孫紅,喬麗萍,侯世科,趙少貞,孫惠敏,袁佳琴,韓泉洪
(1 天津醫(yī)科大學(xué)眼科臨床學(xué)院,天津市眼科醫(yī)院,天津300020;2武警后勤學(xué)院附屬醫(yī)院;3天津醫(yī)科大學(xué)眼科中心)
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞靜注對(duì)堿燒傷兔角膜修復(fù)的促進(jìn)作用及機(jī)制
孫紅1,喬麗萍2,侯世科2,趙少貞3,孫惠敏3,袁佳琴3,韓泉洪1
(1 天津醫(yī)科大學(xué)眼科臨床學(xué)院,天津市眼科醫(yī)院,天津300020;2武警后勤學(xué)院附屬醫(yī)院;3天津醫(yī)科大學(xué)眼科中心)
目的 觀察骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)靜注對(duì)堿燒傷兔角膜修復(fù)的促進(jìn)作用并探討其機(jī)制。方法 取新西蘭大白兔60只,制備右眼角膜緣堿燒傷模型,隨機(jī)分為觀察組和對(duì)照組,各30只(30眼)。觀察組耳緣靜脈注射BMSCs細(xì)胞懸液3.47×106個(gè)/kg,對(duì)照組注射等體積PBS。注射后第3、21、60天,兩組行右眼角膜透明度和角膜上皮再生狀況評(píng)分,采用裂隙生物顯微鏡觀察角膜血管新生情況,計(jì)算角膜新生血管面積。結(jié)果 第3、21、60天觀察組角膜上皮再生程度評(píng)分均低于對(duì)照組(P均<0.05)。第3天兩組角膜混濁程度評(píng)分比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),第21、60天觀察組均低于對(duì)照組(P均<0.05)。觀察組第3、21天角膜新生血管面積大于對(duì)照組(P均<0.05),第60天小于對(duì)照組(P均<0.05)。結(jié)論BMSCs靜注可促進(jìn)堿燒傷兔角膜的修復(fù),提高角膜透明度;其機(jī)制可能與其早期促進(jìn)損傷角膜新生血管生成、晚期抑制角膜新生血管生成有關(guān)。
角膜修復(fù);堿燒傷;骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞;新生血管生成;兔
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)存在于骨髓中,是一種具有自我更新和多向分化潛能的干細(xì)胞,亦是能分泌多種細(xì)胞因子的較原始骨髓基質(zhì)細(xì)胞,具有基質(zhì)細(xì)胞的特性。在適宜的培養(yǎng)條件下,BMSCs可增殖并被誘導(dǎo)分化為包括骨、軟骨、肌肉、脂肪、神經(jīng)等組織細(xì)胞,是組織工程良好的種子細(xì)胞[1~3]。BMSCs可取自自體骨髓,取材方便,由其誘導(dǎo)而來的組織在進(jìn)行移植時(shí)不存在組織配型及免疫排斥等問題,常作為組織工程的種子細(xì)胞用于修復(fù)組織缺損[4];但其靜脈應(yīng)用對(duì)堿燒傷角膜修復(fù)作用的報(bào)道鮮見。為此,我們于2015年6月~2016年12月進(jìn)行了如下研究。
1.1 材料 新西蘭大白兔60只,體質(zhì)量(1.5±0.6)kg,月齡2個(gè)月,雌雄不分,健康無任何眼疾。兔BMSCs為我實(shí)驗(yàn)室自制。制備方法:取1 個(gè)月齡體重0.5~1.0 kg新西蘭大白兔1 只, 肌注快速眠0.1 mL麻醉。無菌操作下穿刺股骨骨髓腔,抽出骨髓5~8 mL。DF12稀釋后,直接接種于含有20 %胎牛血清的DF12 培養(yǎng)液中,于37 ℃、5 %CO2、飽和濕度下培養(yǎng)。每48 h更換一次培養(yǎng)液。收集第二代或第三代細(xì)胞備用。
1.2 角膜堿燒傷模型制備及分組處理 將60只兔麻醉后制備角膜堿燒傷模型[5]:將浸透1 mol/L氫氧化鈉溶液的濾紙環(huán)片(內(nèi)徑8 mm,外徑14 mm)置于兔右眼角膜緣上45 s,再用生理鹽水沖洗5 min。結(jié)果顯示,角膜堿燒傷程度均在Ⅲ級(jí)以上,造模成功?;\養(yǎng)24 h后用隨機(jī)雙盲法(編號(hào),查表法)分為觀察組和對(duì)照組,各30只(30眼)。 觀察組麻醉后耳緣靜脈注射BMSCs細(xì)胞懸液3.47×106個(gè)/kg。對(duì)照組經(jīng)耳緣靜脈靜注等體積PBS。兩組均用氟哌酸眼液滴眼,4次/d;結(jié)膜囊涂四環(huán)素眼膏,1次/晚。
1.3 相關(guān)指標(biāo)觀察 第3、21、60天兩組各分別行空氣栓塞處死10只兔,取完整角膜組織觀察以下指標(biāo)。
1.3.1 角膜上皮再生程度 角膜組織行熒光素鈉染色,按角膜染色面積進(jìn)行評(píng)分:角膜無著色為0分,染色面積≤1/4象限計(jì)1分,染色面積>1/4~≤1/2象限計(jì)2分,染色面積>1/2~≤3/4象限計(jì)3分,染色面積>3/4象限計(jì)4分。
1.3.2 角膜透明度 采用裂隙顯微鏡觀察角膜透明度,角膜透明無混濁為0分,輕度混濁且虹膜紋理可見計(jì)1分,中度混濁且虹膜紋理不清計(jì)2分,重度混濁隱見瞳孔計(jì)3分,極重度混濁且瞳孔不見計(jì)4分。
1.3.3 角膜新生血管面積 計(jì)數(shù)自角鞏緣長(zhǎng)出、連續(xù)彎曲度小、朝向植入物最長(zhǎng)血管(即新生血管)的長(zhǎng)度和數(shù)量;計(jì)算其面積。角膜新生血管生長(zhǎng)面積(mm2)=C/12×3.141 6[r2-(r-L)2]。C為發(fā)生新生血管的角膜圓周鐘點(diǎn)數(shù),r為角膜半徑,L為血管長(zhǎng)度。
2.1 兩組不同時(shí)間角膜上皮再生評(píng)分比較 觀察組及對(duì)照組第3天角膜上皮再生評(píng)分分別為(2.9±0.45)、(3.5±0.56)分,第21天分別為(2.7±0.39)、(3.8±0.47)分,第60天分別為(2.1±0.43)、(3.9±0.51)分。觀察組第3、21、60天均低于對(duì)照組(P均<0.05)。
2.2 兩組不同時(shí)間角膜混濁程度評(píng)分比較 觀察組及對(duì)照組第3天角膜混濁程度評(píng)分分別為(2.8±0.2)、(2.9±0.3)分,兩組比較P>0.05;第21天分別為(2.7±0.4)、(3.1±0.2)分,第60天分別為(1.9±0.3)、(3.5±0.4)分;第21、60天均低于對(duì)照組(P均<0.05)。
2.3 兩組不同時(shí)間角膜新生血管面積比較 觀察組及對(duì)照組第3天角膜新生血管面積分別為(12.56±0.46)、(3.34±0.51)mm2,第21天分別為(19.16±0.76)、(14.56±0.46)mm2,第60天分別為(4.36±0.66)、(29.16±0.68)mm2。第3、21天觀察組高于對(duì)照組(P均<0.05),第60天低于對(duì)照組(P均<0.05)。
在角膜緣堿燒傷早期,如果建立良好的角膜緣血管網(wǎng)的血液供應(yīng),可為角膜修復(fù)提供充分的氧氣和營(yíng)養(yǎng),阻斷角膜發(fā)生進(jìn)一步損傷。角膜緣化學(xué)損傷的預(yù)后與角膜緣缺血的嚴(yán)重程度有直接關(guān)系[6]。研究發(fā)現(xiàn),角膜緣堿燒傷早期組織分泌促血管新生因子的能力缺陷,組織炎癥及缺血缺氧誘發(fā)的新生血管形成可導(dǎo)致角膜瘢痕、瞼球粘連[8]。故此期急救措施中首先要積極改善角膜血管供養(yǎng)狀態(tài)[7]。因組織炎癥及缺血缺氧誘發(fā)的新生血管形成可在角膜形成瘢痕,引起瞼球粘連[8]。
最初認(rèn)為,缺血誘導(dǎo)的血管重建僅僅依賴于缺氧、炎癥介導(dǎo)的血管新生過程。但最近的研究發(fā)現(xiàn),出生后的血管重建不僅依賴于血管新生,還需骨髓來源的前體干/祖細(xì)胞的參與[9]。胚胎發(fā)育中的血管生成是指由中胚層衍生的血管干細(xì)胞遷移、聚集、分化在原位形成原始毛細(xì)血管網(wǎng)[10],而成體骨髓來源的內(nèi)皮祖細(xì)胞能夠趨化、黏附、增殖、分化成內(nèi)皮細(xì)胞并參與血管的重建,這一過程類似于胚胎發(fā)育過程中的血管生成,所以被稱為出生后或成體的血管生成[11]。后來發(fā)現(xiàn)有許多生長(zhǎng)因子如粒細(xì)胞巨核細(xì)胞集落生長(zhǎng)因子(GM-CSF)、VEGF等能夠募集骨髓來源的干細(xì)胞到血管重建所需的部位。而缺血本身不僅能增加血管干細(xì)胞的數(shù)量,且能夠增強(qiáng)干細(xì)胞向內(nèi)皮細(xì)胞分化的能力[12]。但缺血誘導(dǎo)的血管重建往往不能完全彌補(bǔ)外周血管病變和動(dòng)脈閉塞所引起的血流減少,而提供外源性干細(xì)胞可增強(qiáng)血管生成,并促進(jìn)缺血組織的血流恢復(fù)。
與血管新生不同,動(dòng)脈生成的調(diào)控不依賴于局部的缺氧,但局部的血流剪切力以及局部?jī)?nèi)皮活化卻發(fā)揮著至關(guān)重要的作用[13]。動(dòng)脈生成也稱為側(cè)支循環(huán)建立,即原先存在的潛在血管在血流壓力的作用下增殖生長(zhǎng),形成較粗的能顯著促進(jìn)血流的大動(dòng)脈[14]。在此過程中,血管平滑肌細(xì)胞和周細(xì)胞扮演著重要角色,其能調(diào)節(jié)血流量和血管壁的通透性,促進(jìn)血管生長(zhǎng);還能通過分泌細(xì)胞因子傳遞信號(hào)給內(nèi)皮和作用于細(xì)胞外基質(zhì)[15]等。側(cè)支循環(huán)建立后,內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)單核細(xì)胞趨化因子和單核細(xì)胞黏附分子等[16]。單核巨噬細(xì)胞、血小板、肥大細(xì)胞以及其他細(xì)胞被趨化因子(如VEGF)趨化到炎癥和缺血部位[17]。這些細(xì)胞能產(chǎn)生促血管新生和促血管生成的因子,如VEGF、成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子、IL-8、血小板衍生生長(zhǎng)因子等,這些因子反過來吸引更多的內(nèi)皮細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、白細(xì)胞和血小板[18]。這樣的一個(gè)新環(huán)境導(dǎo)致內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞大量增殖、遷移,血管增粗和成熟,細(xì)胞外基質(zhì)的大量合成。最終,小血管重塑形成大的側(cè)支循環(huán),從而提供有效血流量,促進(jìn)缺血角膜再生[19,20]。
研究發(fā)現(xiàn),在血管新生過程中動(dòng)脈生成和血管新生常同時(shí)發(fā)生、發(fā)展,不能絕對(duì)分開[21];循環(huán)中注射骨髓干/祖細(xì)胞的兔血管新生起主要作用[22]。BMSCs既能在VEGF刺激下分化成內(nèi)皮細(xì)胞,也能在PDGF作用下形成平滑肌細(xì)胞。在細(xì)胞水平上,骨髓來源的干/祖細(xì)胞能分化為毛細(xì)血管的內(nèi)皮細(xì)胞(血管新生),亦可形成由平滑肌細(xì)胞包被的大血管(血管生成)。盡管這兩種機(jī)制存在著許多交迭,但目前尚無法明確區(qū)分其分子過程。BMSCs對(duì)血管新生、血管生成、動(dòng)脈生成作用的區(qū)分也很不清楚。目前所知的細(xì)胞生成因子均不是僅對(duì)血管重建發(fā)生作用;內(nèi)皮細(xì)胞和周細(xì)胞/平滑肌細(xì)胞的接觸在血管成熟中起著尤為重要的作用。如果沒有周細(xì)胞/平滑肌細(xì)胞的參與,新生的裸露內(nèi)皮細(xì)胞管狀結(jié)構(gòu)很不穩(wěn)定,容易退縮和消失。前期研究中我們發(fā)現(xiàn),移植的BMSCs可參與到血管網(wǎng)中并分泌VEGF[2];外周血和房水中的VEGF濃度變化以及角膜組織中VEGF、VEGFR基因表達(dá)水平均證實(shí)了上述發(fā)現(xiàn)。VEGF能刺激周細(xì)胞/平滑肌細(xì)胞增殖和募集,進(jìn)而促進(jìn)血管生長(zhǎng)和成熟。本研究觀察組第3、21、60天角膜上皮再生程度評(píng)分均低于對(duì)照組,第21、60天角膜混濁程度評(píng)分均低于對(duì)照組。說明靜注BMSCs可促進(jìn)損傷角膜再生,提高角膜透明度。觀察組注射BMSCs第3、21天角膜新生血管面積高于對(duì)照組,表明靜注BMSCs可促進(jìn)堿燒傷角膜損傷后早期血管新生,進(jìn)而改善燒傷后早期角膜血供。第60天觀察組右眼角膜新生血管面積小于對(duì)照組,說明在損傷后期,觀察組血管新生程度較低,此可能為觀察組右眼角膜透明度較高的原因之一。
綜上所述,BMSCs靜注可促進(jìn)堿燒傷兔角膜修復(fù),提高角膜透明度;其機(jī)制可能為早期可促進(jìn)損傷角膜新生血管生成、晚期可抑制角膜新生血管生成。本研究的不足為未對(duì)角膜緣組織中的周細(xì)胞/平滑肌細(xì)胞進(jìn)行抗體標(biāo)記。
[1] Pittenger MF, Mackay AM, Beck SC, et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells[J]. Science, 1999,284(5411):143-147.
[2] Prockop DJ. Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues[J]. Science, 1997,276(5309):71-74.
[3] Rzhaninova AA, Gornostaeva SN, Goldshtein DV. Isolation and phenotypical characterization of mesenchymal stem cells from human fetal thymus[J]. Bull ExpBiol Med, 2005,139(11):134-401.
[4] Prockop DJ. Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues[J]. Science, 1997,276(5309):71-74.
[5] 中國(guó)眼外傷職業(yè)眼病協(xié)作組.眼部燒傷分度標(biāo)準(zhǔn)[J].眼外傷職業(yè)病雜志,1983,5(2):封3.
[6] Heil M, Ziegelhoeffer T, Pipp F, et al. Blood monocyte concentration is critical for enhancement of collateral artery growth[J]. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2002,283(6):H2411-H2419.
[7] Zeppieri M, Salvetat ML, Beltrami AP, et al. Human adipose-derived stem cells for the treatment of chemically burnedratcorneapreliminary results[J]. Curr Eye Res, 2013,38(4):45l-463.
[8] Kalka C, Masuda H, Takahashi T, et al. Transplantation of ex vivo expanded endothelial progenitor cells for therapeutic neovascularization[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2000,97(7):3422-3427.
[9] Oh JY, Kim MK, Wee WR, et al. The anti-inflammatory and anti-angiogenic role of mesenchymal stem cells in corneal wound healing following chemical injury[J]. Stem Cells, 2008(34):85.
[10] Takahashi T, Kalka C, Masuda H, et al. Ischemia- and cytokine-induced mobilization of bone marrow-derived endothelial progenitor cells for neovascularization[J]. Nat Med, 1999,5(4):434-438.
[11] Treacy O, O Flynn L, Ryan AE, et al. Mesenchymal stem celltherapypromotes cornealallograflsurvivalinrats bylocalandsystemicimmunomodulation[J]. Am J Transplant, 2014,14(9):2023-2036.
[12] Yao L, Li ZR, Su WR, et al. Role of mesenchymal stem cells on cornea wound healing induced by acute alkali burn[J]. Plos One, 2012,7(2):e30842.
[13] 卞丹梅,顧宏衛(wèi),胡楠.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞移植對(duì)角膜化學(xué)傷后炎癥和血管生成相關(guān)因子表達(dá)的影響[J].中華實(shí)驗(yàn)眼科雜志,2012,30(3):253-257.
[14] 李穎,楊磊,宋艷萍,等.角膜基質(zhì)細(xì)胞誘導(dǎo)分化的脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞羊膜片移植治療兔角膜堿燒傷的療效及其機(jī)制[J].中華實(shí)驗(yàn)眼科雜志,2015,33(6):500-506.
[15] Asahara T, Takahashi T, Masuda H, et al. VEGF contributes to postnatal neovascularization by mobilizing bone marrow-derived endothelial progenitor cells[J]. Embo J, 1999,18(14):3964-3972.
[16] Hoefer IE, van Royen N, Jost MM. Experimental models of arteriogenesis: differences and implications[J]. Lab Anim (NY), 2006,35(2):36-44.
[17] Simons M. Angiogenesis: where do we stand now[J]. Circulation, 2005,111(12):1556-1566.
[18] Annabi B, Lee YT, Turcotte S, et al. Hypoxia promotes murine bone-marrow-derived stromal cell migration and tube formation[J]. Stem Cells, 2003,21(3):337-347.
[19] Tseng PY, Chen CJ, Sheu CC, et al. Spontaneous differentiation of adult rat marrow stromal cells in a long-term culture[J]. J Vet Med Sci, 2007,69(2):95-102.
[20] Hanabusa K, Nagaya N, Iwase T, et al. Adrenomedullin enhances therapeutic potency of mesenchymal stem cells after experimental stroke in rats[J]. Stroke, 2005,36(4):853-858.
[21] Silva GV, Litovsky S, Assad JA, et al. Mesenchymal stem cells differentiate into an endothelial phenotype, enhance vascular density, and improve heart function in a canine chronic ischemia model[J]. Circulation, 2005,111(2):150-156.
[22] Feldman AL, Stetler-Stevenson WG, Costouros NG, et al. Modulation of tumor-host interactions, angiogenesis, and tumor growth by tissue inhibitor of metalloproteinase 2 via a novel mechanism[J]. Cancer Res, 2004,64(13):4481-4486.
天津市應(yīng)用基礎(chǔ)及前沿技術(shù)研究項(xiàng)目(15JCYBJC26500)。
韓泉洪(E-mail:hanquanhong126@126.com)
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.20.012
R772.2
A
1002-266X(2017)20-0040-03
2016-11-11)