劉明全,吳東明,楊 敏,許 穎
(成都醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院檢驗科,四川 成都 610500)
血液流變學檢測在多發(fā)性骨髓瘤診療中的應用研究
劉明全,吳東明,楊 敏,許 穎
(成都醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院檢驗科,四川 成都 610500)
目的 探討血液流變學檢測在多發(fā)性骨髓瘤診療中的應用。方法 運用骨髓細胞形態(tài)學對59例多發(fā)性骨髓瘤患者進行確診,結合血液流變學指標、細胞計數(shù)及蛋白質(zhì)測定結果進行分析,并與正常人群的血液流變學指標進行比較。結果 多發(fā)性骨髓瘤患者全血黏度與紅細胞數(shù)量呈正相關(P< 0.0001);血漿黏度與總蛋白、球蛋白濃度呈正相關(P< 0.0001),與外周血白細胞,血小板無相關性(P> 0.05)。多發(fā)性骨髓瘤患者血液流變學檢測指標與正常人群存在明顯差異(P< 0.05)。結論 血液流變學檢測指標可運用于多發(fā)性骨髓瘤的初步檢測及療效檢測,具有潛在的臨床運用價值。
多發(fā)性骨髓瘤;血細胞黏度;紅細胞;血流變
多發(fā)性骨髓瘤是漿細胞在骨髓中克隆增殖的惡性腫瘤,其發(fā)病機理尚不明了。在我國,多發(fā)性骨髓瘤發(fā)病率約1/10萬,多發(fā)于中老年人,常以骨骼破壞、感染、貧血、腎功能損傷、高球蛋白血癥及其他組織器官浸潤為臨床特點[1~3]。目前多發(fā)性骨髓瘤的診斷主要是依據(jù)骨髓細胞形態(tài)學檢查、組織活檢、血清蛋白電泳及影像學檢查[4~6]。血液流變學主要研究的是血液及其成分的流動性和變形性規(guī)律的科學[7]。血液的流變性包括血液宏觀流動性(血液黏度及血漿黏度的影響)、血細胞流變性(紅細胞的聚集性和變形性)和血液生化物質(zhì)對血液流變性的影響(球蛋白)等三個方面[8]。血液流變性異常在某些疾病的病因和發(fā)病機制中起重要作用[9]。本文對多發(fā)性骨髓瘤患者及正常人群分別進行血液流變學檢測,研究全血黏度及血漿黏度的變化規(guī)律。同時對外周血細胞計數(shù)結果及血漿蛋白質(zhì)測定結果與血液流變學檢測結果進行相關性分析,探討血液流變學在多發(fā)性骨髓瘤中臨床診斷中的意義,現(xiàn)報道如下。
1.1 一般資料 我院2002年1月至2015年8月經(jīng)骨髓細胞形態(tài)學檢查確診的59例多發(fā)性骨髓瘤患者(觀察組),男29例,女30例,年齡48~82歲,平均年齡58.2歲。對照組60例,均為同期健康體檢者,男30例,女30例,平均年齡59.4歲。
1.2 骨髓形態(tài)學分析 對多發(fā)性骨髓瘤患者行骨髓穿刺術,制作骨髓涂片,對骨髓涂片進行瑞-姬氏染液固定1 min后,滴加磷酸鹽緩沖液,混勻,室溫靜置45 min后,流水沖洗5 min后,室溫干燥。以奧林巴斯光學顯微鏡進行細胞形態(tài)學檢查。觀察紅細胞形態(tài)、有核細胞種類及數(shù)量變化情況。
1.3 血液流變學指標、細胞計數(shù)及蛋白質(zhì)測定 受試者在空腹狀態(tài)下,分別抽取肝素鋰抗凝靜脈血5 ml;EDTA-K2抗凝靜脈血2 ml;非抗凝靜脈血3 ml。賽科希德SA-6000全自動血流變分析儀,希森美康XN-1000全自動血液分析儀,日立7180型全自動生化分析儀分別檢測全血低切黏度、全血中切黏度、全血高切黏度、血漿黏度、白細胞、紅細胞、血紅蛋白、血小板、總蛋白、球蛋白。
1.4 統(tǒng)計學方法 采用GraphPad 5.0軟件進行數(shù)據(jù)分析。計量資料以均數(shù)±標準差表示,組間比較采用t檢驗。相關性分析采用Pearson相關分析。P< 0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 多發(fā)性骨髓瘤患者與正常人群骨髓細胞形態(tài)學差異 正常人群骨髓中漿細胞占百分比較低(0.64±0.69)%,多發(fā)性骨髓瘤患者骨髓中漿細胞異常增生,有核細胞以漿細胞為主,原始幼稚漿細胞比例較高,其百分比明顯高于正常人群(48.61±21.88)%。骨髓瘤患者的骨髓中成熟紅細胞呈緡錢狀排列,中心淡染區(qū)擴大(圖1)。
2.2 多發(fā)性骨髓瘤患者與正常人群各項檢測指標對比 多發(fā)性骨髓瘤患者全血低切黏度、中切黏度、高切黏度、紅細胞計數(shù)及血紅蛋白量明顯低于對照組,血漿黏度、總蛋白及球蛋白明顯高于對照組(P< 0.05),而兩組白細胞、血小板計數(shù)差異無統(tǒng)計學意義(P> 0.05),見表1。
圖1 多發(fā)性骨髓瘤患者與正常人群骨髓細胞形態(tài)學檢測 a:成熟紅細胞;b:緡錢狀排列成熟紅細胞;c:中心淡染區(qū)擴大紅細胞;d:晚幼紅細胞;e:中性分葉核粒細胞;f:幼稚漿細胞
指標觀察組對照組P全血低切黏度(1S-1,mPa·S)12.34±2.5418.72±7.06<0.0001全血中切黏度(50S-1,mPa·S)4.57±1.436.60±0.270.003全血高切黏度(200S-1,mPa·S)2.83±0.473.86±0.23<0.0001血漿黏度(mPa·S)1.93±0.281.48±0.10<0.0001紅細胞(×1012/L)2.59±0.604.59±0.38<0.0001血紅蛋白(g/L)81.2±19.0141.3±11.84<0.0001白細胞(×109/L)6.41±3.006.12±1.330.7272血小板(×109/L)121.3±59.2165.3±35.90.0592總蛋白(g/L)94.63±12.7875.65±3.84<0.0001球蛋白(g/L)62.66±14.8331.00±2.73<0.0001
2.3 多發(fā)性骨髓瘤患者血流變檢測指標與外周血紅細胞計數(shù)、血紅蛋白量及血漿蛋白相關性分析 多發(fā)性骨髓瘤患者全血低切黏度、中切黏度及高切黏度均與外周血紅細胞計數(shù)呈正相關(r分別為0.7026、0.7656、0.7542,均P< 0.0001);與血紅蛋白量也呈正相關(r分別為0.6378、0.7656、0.7542,均P< 0.0001)。血漿黏度與總蛋白及球蛋白呈正相關(r分別為0.3458、0.4405,均P< 0.001)。
多發(fā)性骨髓瘤是漿細胞克隆性增殖以浸潤骨髓為主的多灶性腫瘤,以貧血、骨質(zhì)破壞、血清球蛋白增高為特征,也是一種慢性貧血性疾病,貧血常較嚴重,可為首見征象,貧血的程度隨病情的變化而不同[10]。其骨髓中原幼漿細胞呈彌散性浸潤,分泌的單克隆型輕鏈蛋白主要經(jīng)腎臟排泄,形成腎損害,從而導致促紅細胞生成素分泌減少,造成紅細胞數(shù)量上生成減少,同時血紅蛋白含量下降,導致貧血,表現(xiàn)為紅細胞中心淡染區(qū)擴大,造成紅細胞聚集性下降[10~12];同時,血液中異常球蛋白增高導致紅細胞表面電荷降低,相互間排斥力減弱而聚集性增加呈緡錢狀排列[13]。
通過對多發(fā)性骨髓瘤患者及正常人群的血液流變學檢測發(fā)現(xiàn)多發(fā)性骨髓瘤患者全血黏度明顯低于正常人群,而血漿黏度則明顯高于正常人群。全血為非牛頓液體,其黏度主要受細胞數(shù)量的影響,發(fā)現(xiàn)骨髓瘤患者貧血常較嚴重,血細胞(尤其是紅細胞)數(shù)量下降明顯,而全血中存在的異常球蛋白在一定程度上使紅細胞的聚集性增加[14],通過實驗結果可以看出,紅細胞數(shù)量對全血黏度的影響明顯大于異常球蛋白,故全血黏度顯著低于正常人群;血漿為牛頓液體,其黏度主要受其溶質(zhì)(蛋白、脂質(zhì))的影響,多發(fā)性骨髓瘤患者血漿中的異常球蛋白明顯增多,導致血漿黏度明顯高于正常人群[15]。
通過實驗數(shù)據(jù)分析可以看出多發(fā)性骨髓瘤患者的紅細胞計數(shù)、血紅蛋白量與正常對照組有明顯差異,而白細胞計數(shù)、血小板計數(shù)則無明顯差異。多發(fā)性骨髓瘤的特點漿細胞異常增殖、浸潤骨髓,抑制骨髓正常造血,同時腎功損害影響促紅細胞生成素的分泌減少,導致全血中紅細胞數(shù)量減少,可直接影響全血黏度的結果,而白細胞、血小板的生成受促紅素的影響較小[16],故多發(fā)性骨髓瘤患者與正常人群白細胞、血小板數(shù)量并無明顯差異。
多發(fā)性骨髓瘤患者骨髓中的原幼漿細胞分泌大量的異常免疫球蛋白釋放入外周血中,這些異常球蛋白存在于血漿中,使血漿黏度增高[17,18]。血液流變學檢測結果顯示,多發(fā)性骨髓瘤患者的血漿黏度與對照組存在顯著差異,其血漿黏度明顯高于正常人,總蛋白、球蛋白濃度與對照組差異也有統(tǒng)計學意義。
綜上所述,多發(fā)性骨髓瘤患者全血黏度往往比正常人群偏低,而血漿黏度則高于正常人群。鑒于血液流變學檢測較骨髓取材簡單易行、創(chuàng)傷小、易被患者及家屬接受,且重現(xiàn)性好,安全性較高。故血液流變學檢測在多發(fā)性骨髓瘤發(fā)展及療效監(jiān)測過程中具有一定的臨床意義。
[1] 陸再英.內(nèi)科學[M].第7版.北京:人民衛(wèi)生出版社,2010.
[2] Papamerkouriou YM,Kenanidis E,Gamie Z,et al.Treatment of multiple myeloma bone disease: experimental and clinical data[J].Expert Opinion on Biological Therapy,2015,15(2):213-230.
[3] Bianchi G,Munshi NC.Pathogenesis beyond the cancer clone(s) in multiple myeloma[J].Blood,2015,125(20):3049-3058.
[4] Zhang SY,Sheng-Fang G.The bone marrow cell morphology of 32 patients with multiple myeloma[J].Journal of Bengbu Medical College,2011,36 (12):1391-1392.
[5] Shen LM,Zhang JF,Wang YR,et al.Analysis of clinical features and cell morphology in 130 patients with multiple myeloma[J].Journal of Practical Medical Techniques,2007,14 (9): 1123-1125.
[6] Guan J,Hua XU.Cell morphology and clinical characteristics of multiple myeloma[J].Clinical Medicine,2010,30 (8): 6-7.
[7] Connes P,Alexy T,Detterich J,et al.The role of blood rheology in sickle cell disease[J].Blood Reviews,2015,30(2):111-118.
[8] Gábor A,Hangos KM,Banga JR,et al.Macro- and microrheological properties of blood in pregnant women with placental insufficiency after in vitro fertilization[J].Journal of Mathematical Chemistry,2015,21(2):1-30.
[9] Samsom M,Trivedi T,Orekoya O,et al.Understanding the importance of gene and environment in the etiology and prevention of type 2 diabetes mellitus in high-risk populations[J].Oral Health Case Reports,2016,2(1): 2-6.
[10]叢玉隆.中國血細胞診斷學[M].北京: 人民軍醫(yī)出版社,2010.
[11]Matta GM,Battaglio S,Dibello C,et al.Polyclonal immunoglobulin E levels are correlated with hemoglobin values and overall survival in patients with multiple myeloma[J].Clinical Cancer Research,2007,13(18 Pt 1):5348-5354.
[12]Zhou SY.Prognostic significance of hemoglobin level in multiple myeloma[J].Journal of Clinical & Experimental Medicine,2008,7(4): 39-41.
[13]Cordone I,Marchesi F,Masi S,et al.Flow cytometry remission by Ig light chains ratio is a powerful marker of outcome in multiple myeloma after tandem autologous transplant: a real-life study[J].Journal of Experimental & Clinical Cancer Research,2016,35(1):1-8.
[14]Bose S,Banerjee M.Effect of non-Newtonian characteristics of blood on magnetic particle capture in occluded blood vessel[J].Journal of Magnetism & Magnetic Materials,2015,374:611-623.
[15]Sankar DS,Lee U.Mathematical modeling of pulsatile flow of non-Newtonian fluid in stenosed arteries[J].Communications in Nonlinear Science & Numerical Simulation,2009,14(7):2971-2981.
[16]R?llig C,Knop S,Bornh?user M.Multiple myeloma[J].Lancet,2015,385(9983):1033-1036.
[17]Huang H,Li H,Li D.Effect of serum monoclonal protein concentration on haemostasis in patients with multiple myeloma[J].Blood Coagulation & Fibrinolysis An International Journal in Haemostasis & Thrombosis,2015,26(5):3900-3905.
[18]Zhang L,Liu H,Zheng C,et al.Clinical analysis on 17 cases of IgD multiple myeloma[J].Journal of Clinical Hematology,2015,28(1): 12-18.
許 穎
R446.11+3
A
1672-6170(2017)01-0080-03
2016-09-09;
2016-10-24)