鄭慧娟 魏 璠 魏軍平
(中國中醫(yī)科學(xué)院廣安門醫(yī)院內(nèi)分泌科,北京100053)
Graves病發(fā)病機(jī)制新進(jìn)展①
鄭慧娟 魏 璠 魏軍平
(中國中醫(yī)科學(xué)院廣安門醫(yī)院內(nèi)分泌科,北京100053)
Graves病(Graves disease,GD)又稱毒性彌漫性甲狀腺腫,是針對(duì)甲狀腺濾泡細(xì)胞膜上促甲狀腺激素受體(Thyroid stimulating hormone receptor, TSHR)產(chǎn)生的抗體(TRAb)所引起的一種自身免疫性疾病,是引起甲亢最常見的原因,每年發(fā)病率約為20~30/1 000 000,約有3%的女性和0.5%的男性患病,一般集中在30~60年齡段[1]。目前GD發(fā)病機(jī)制尚未完全闡明,近年來有大量關(guān)于表觀遺傳、環(huán)境和免疫學(xué)因素在GD發(fā)病機(jī)制中的最新研究,證實(shí)免疫、環(huán)境、遺傳相互作用在GD發(fā)病中起著重要作用?,F(xiàn)對(duì)其作一綜述。
GD的發(fā)生具有明顯的家族聚集性,基因所致的自身免疫疾病占70%,提示遺傳因素在該疾病發(fā)生發(fā)展中的作用不可忽視[2]。表觀遺傳因素在基因和環(huán)境之間起調(diào)節(jié)作用,基因可通過環(huán)境作用而出現(xiàn)甲基化、乙酰化、去乙?;?、組蛋白修飾或微小RNA(microRNA)的干擾參與GD的發(fā)生,可見表觀遺傳機(jī)制在GD的發(fā)病中扮演了重要角色[3,4]。與穩(wěn)定的基因序列相比,表觀遺傳是一個(gè)動(dòng)態(tài)可逆的過程,因此探究表觀遺傳學(xué)在GD發(fā)生發(fā)展中的調(diào)控,有望通過藥物進(jìn)行干預(yù),成為GD治療的一個(gè)重要突破口[5]。
1.1 DNA甲基化修飾 DNA甲基化是常見的表觀遺傳學(xué)修飾形式,是指在DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNA methyltransferase,DNMTs)催化下,將甲基轉(zhuǎn)移至CpG雙核苷酸序列的胞嘧啶區(qū)域調(diào)控基因表達(dá),參與多種生物學(xué)過程如染色質(zhì)修飾、X染色體失活和基因組印跡。啟動(dòng)子區(qū)域DNA甲基化與基因表達(dá)呈負(fù)相關(guān),低甲基化狀態(tài)可致免疫細(xì)胞的異常增殖。遺傳基因多態(tài)性、環(huán)境等多種因素可導(dǎo)致DNA的甲基化狀態(tài)改變,最新研究顯示DNA甲基化異常、DNMTs基因多態(tài)性與GD密切相關(guān)。一項(xiàng)關(guān)于GD患者體內(nèi)DNA甲基化形式的研究,共識(shí)別了GD患者132個(gè)超甲基化區(qū)域和122個(gè)低甲基化區(qū)域,甲基化CpG結(jié)合蛋白2 和DNMT1蛋白表達(dá)水平明顯降低[6]。T細(xì)胞亞群的異常與GD發(fā)病密切相關(guān),通過檢測(cè)GD患者T細(xì)胞亞型基因組中3 687個(gè)CpG區(qū)域,發(fā)現(xiàn)CD8+T細(xì)胞內(nèi)CpG區(qū)域多數(shù)處于低甲基化狀態(tài),T細(xì)胞受體信號(hào)相關(guān)基因(CD247, LCK, ZAP70和3個(gè)CD3家族成員)高甲基化及TSHR位點(diǎn)的甲基化改變,進(jìn)而影響基因的轉(zhuǎn)錄水平[7]。DNMTs是催化并維持DNA甲基化過程的一類酶,在生物體生長發(fā)育不同時(shí)期及不同細(xì)胞表達(dá)不同,DNMTs單核苷酸多態(tài)性(Single nucleotide polymorphism,SNPs)可導(dǎo)致甲基轉(zhuǎn)移酶構(gòu)型、功能異常,影響基因組DNA甲基化水平,參與自身免疫性甲狀腺疾病的發(fā)生發(fā)展。研究發(fā)現(xiàn)DNMT3B和DNMT1基因可通過參與甲基化改變與GD的遺傳易感性相關(guān)[8]。
1.2 組蛋白修飾 組蛋白包括H1、H2、H3、H4和H5,組蛋白尾部可發(fā)生乙?;?、甲基化、磷酸化及泛素化等多種共價(jià)修飾,是基因表達(dá)和轉(zhuǎn)錄過程中的重要調(diào)控方式,這種共價(jià)修飾主要由組蛋白去乙酰化酶(Histone deacetylase,HDACs)和組蛋白乙?;D(zhuǎn)移酶(Histone acetyl transferases,HAT)催化。研究表明,在甲狀腺的自身免疫過程中,不但發(fā)生了DNA甲基化,組蛋白修飾也參與了GD的發(fā)病機(jī)制,GD患者T細(xì)胞受體信號(hào)轉(zhuǎn)錄基因H3K4me3 和 H3K27ac修飾水平降低,CD3家族基因呈現(xiàn)明顯的負(fù)相關(guān),即甲基化水平增加而轉(zhuǎn)錄水平降低[7]。經(jīng)觀察GD患者外周血單核細(xì)胞(Peripheral blood mononuclear cell,PBMCs)組蛋白表達(dá)方式,發(fā)現(xiàn)組蛋白H4去乙?;斤@著下降,HDAC1和HDAC2蛋白mRNA表達(dá)水平明顯增加,且H4乙?;潭扰cGD病情呈負(fù)相關(guān)。結(jié)果進(jìn)一步證實(shí)了GD患者PBMCs組蛋白乙?;揎棻憩F(xiàn)異常[9]。研究為探索GD的發(fā)病機(jī)制提供了新思路,并為研究GD的表觀遺傳因素打下了基礎(chǔ)。
microRNA是在真核生物中發(fā)現(xiàn)的一類內(nèi)源性的具有調(diào)控功能的非編碼小分子RNA,通過表觀遺傳修飾改變DNA甲基化、組蛋白修飾及染色質(zhì)重塑,介導(dǎo)基因表達(dá)和轉(zhuǎn)錄后調(diào)控。研究顯示,microRNAs參與表觀遺傳調(diào)控的免疫反應(yīng),可作為自身免疫性疾病診斷的生物學(xué)標(biāo)記和治療靶點(diǎn)[4,10]??傊?,DNA甲基化、組蛋白修飾和microRNA作為一種重要的基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制,在GD發(fā)病機(jī)制中發(fā)揮著重要作用,深入研究表觀遺傳修飾在GD中的作用,有利于揭示GD的發(fā)病機(jī)制。
大量研究表明遺傳和環(huán)境因素共同參與GD的發(fā)病,但是其機(jī)制尚不清楚。目前已確定與GD易感性有關(guān)的基因包括免疫調(diào)節(jié)基因人類白細(xì)胞抗原(Human leukocyte antigen-DR,HLA-DR)、趨化因子基因(IL8、RANTES、MIG、IP10、MCP1和IL16)、CD40、細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞抗原4(CTLA-4)、蛋白絡(luò)氨酸非受體型22(PTPN22)、CD25、FOXP3和甲狀腺特定基因TSHR和TG[11-14]。環(huán)境因素主要是指食物中碘(過量或缺乏)、維生素D、硒元素、藥物(IFN-α、胺碘酮)、感染(如丙型肝炎病毒)、吸煙、壓力、污染(如芳香烴)、輻射暴露等[15]。近年來全基因組關(guān)聯(lián)分析認(rèn)為GD是基因-環(huán)境交互作用的復(fù)雜疾病,GD易感基因可能促使環(huán)境暴露在發(fā)病中的作用[16]。
微量元素?cái)z入與GD的發(fā)生顯著相關(guān),微量元素?cái)z入與基因遺傳背景具有交互作用。甲狀腺內(nèi)含硒最高,與甲狀腺密切相關(guān)的硒蛋白包括谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione peroxidase,GPX)和硫氧還蛋白還原酶(Thioredoxin reductase,TxnRd)等,在甲狀腺抗氧化系統(tǒng)和甲狀腺激素合成、活化及代謝中發(fā)揮重要作用,參與免疫調(diào)節(jié)而影響甲狀腺功能和機(jī)體免疫狀態(tài)[17,18]。硒缺乏狀態(tài)下,體內(nèi)堆積的H2O2可致甲狀腺組織破壞,使大量Tg和TPOAb釋放入血,引起自身免疫反應(yīng),而攝入足夠的硒對(duì)甲狀腺功能至關(guān)重要[19]。一項(xiàng)硒治療自身免疫性甲狀腺疾病(Autoimmune thyroid disease,AITD)的薈萃分析[20]顯示,硒治療后GD患者TRAb水平明顯下降[21],且可能通過影響GPX1活性及TRAb作用來防治GD的復(fù)發(fā)[21]。碘化鈉轉(zhuǎn)運(yùn)體(Sodium iodide symporter,NIS)對(duì)甲狀腺細(xì)胞攝取碘合成甲狀腺激素起重要作用。研究發(fā)現(xiàn)硒可通過TxnRd活性增加大鼠甲狀腺細(xì)胞內(nèi)NIS蛋白活性,進(jìn)而促進(jìn)碘吸收和甲狀腺激素合成,從而在GD發(fā)病機(jī)制中起著重要作用[22]。維生素D(Vitamin D ,VD)是一重要的免疫系統(tǒng)調(diào)節(jié)因子,VD及受體(VDR)表達(dá)異常與包括GD在內(nèi)的多種自身免疫性疾病相關(guān)[23]。近年來研究顯示VDR基因多態(tài)性與GD發(fā)病相關(guān),VD通過與靶細(xì)胞結(jié)合調(diào)控結(jié)構(gòu)基因表達(dá)[24]。另有研究探討維生素D結(jié)合蛋白(Vitamin D binding protein, DBP)基因多態(tài)性與肥胖遺傳易感性關(guān)系,闡釋了DBP基因位點(diǎn)與吸煙狀態(tài)和體力活動(dòng)等因素間存在著交互作用[25]。
病毒感染誘發(fā)的自身免疫性甲狀腺疾病可使部分易感人群引發(fā)甲狀腺局部的炎癥,一項(xiàng)體外實(shí)驗(yàn)將乙肝病毒(HCV)感染人類甲狀腺細(xì)胞,HCV受體CD81表達(dá)于甲狀腺細(xì)胞,可結(jié)合HCV包膜蛋白E2,誘導(dǎo)細(xì)胞因子的產(chǎn)生引發(fā)甲狀腺的過度增殖[26]。另有研究顯示,腸道病毒也易累及甲狀腺引起自身免疫性反應(yīng),這與機(jī)體易感性關(guān)系密切[27]。吸煙是GD致病的危險(xiǎn)因素之一,全基因組分析證實(shí)吸煙與成人常染色體DNA甲基化特定CpG區(qū)域相關(guān),揭示GD是基因與環(huán)境交互作用的結(jié)果,遺傳易感性對(duì)環(huán)境危險(xiǎn)因素表現(xiàn)各異[28]。
免疫反應(yīng)是GD發(fā)生、發(fā)展的核心因素。傳統(tǒng)研究認(rèn)為體液和細(xì)胞機(jī)制單獨(dú)參與AITD的發(fā)病機(jī)制,而新的研究表明兩種免疫途徑之間相互作用共同致病,一些B、T細(xì)胞激活途徑通過抗原遞呈細(xì)胞(Antigen-presenting cells,APCs)和細(xì)胞因子,導(dǎo)致輔助T細(xì)胞(Helper T cells ,Th)和調(diào)節(jié)T細(xì)胞(regulatory T cell,Treg)的定向分化[29]。目前GD的免疫相關(guān)機(jī)制研究多集中在CD4+T淋巴細(xì)胞新亞群功能及其分泌的細(xì)胞因子功能的免疫調(diào)節(jié)等方面。
3.1 T細(xì)胞亞群失衡 人類CD4+T細(xì)胞識(shí)別甲狀腺自身抗原并與其受體相結(jié)合而被激活,從而產(chǎn)生各種黏附分子和細(xì)胞因子,并激活CD8+T淋巴細(xì)胞或B細(xì)胞,最終產(chǎn)生自身抗體[30]。研究表明Th1/Th2細(xì)胞比例失衡、紊亂的細(xì)胞因子作為細(xì)胞間的信號(hào)傳遞分子,通過多種途徑導(dǎo)致GD的發(fā)生發(fā)展[31]。李紅林等[32]研究細(xì)胞因子活性對(duì)GD致病的影響,結(jié)果表明IFN-γ、IL-6、IL-17、TGF-β1在初發(fā)GD患者血清中水平顯著高于對(duì)照組,且與FT3、FT4呈正相關(guān),與TSH呈負(fù)相關(guān),提示它們協(xié)同作用參與機(jī)體的免疫應(yīng)答,導(dǎo)致甲狀腺功能改變,引起GD的發(fā)生。新近研究發(fā)現(xiàn)GD免疫病理中CD4+T細(xì)胞的新亞群Th17和Treg細(xì)胞在AITD的發(fā)病過程中發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)作用[33]。Th17細(xì)胞數(shù)量及分泌的細(xì)胞因子影響GD的發(fā)病,與疾病嚴(yán)重程度相關(guān);Treg細(xì)胞數(shù)量或功能改變,減弱對(duì)Th細(xì)胞的抑制,促使B淋巴細(xì)胞產(chǎn)生異質(zhì)性TRAb。有報(bào)道稱在GD患者的甲狀腺組織及外周血中發(fā)現(xiàn)Treg細(xì)胞增多,其功能缺陷是免疫失衡的主要原因,Bossowski等[34]觀察GD患者外周血中Th17/Treg細(xì)胞比例,發(fā)現(xiàn)患者內(nèi)CD4+IL17+/CD4+CD25+CD127-和CD4+IL17+/CD4+CD25+CD127-FoxP3+細(xì)胞與對(duì)照組相比明顯降低,且與TRAb正相關(guān)。上述的研究表明外周血中Th17/Treg細(xì)胞比例變化與抗甲狀腺抗體水平明顯相關(guān),提示兩者比例失衡參與GD的發(fā)病機(jī)制。可見通過對(duì)T淋巴細(xì)胞在GD發(fā)病機(jī)制中的作用研究,為GD的免疫學(xué)治療提供理論基礎(chǔ)。
3.2 其他免疫細(xì)胞 樹突狀細(xì)胞(Dendritic cells,DCs)作為APC能直接活化初始型T細(xì)胞,在T細(xì)胞免疫應(yīng)答或免疫耐受中發(fā)揮重要作用。在GD免疫應(yīng)答中DC為主要的APC,而免疫應(yīng)答改變或Treg缺陷均可導(dǎo)致GD的發(fā)生[35]。OX40/OX40L通路在抗原啟動(dòng)T細(xì)胞和效應(yīng)T細(xì)胞中的發(fā)揮重要的作用。研究發(fā)現(xiàn),GD患者外周血CD4+T細(xì)胞表達(dá)OX40/OX40L水平與TRAb相關(guān),通過激活T細(xì)胞活化來促進(jìn)CD4+T細(xì)胞的增殖和存活,OX40和OX40L形成一個(gè)功能性復(fù)合體促進(jìn)OX40L向OX40的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),導(dǎo)致GD的發(fā)病[36]。濾泡輔助性T細(xì)胞(follicular helper T cells, Tfh)是一類新的效應(yīng)性CD4+T細(xì)胞亞群,主要分泌IL-21,對(duì)維持機(jī)體免疫平衡起重要作用。Tfh細(xì)胞表型OX40/OX40L是免疫應(yīng)答過程中一對(duì)重要的共刺激分子,屬TNF超家族成員,研究表明GD甲狀腺組織內(nèi)Tfhs和相關(guān)因子(IL-21、IL-21R、CXCR5和CXCL13)表達(dá)增加,GD患者甲狀腺組織CD4(+)T-/CD19(+)B 細(xì)胞內(nèi)存在Tfh和IL-21R,IL-21 mRNA的表達(dá)與血清中甲狀腺自身抗體和甲狀腺激素水平相關(guān),且在TSAb刺激下IL-21促進(jìn)cAMP釋放[37]。黃小慶等[38]探究IL-21調(diào)節(jié)外周血Treg細(xì)胞的表達(dá)在GD發(fā)病機(jī)制中的研究,表明了 IL-21通過抑制Treg細(xì)胞的分化及效應(yīng)分子IL-10的分泌,降低對(duì)效應(yīng)T細(xì)胞的抑制能力,從而參與了GD的發(fā)病過程。調(diào)節(jié)性B細(xì)胞(regulatory B cells, Bregs)主要通過分泌IL-10、TGF-β介導(dǎo)機(jī)體免疫耐受及抑制過度活化的免疫應(yīng)答,其功能失調(diào)可導(dǎo)致自身免疫性疾病的發(fā)生。目前國內(nèi)外已有研究顯示Bregs參與GD的免疫調(diào)節(jié)過程與GD的嚴(yán)重程度密切相關(guān)[39],提示對(duì)Bregs的研究可進(jìn)一步明確GD的發(fā)病機(jī)制,為尋找新的免疫干預(yù)手段提供理論依據(jù)。
GD是由遺傳與環(huán)境因素共同作用而引起的器官特異性自身免疫紊亂,碘攝入、性別、壓力、吸煙等GD發(fā)生發(fā)展相關(guān)的危險(xiǎn)因素可以通過影響DNA甲基化和組蛋白修飾顯著增加GD的患病風(fēng)險(xiǎn)。通過遺傳學(xué)、表觀遺傳修飾及環(huán)境因素之間的相互作用研究,有助于了解GD致病因素的發(fā)病機(jī)理。隨著研究的深入,希望學(xué)者進(jìn)一步能夠重視基因表達(dá)改變與環(huán)境因素的相互作用及其對(duì)GD發(fā)生發(fā)展的影響,將為GD的防治提供新的思路和方法。
GD的發(fā)生以產(chǎn)生針對(duì)甲狀腺細(xì)胞表面TSHR的抗體TRAb為特征,TRAb與TSHR結(jié)合通過細(xì)胞內(nèi)信號(hào)傳導(dǎo)通路導(dǎo)致甲狀腺細(xì)胞增殖,激素合成、分泌增加,該過程可能受到自噬機(jī)制的雙重調(diào)節(jié)。正常情況下自噬維持細(xì)胞內(nèi)穩(wěn)態(tài),在外界壓力下,細(xì)胞過度增殖或饑餓、氧化應(yīng)激等情況下自噬開啟保護(hù)機(jī)制,而自噬機(jī)制的受損可能與GD免疫紊亂過程密切相關(guān)。故研究自噬在GD甲狀腺細(xì)胞增殖過程中自噬機(jī)制變化,將有助于闡釋GD的病理生理機(jī)制。
[1] Burch HB,Cooper DS.Management of Graves disease:a review[J].JAMA,2015,314(23):2544-2554.
[2] Marinò M,Latrofa F,Menconi F,etal.Role of genetic and non-genetic factors in the etiology of Graves′disease[J].J Endocrinol Invest,2015,38(3):283-294.
[3] Lee HJ,Li CW,Hammerstad SS,etal.Immunogenetics of autoimmune thyroid diseases:A comprehensive review[J]. J Autoimmun,2015,64:82-90.
[4] Qin Q,Wang X,Yan N,etal.Aberrant expression of miRNA and mRNAs in lesioned tissues of Graves′disease[J]. Cell Physiol Biochem,2015,35(5):1934-1942.
[5] Tomer Y.Mechanisms of autoimmune thyroid diseases:from genetics to epigenetics[J].Annu Rev Pathol,2014,9(9):147-156.
[6] Cai TT,Muhali FS,Song RH,etal.Genome-wide DNA methylation analysis in Graves′ disease[J].Genomics,2015,105(4):204-210.
[7] Limbach M,Saare M,Tserel L,etal.Epigenetic profiling in CD4+and CD8+T cells from Graves′ disease patients reveals changes in genes associated with T cell receptor signaling[J].J Autoimmun,2015,67:46-56.
[8] Cai TT,Zhang J,Wang X,etal.Gene-gene and gene-sex epistatic interactions of DNMT1,DNMT3A and DNMT3B in autoimmune thyroid disease[J].Endocr J,2016,63(7):643-653.
[9] Yan N,Zhou JZ,Zhang JA,etal. Histone hypoacetylation and increased histone deacetylases in peripheral blood mononuclear cells from patients with Graves′disease[J].Mol Cell Endocrinol,2015,414(C):143-147.
[10] Inoue Y,Watanabe M,Inoue N,etal. Associations of single nucleotide polymorphisms in precursor-microRNA (miR)-125a and the expression of mature miR-125a with the development and prognosis of autoimmune thyroid diseases[J].Clin Exp Immunol,2014,178(2):229-235.
[11] Qian W,Xu K,Jia W,etal.Association between TSHR gene polymorphism and the risk of Graves′disease:a meta-analysis[J]. J Biomed Res,2015,30:1-10.
[12] Bufalo NE,Santos RBD,Marcello MA,etal. TSHR,intronic polymorphisms (rs179247 and rs12885526) and their role in the susceptibility of the Brazilian population to Graves′disease and Graves′ophthalmopathy[J].J Endocrinol Invest,2015,38(5):1-7.
[13] Akahane M,Watanabe M,Inoue N,etal.Association of the polymorphisms of chemokine genes,with the pathogenesis of autoimmune thyroid diseases[J]. Autoimmunity,2016,49(5):312-319.
[14] Lombardi A,Menconi F,Greenberg D,etal.Dissecting the genetic susceptibility to graves′disease in a cohort of patients of italian origin[J].Front Endocrinol,2016,7(21):1-7.
[15] Wiersinga WM.Clinical relevance of environmental factors in the pathogenesis of autoimmune thyroid disease[J]. Endocrinol Metab,2016,31(2):213-222.
[16] 胡卓清,陳曉銘,武 革.Graves病全基因組關(guān)聯(lián)分析的研究現(xiàn)狀[J].廣東醫(yī)學(xué),2014,35(20):3262-3264.
[17] Lacka K,Szeliga A.Significance of selenium in thyroid physiology and pathology[J]. Pol Merkur Lekarski,2015,38(228):348-353.
[18] Calissendorff J,Mikulski E,Larsen EH,etal.A prospective investigation of graves′disease and selenium:thyroid hormones,auto-antibodies and self-rated symptoms[J]. Eur Thyroid J,2015,4(2):93-98.
[19] 劉德珍,陸衛(wèi)平.硒與自身免疫性甲狀腺炎的關(guān)系[J].山東醫(yī)藥,2015,55(1):104-106.
[20] 房 方,衛(wèi)紅艷,王坤玲,等.硒治療自身免疫性甲狀腺疾病的薈萃分析[J].國際內(nèi)分泌代謝雜志,2016,36(4):247-252.
[21] Wang L,Wang B,Chen S,etal. Effect of selenium supplementation on recurrent hyperthyroidism caused by graves′ disease: a prospective pilot study[J]. Horm Metab Res,2016,48(9):559-564.
[22] Leoni SG,Sastre-Perona A,Del VA,etal.Selenium increases thyroid-stimulating hormone-induced sodium/iodide symporter expression through thioredoxin/apurinic/apyrimidinic endonuclease 1-dependent regulation of paired Box 8 binding activity[J]. Antioxid Redox Signal,2016,24(15):855-866.
[23] Zhang H,Liang L,Xie Z.Low Vitamin D status is associated with increased thyrotropin-receptor antibody titer in graves disease[J]. Endocr Pract,2015,21(3):258-263.
[24] 龍 雄,吳文飛,胡卓清,等.維生素D受體基因多態(tài)性與Graves病易感性的關(guān)系[J]. 中國老年學(xué)雜志,2015(12):3254-3256.
[25] 王高帥.維生素D結(jié)合蛋白基因多態(tài)性與肥胖易感性的關(guān)系[D].鄭州大學(xué),2015.
[26] Blackard JT,Kong L,Huber AK,etal.Hepatitis C virus infection of a thyroid cell line:implications for pathogenesis of hepatitis C virus and thyroiditis[J].Thyroid,2013,23(7):863-870.
[27] Hammerstad SS,Tauriainen S,Hy?ty H,etal.Detection of enterovirus in the thyroid tissue of patients with graves′ disease [J].J Med Virol,2013,85(3):512-518.
[28] Klebaner D,Huang Y,Qin H,etal. X chromosome-wide analysis identifies DNA methylation sites influenced by cigarette smoking[J]. Clinical Epigenetics,2016,8(1):561-561.
[29] Ana Maria Ramos-Leví,Mónica Marazuela.Pathogenesis of thyroid autoimmune disease: the role of cellular mechanisms[J].Endocrinol Nutr,2016,pii: S1575-0922(16)30046-8.
[30] Kristensen B.Regulatory B and T cell responses in patients with autoimmune thyroid disease and healthy controls[J]. Dan Med J,2016,63(2),pii: B5177.
[31] Eshaghkhani Y,Sanati MH,Nakhjavani M,etal.Disturbed Th1 and Th2 balance in patients with Graves′Disease[J].Minerva Endocrinol,2016,41(1):28-36.
[32] 李紅林,高美華,鄭云會(huì),等.細(xì)胞因子IFN-γ、IL-6、IL-17和TGF-β1在Graves病發(fā)病中的作用[J].中國免疫學(xué)雜志,2015,31(2):253-256.
[33] González-Amaro R,Marazuela M.T regulatory (Treg) and T helper 17 (Th17) lymphocytes in thyroid autoimmunity[J].Endocrine,2015,52(1):1-9.
[35] Purnamasari D,Soewondo P,Djauzi S.Dendritic cells in graves′ disease[J]. Acta Med Indones,2015,47(1):61-69.
[36] Wang Q,Shi BM,Xie F.Enhancement of CD4(+) T cell response and survival via coexpressed OX40/OX40L in Graves′ disease[J].Mol Cell Endocrinol,2016,430:115-124.
[37] Jin Z,Meng R,Hua Z,etal.Elevated follicular helper T Cells and expression of IL-21 in thyroid tissues are involved in the pathogenesis of Graves′ disease[J]. Immunol Res,2015,62(2):163-174.
[38] 黃小慶,劉 純.IL-21調(diào)節(jié)外周血中Treg細(xì)胞的表達(dá)在Graves病發(fā)病機(jī)制中的研究[J].中國免疫學(xué)雜志,2016,32(6):853-862.
[39] Kristensen B,Hegedüs L,Lundy S K,etal.Characterization of regulatory B cells in graves′disease and hashimoto′s thyroiditis[J].PLos One,2015,10(5):e0127949.
[收稿2016-08-24 修回2016-10-21]
(編輯 張曉舟)
10.3969/j.issn.1000-484X.2017.04.030
①本文受國家自然科學(xué)基金資助(81573961)。
鄭慧娟(1990年-),女,在讀博士,主要從事甲狀腺疾病的基礎(chǔ)研究,E-mail:345835708@qq.com。
及指導(dǎo)教師:魏軍平(1966年-),男,主任醫(yī)師,博士生導(dǎo)師,主要從事甲狀腺疾病、糖尿病等內(nèi)分泌代謝疾病的基礎(chǔ)和臨床研究,E-mail:weijunping@126.com。
R593.2
A
1000-484X(2017)04-0621-04