康泰治療橋本氏甲狀腺炎的臨床療效觀察及藥效研究.西安:陜西中醫(yī)藥大學(xué)碩士學(xué)位論文,2016.
9Weetman A P.Autoimmune Thyroid Disease.Autoimmunity,2004,37 (4):337-340.
10 Elenkov I J.Glucocorticoids and Th1/Th2 balance.Ann N Y Acad Sci, 2004,1024(10):138-146.
11 Roura-Mir C,Catalfamo M,Sospedra M,et al.Single-cell analysis of in?trathyroidal lymphcytes shows differential cytokine expression in Hashi?moto's and Graves'disease.Eur J Immunol,1997,27(12):3290-3320.
12 Tang H,Sharp G C,Chen K,et al.The kinetics of cytokine gene expres?sion in the thyroids of mice developing granulomatous experimental au?toimmune thyroidtis.Autoimmun,1998,11(6):581-589.
13 Yamada T,Sato A,Komiya I,et al.An elevation of serum immunoglobu?lin E provides a new aspect of hyperthyroid Graves'disease.J Clin En?docrinol Metab,2000,85(8):2775-2778.
14 Tang H,Mignon-Godefroy K,Meroni P L.The effects of a monoclonal antibody to interferon-gamma on experimental autoimmune thyroiditis (EAT):prevention of disease and decrease of EAT-specific T cells.Eur J Immunol,1993,23(1):275-278.
15 Dinarello C A.Immunological and inflammatory functions of the inter?leukin-1 family.Annu Rev Immunol,2009,27:519-550.
16 Dinarello C A.Blocking interleukin-1beta in acute and chronic autoin?flammatory diseases.J Intern Med,2011,269(1):16-28.
17 Phenekos C,Vryonidou A,Gritzapis A D,et al.Th1 and Th2 serum cyto?kine profiles characterize patients with Hashimoto's thyroiditis(Th1)and Graves'disease(Th2).Neuroimmunomodulation,2004,11(4):209-213.
18 Gopalakrishnan S,Sen S,Adhikari J S,et al.The role of T-lymphocyte subsets and interleukin-5 blood levels among Indian subjects with auto?immune thyroid disease.Hormones(Athens),2010,9(1):76-81.
Effect of Jia-Yan-Kang-Tai on Th1/Th2 Immune Cell Imbalance in Rats withAutoimmune Thyroiditis
Zhang Chengfei1,Hou Yi1,Liu Tonghua2,Sun Wen3,Wu Lili4,Qin Lingling5
(1.Dongfang Hospital of Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100078,China; 2.Graduate School,Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100029,China; 3.Key Laboratory on Traditional Chinese Medicine Health Cultivation of the Ministry of Education,Beijing 100029,China; 4.Institute of Health Cultivation,Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100029,China; 5.Department of Science and Technology,Beijing University of Chinese Medicine,Beijing 100029,China)
This study was aimed to explore the mechanism of Jia-Yan-Kang-Tai(JYKT)on Th1/Th2 immune cell imbalance in rats with autoimmune thyroiditis(AIT).A total of 40 Lewis rats were made into AIT rat model.Six week later,AIT rats were randomly divided into the model group,low-dose,middle-dose and high-dose JYKT group,with 10 rats in each group.Intragastric administration of deionized water,0.708 g·kg-1,1.417 g·kg-1and 2.834 g·kg-1JYKT was given to rats in each group,respectively for 8 consecutive weeks.Serum TgAb and TPOAb were detected.The ratio ofTh1 cell,Th2 cell and Th1/Th2 was measured.Contents of IL-4,IL-5,IFN-γ,TNF-α and IL-1α in plasma were detected.The pathology of thyroid tissues was observed by HE dyeing.The protein expressions of IFN-γ and IL-4 in thyroid tissues were observed under immunohistochemical staining.The results showed that high-dose JYKT group can reduce the level of TPOAb and TGAb,the incidence of thyroiditis,the ratio of Th1 cell,Th2 cell and Th1/Th2;decrease contents of IFN-γ,TNF-α,IL-1α,IL-4 and IL-5 in plasma;reduce the protein expression of IFN-γ and IL-4 in thyroid tissues.It was concluded that JYKT was able to suppress thyroid autoantibodies of AIT rats,which may be related to the regulation of cytokine level and Th1/Th2 immune cell imbalance.
Jia-Yan-Kang-Tai,autoimmune thyroiditis,rat,Th1/Th2 immune cell imbalance
10.11842/wst.2017.05.009
R96
A
(責(zé)任編輯:陳寧,責(zé)任譯審:王晶)
2017-05-10
修回日期:2017-05-20
*科學(xué)技術(shù)部國家國際科技合作專項(xiàng)項(xiàng)目(2015DFA30910):中藥干預(yù)橋本氏甲狀腺炎活性篩選技術(shù)與組方優(yōu)化研究,負(fù)責(zé)人:劉銅華。
**通訊作者:劉銅華,本刊編委,教授,博士生導(dǎo)師,主要研究方向:中醫(yī)藥防治糖尿病及并發(fā)癥臨床及作用機(jī)制研究。