制備亞麻籽油多層乳液及其穩(wěn)定性研究

李進偉，林傳舟，劉元法（江南大學食品學院，江蘇 無錫 214122）

制備亞麻籽油多層乳液及其穩(wěn)定性研究

李進偉，林傳舟，劉元法
（江南大學食品學院，江蘇 無錫 214122）

采用靜電層層自組裝的方法制備亞麻籽油多層乳狀液，確定二級乳液的組成為質(zhì)量分數(shù)5.0%的亞麻籽油、質(zhì)量分數(shù)0.45%的濃縮乳清蛋白、質(zhì)量分數(shù)0.2%的果膠；三級乳液的組成為質(zhì)量分數(shù)2.5%的亞麻籽油、質(zhì)量分數(shù)0.225%的濃縮乳清蛋白、質(zhì)量分數(shù)0.1%的果膠、質(zhì)量分數(shù)0.2%的殼聚糖。同時結果表明亞麻籽油多層乳狀液具有緩慢釋放的效果和提高亞麻籽油消化吸收效率的作用。

亞麻籽油；靜電層層自組裝；多層乳液

亞麻籽油中不飽和脂肪酸含量高達90%，其中以α-亞麻酸含量最高（54%）。α-亞麻酸為n-3系人體必需脂肪酸，在體內(nèi)可轉化為二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA）和二十二碳六烯酸（docosahexaenoic acid，DHA）[1]，后兩者都是組成神經(jīng)細胞膜的重要成分，具有促進胎兒和嬰兒大腦生長發(fā)育[2]、抗衰老[3-5]、增強記憶力、提高免疫力、改善和維持視力、預防腦血栓和心肌梗塞等生理功能[6-9]，因此亞麻籽油作為綠色天然資源，是開發(fā)補充n-3不飽和脂肪酸的最經(jīng)濟來源，具有很好的開發(fā)應用前景。但由于亞麻籽油中不飽和脂肪酸含量過高，極容易被氧化，從而產(chǎn)生不良的風味甚至有害物質(zhì)，影響亞麻籽油的貨架期[10]。

層層自組裝技術是指利用兩種或多種高分子化合物之間的某種相互作用（如靜電引力、共價鍵、氫鍵等），使其在模板物質(zhì)表面逐層交替沉積，形成多層界面膜的一種技術[11-13]。近年來，采用層層自組裝技術制備的微膠囊已經(jīng)廣泛應用于醫(yī)藥[14-16]、化學[17-18]、食品[19-21]、生物技術[22]及農(nóng)業(yè)等方面。本實驗采用靜電層層自組裝的方法制備多層乳液，并研究其釋放的特性，以獲得穩(wěn)定的多層乳液。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

亞麻籽油 山東渤海實業(yè)股份有限公司。

濃縮乳清蛋白（whey protein concentrate，WPC）恒天然集團；果膠（酯化度75%，平均分子質(zhì)量310 kD）、殼聚糖（脫乙酰度為75%～85%） 美國Sigma公司。

1.2 儀器與設備

EL20 pH計 梅特勒-托利多儀器有限公司；Ultra-Turrax T18高速分散器 德國IKa公司；高壓均質(zhì)機ATS工業(yè)系統(tǒng)有限公司；納米粒度與Zeta電位儀 英國馬爾文公司。

1.3 方法

1.3.1 壁材分子所帶電荷性質(zhì)的測定

分別配制質(zhì)量分數(shù)為1%的果膠、殼聚糖、濃縮乳清蛋白溶液。將配制好的溶液用醋酸緩沖液稀釋至0.01%，并用1 mol/L的HCl溶液調(diào)節(jié)pH值為3、4、5、6、7、8，通過納米粒度及Zeta電位分析儀（zetasizer nano，ZS）測定不同pH值時壁材分子所帶電荷（即Zeta電位）。

1.3.2 多層乳液的制備

初級乳狀液的制備：在pH 7.0時，將亞麻籽油和質(zhì)量分數(shù)為1%的濃縮乳清蛋白乳化劑緩沖溶液按質(zhì)量比1∶9混合，高速剪切2 min，然后高壓均質(zhì)，40 MPa均質(zhì)2 次，10 MPa均質(zhì)1 次，制備組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)10%、濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù)0.9%，pH值為7的初級乳狀液；

二級乳狀液的制備：在pH值為7時，將初級乳狀液和質(zhì)量分數(shù)為1%的果膠溶液以及醋酸緩沖液混合，然后調(diào)節(jié)pH值至3.5，并用超聲破壞絮凝，制備組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)5%、濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù)0.45%、果膠質(zhì)量分數(shù)為0.2%、pH3.5的二級乳狀液。

三級乳液的制備：在pH值為3.5時，將質(zhì)量分數(shù)為1%的殼聚糖溶液以及醋酸緩沖液加入到制備的二級乳液中，制備組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)2.5%、濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù)0.225%、果膠質(zhì)量分數(shù)0.1%、殼聚糖質(zhì)量分數(shù)0.2%、pH3.5的三級乳液。

用去離子水以體積比1∶1 000稀釋乳狀液，通過納米粒度及Zeta電位分析儀（Zetasizer nano-ZS）測定乳狀液粒度，相對折射率和吸收率分別設定為1.590和0.001，測試溫度為25 ℃。

1.4 體外模擬消化實驗

1.4.1 模擬胃液消化實驗

準確稱取10 g胃蛋白酶置于1 000 mL的燒杯中，加水攪拌，用鹽酸調(diào)節(jié)溶液pH值至2.0，加入2 g NaCl，攪拌，轉移至1 000 mL容量瓶中，稀釋定容至1 000 mL，配制模擬胃液。

量取100 mL人工胃液置于250 mL三角瓶中，加入準確稱取的10 mL初級、二級、三級乳液，置于37 ℃恒溫水浴中，攪拌轉速為100 r/min左右（模擬腸胃蠕動狀態(tài)），消化2 h，每隔20 min取樣置于顯微鏡下觀察。

1.4.2 模擬小腸脂肪體外消化

將乳液在模擬胃液中消化2 h之后，用磷酸緩沖液稀釋，使亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)為0.5%，取30 mL，調(diào)節(jié)pH值至7.0，在37 ℃水浴振蕩30 min，添加1.5 mL NaCl溶液（5.625 ×10－3mol/L），1 mL CaCl2溶液（0.75 × 10－3mol/L），2 mL膽鹽（187.5 mg），2 mL胰脂肪酶（60 mg），最終總體積為37.5 mL。其中混合液NaCl 濃度為1.5×10－1mol/L 、CaCl2為2×10－2mol/L、膽鹽為5 mg/mL，胰脂肪酶為1.6 mg/mL，pH值為7.0。釆用pH-stat滴定法用NaOH溶液進行滴定，測量其游離脂肪酸（free fatty acid，F(xiàn)FA）釋放量。按下式計算脂肪消化率。

式中：VNaOH為中和游離脂肪酸所消耗NaOH的體積/L；cNaOH為所用NaOH的濃度/（mol/L）；mlipid為消化反應中初始的油脂質(zhì)量/g；Wlipid為亞麻籽油的摩爾質(zhì)量870 g/mol。

2 結果與分析

2.1 不同pH值條件下果膠、殼聚糖、濃縮乳清蛋白分子所帶電荷

采用靜電層層自組裝制備多層乳液，首先要測定各聚合電解質(zhì)在不同pH值條件下的帶電性質(zhì)，以確定其吸附順序。殼聚糖是自然界唯一帶正電的天然多糖，因此殼聚糖分子在pH 3～8之間所帶的電荷都為正。果膠是一種帶有多個負電基團的天然多糖，其在pH3～8的范圍內(nèi)所帶電荷都為負，因此可以與殼聚糖產(chǎn)生靜電吸附；而濃縮乳清蛋白在pH值3、4的時候所帶電荷為正，在pH值為5～8之間所帶電荷為負（圖1），這說明濃縮乳清蛋白的等電點在pH值為4～5之間，可以通過調(diào)節(jié)溶液的pH值使蛋白質(zhì)帶上不同的電荷，以此來達到所需要的帶電情況。在靜電層層自組裝技術中，液滴表面的涂層是通過帶電的液滴表面和溶液中帶相反電荷的聚合電解質(zhì)的相互吸引沉積形成的，因此，通過選擇不同的乳化劑或者調(diào)節(jié)pH值，使初級乳液的液滴表面帶電，之后通過依次加入帶有相反電荷的聚合電解質(zhì)調(diào)節(jié)pH值，使其吸附到液滴表面，從而制備多層包埋的亞麻籽油乳液。

圖1 不同pH值條件下果膠、殼聚糖、濃縮乳清蛋白分子所帶電荷Fig. 1 Zeta-potential of pectin, chitosan and WPC at different pH values

2.2 壁材質(zhì)量分數(shù)的確定

在采用靜電層層自組裝制備多層乳液的過程中，首先是離子型的乳化劑在均質(zhì)乳化的過程中快速地吸附到油滴表面，形成由小液滴組成的初級乳液，之后在體系中加入帶相反電荷的聚合電解質(zhì)，聚合電解質(zhì)就會吸附到液滴表面形成具有兩層界面層的二級乳液。重復以上程序，通過不斷加入相反電荷的聚合電解質(zhì)，制備具有三層或者更多層聚合電解質(zhì)膜的油脂乳狀液。

通過探討添加不同質(zhì)量分數(shù)的果膠對二級乳液平均粒徑以及穩(wěn)定性的影響，來確定制備乳液所需聚合電解質(zhì)的最佳質(zhì)量分數(shù)。當pH3.5時，添加質(zhì)量分數(shù)為0%～0.30%的果膠，液滴質(zhì)量分數(shù)分別為1.0%、3.0%、5.0%的二級乳液的穩(wěn)定性如表1所示。

表1 果膠和液滴質(zhì)量分數(shù)對二級乳液液滴穩(wěn)定性的影響Table 1 Stability of the secondary emulsions as a function of droplet and pectin concentration

在pH值為3.5時，果膠分子所帶電荷為負，其Zeta電位為－20 mV左右，而蛋白質(zhì)包裹的脂肪滴表面所帶電荷為正，其Zeta電位為20 mV左右，果膠分子會由于靜電吸附作用吸附到液滴表面。在果膠質(zhì)量分數(shù)為0%時，乳液都很穩(wěn)定，說明蛋白質(zhì)包埋的液滴表面所帶的電荷較高，液滴之間的靜電排斥作用較強，液滴不會產(chǎn)生聚結。當加入果膠之后，隨著加入果膠質(zhì)量分數(shù)的不同，乳液的穩(wěn)定性會產(chǎn)生變化。例如，液滴質(zhì)量分數(shù)為1% 的乳液，其在果膠質(zhì)量分數(shù)為0%時很穩(wěn)定，在果膠質(zhì)量分數(shù)為0.02%時會產(chǎn)生聚結，乳液不穩(wěn)定，在果膠質(zhì)量分數(shù)為0.04%～0.10%之間，乳液很穩(wěn)定，之后隨著果膠質(zhì)量分數(shù)的進一步增加，在0.20%～0.30%時，乳液又會出現(xiàn)絮凝，變得不穩(wěn)定。液滴質(zhì)量分數(shù)為5%時，乳液在果膠質(zhì)量分數(shù)為0%～0.04%、0.20%～0.30%之間都很穩(wěn)定，但是在果膠質(zhì)量分數(shù)為0.06%～0.10%時會出現(xiàn)絮凝，液滴粒徑增大，乳液不穩(wěn)定，這是因為果膠質(zhì)量分數(shù)不同時，乳液的液滴之間的橋連和損耗絮凝導致的。

2.3 制備二級乳液時果膠質(zhì)量分數(shù)的確定

在制備二級乳液時，選取液滴質(zhì)量分數(shù)為5.0%，通過添加不同質(zhì)量分數(shù)的果膠，確定制備二級乳液時果膠的質(zhì)量分數(shù)。

圖2 添加不同質(zhì)量分數(shù)果膠（00%～00..44%）二級乳液的穩(wěn)定性Fig. 2 Stability of the secondary emulsions with different pectin concentrations (0%–0.4%)

由圖2可知，當果膠質(zhì)量分數(shù)為0%時，乳液很穩(wěn)定，在放置1 周后不會出現(xiàn)分層，不會產(chǎn)生絮凝或者聚結，說明液滴之間存在較強的靜電排斥作用。當果膠質(zhì)量分數(shù)為0.1%時，此時乳液的平均粒徑由200 nm變?yōu)? 000 nm，不同果膠濃度二級乳液的粒徑和電位如圖3所示，乳液出現(xiàn)嚴重絮凝并產(chǎn)生分層。這是因為在低質(zhì)量分數(shù)果膠條件下，帶負電的果膠分子吸附在帶正電的液滴表面，中和了液滴原有的正電荷，液滴表面靜電荷減少，甚至降為0，液滴之間的靜電排斥作用減小，導致了乳液液滴的聚集。另外一種原因可能是由于果膠含量較低，乳液液滴通過果膠的橋連結構形成了聚結[69]。當果膠質(zhì)量分數(shù)進一步增加達到0.2%時，更多帶負電荷的果膠分子吸附到液滴表面，此時液滴表面被果膠分子完全覆蓋住，液滴之間存在較強的靜電和空間位阻排斥作用，從而產(chǎn)生穩(wěn)定的乳液，此時二級乳液的粒徑大約為600 nm。當果膠質(zhì)量分數(shù)增加到0.4%時，乳液穩(wěn)定性下降，說明此時的果膠質(zhì)量分數(shù)過高，已經(jīng)超過飽和吸附所需的含量，由于水相中未吸附的果膠過多而導致?lián)p耗絮凝，導致乳液的穩(wěn)定性下降。

圖3 添加不同質(zhì)量分數(shù)果膠時二級乳液的粒徑和Zetaa電位Fig. 3 Mean particle size and Zeta-potential of the secondary emulsions

在pH值為3.5時，果膠分子所帶電荷為負，而覆蓋蛋白質(zhì)的液滴表面所帶的電荷為正，此時，果膠分子會因為與液滴表面之間存在強的靜電相互吸引作用而吸附到液滴表面。由圖3可知，添加不同質(zhì)量分數(shù)果膠時，液滴Zeta電位的變化情況，說明果膠分子吸附到液滴的濃縮乳清蛋白表面層上。在果膠質(zhì)量分數(shù)為0%時，濃縮乳清蛋白包裹的液滴表面的Zeta電位大約為23 mV，因為此時吸附在液滴表面的蛋白質(zhì)處于等電點以下，濃縮乳清蛋白所帶電荷為正。隨著果膠質(zhì)量分數(shù)的增加，液滴的Zeta電位會逐漸變小，在果膠質(zhì)量分數(shù)為0.1%時，液滴表面的Zeta電位接近0，說明液滴表面所帶的凈電荷幾乎為0，因為帶負電的果膠分子吸附到帶正電的蛋白質(zhì)表面上，此時果膠含量還不足以完全覆蓋液滴表面，電荷相互中和，導致液滴所帶靜電荷減少。之后隨著果膠含量的增加，液滴表面的Zeta電位轉變?yōu)樨撝?，最終基本達到一個穩(wěn)定值，此時二級乳液表面的Zeta電位大約為－0 mV。這些數(shù)據(jù)說明果膠分子吸附到由濃縮乳清蛋白穩(wěn)定的液滴表面上，并且逐漸達到飽和。

在加入殼聚糖之前，要確保溶液中游離的果膠很少或者不存在，否則就會在溶液中發(fā)生相互作用，從而干擾界面層上聚合電解質(zhì)層的形成。所以，選擇添加質(zhì)量分數(shù)為0.2%的果膠。因此，亞麻籽油二級乳液的組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)5.0%、濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù)0.45%、果膠質(zhì)量分數(shù)0.2%。

2.4 制備三級乳液時殼聚糖質(zhì)量分數(shù)的確定

在制備三級乳液時，同樣通過探討添加不同質(zhì)量分數(shù)的殼聚糖對三級乳液液滴電荷（Zeta電位）、平均粒徑以及乳液穩(wěn)定性的影響來確定所需殼聚糖的最佳含量。添加不同質(zhì)量分數(shù)殼聚糖的三級乳液穩(wěn)定性如圖4所示。

圖4 添加不同質(zhì)量分數(shù)殼聚糖的三級乳液穩(wěn)定性Fig. 4 Stability of the tertiary emulsions with different chitosan concentrations

由圖5可知，在制備三級乳液時，殼聚糖的質(zhì)量分數(shù)對三級乳液的粒徑、Zeta電位以及乳液穩(wěn)定性的影響與制備二級乳液時果膠質(zhì)量分數(shù)對二級乳液的影響基本相同。在pH值為3.5時，殼聚糖分子所帶電荷為正（Zeta電位大約為40 mV），而表面覆蓋果膠分子的液滴表面所帶的電荷為負（Zeta電位大約為－35 mV），此時，殼聚糖分子會因為與液滴表面之間存在強的靜電相互吸引作用而吸附到液滴表面。在殼聚糖質(zhì)量分數(shù)為0%時，表面覆蓋果膠分子的液滴表面的Zeta電位大約為－35 mV，隨著殼聚糖含量的增加，液滴的Zeta電位會發(fā)生改變，在殼聚糖質(zhì)量分數(shù)為0.1%時，液滴表面的Zeta電位轉變?yōu)檎?，之后隨著殼聚糖含量的增加繼續(xù)增大，最后，在殼聚糖質(zhì)量分數(shù)達到0.2%之后趨于穩(wěn)定。這些數(shù)據(jù)說明殼聚糖分子吸附到表面覆蓋果膠的二級乳液液滴表面，并且逐漸達到飽和，得到穩(wěn)定的亞麻籽油三級乳液。

三級乳液液滴的粒徑和Zeta電位如圖5所示，在不添加殼聚糖時，此時乳液很穩(wěn)定，不會產(chǎn)生絮凝或者聚結，說明液滴之間存在較強的靜電排斥作用。在殼聚糖質(zhì)量分數(shù)為0.05%時，由于靜電中和效應，液滴之間靜電排斥作用力變?nèi)?，液滴容易發(fā)生聚結；另外殼聚糖含量較低，還不足以完全覆蓋液滴表面，由于兩個或者多個帶負電的液滴共享一個帶正電的殼聚糖分子，形成橋連結構而產(chǎn)生聚集。導致乳液穩(wěn)定性下降，此時乳液的平均粒徑由600 nm變?yōu)?0 000 nm，乳液出現(xiàn)嚴重絮凝并產(chǎn)生分層。當殼聚糖質(zhì)量分數(shù)進一步增加超過0.15%時，Zeta電位增大，乳液重新變的穩(wěn)定，乳液液滴的平均粒徑下降，此時三級乳液由于表面吸附了一層殼聚糖，粒徑較二級乳液的粒徑大，粒徑大約為1 000 nm。

圖5 三級乳液液滴的粒徑和Zetaa電位Fig. 5 Mean particle size and Zeta-potential of the tertiary emulsions

當殼聚糖含量進一步增加時，可能會由于水相中未吸附的殼聚糖過多而導致?lián)p耗絮凝，導致乳液的穩(wěn)定性下降，故選擇殼聚糖的質(zhì)量分數(shù)為0.2%。因此，亞麻籽油三級乳液的組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)2.5%，濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù) 0.225%，果膠質(zhì)量分數(shù)0.1%，殼聚糖質(zhì)量分數(shù)0.2%。

2.5 亞麻籽油多層乳液體外模擬消化

有研究表明，多層乳液由于在油滴表面形成了一層較厚且致密完整的界面膜，并且由于聚合電解質(zhì)的帶電性質(zhì)，能夠延緩芯材物質(zhì)在人體內(nèi)的釋放速率，從而達到在體內(nèi)緩慢釋放的效果，提高芯材物質(zhì)的消化吸收效率[23-24]。本實驗采用體外模擬消化的方法，通過觀察乳液在模擬胃液中的狀態(tài)變化，以及亞麻籽油在模擬腸液中的消化速率，來研究對多層包埋對芯材物質(zhì)的釋放特性。

2.5.1 亞麻籽油多層乳液在模擬胃液中的消化情況

圖6 各級乳液在模擬胃液中的顯微鏡圖片（×40000）Fig. 6 Micrographs of emulsions in simulated gastric juice (×400)

通過顯微鏡觀察，各級乳液在模擬胃液中的顯微鏡圖如圖6所 示，在人工胃液中初級乳液開始是均勻地分散在模擬胃液中，經(jīng)過40 min之后，液滴會出現(xiàn)聚集，這可能是因為濃縮乳清蛋白被胃液中的蛋白酶分解掉了，使得油滴的界面膜破壞，乳液體系不在穩(wěn)定。而二級乳液在80 min之后液滴才變得不明顯，說明果膠層能夠對濃縮乳清蛋白層起到保護作用，使胃蛋白酶分解濃縮乳清蛋白的速度減慢。三級乳液在120 min之后仍然能觀察到很均勻的液滴存在，并沒有完全崩解，說明三級乳液的液滴上的界面層在胃液中2 h之內(nèi)沒有被完全消化掉，三層包埋的亞麻籽油多層乳液在模擬胃液中存在的時間最長，說明多層乳液在胃液中具有緩釋性。

2.5.2 亞麻籽油多層乳液在模擬腸液中游離脂肪酸的釋放率

甘油三酯在消化過程中，會分解釋放出FFA和單甘脂，測定各個樣品在消化過程中不同時刻的FFA的釋放率，可以直觀地反映各種樣品在消化過程中的消化率和消化過程[25]。實驗分別測定了不同消化時間內(nèi)（0～200 min）初級、二級、三級乳液乳液中脂肪酸的釋放率，進而比較其消化情況，所得實驗結果乳液中FFA的釋放率如圖7所示。

圖7 乳液中FFA的釋放率Fig. 7 Release rate of free fatty acids in the emulsions

由圖7可知，所有的乳液中的亞麻籽油在2 h內(nèi)基本都能被消化，說明聚合電解質(zhì)層不會阻止腸道對亞麻籽油的消化吸收。但是，具有不同聚合電解質(zhì)層的乳液，其包埋的亞麻籽油的消化速率有所不同。其中初級乳液的消化速率最快，二級乳液的消化速率比初級乳液的消化速率要慢，可能是因為果膠的存在會對液滴起到一定的保護作用，對脂肪酶的吸附起到一定的屏蔽作用，所以二級乳液中亞麻籽油的消化速率要比初級乳液要慢一些。三級乳液中亞麻籽油的消化速率最慢，這是因為果 膠和殼聚 糖可以在油滴表面形成一個較厚的界面膜，從而能夠阻止脂肪酶與油滴之間的接觸。此外，殼聚糖還能夠與膽酸鹽結合，從而降低體系溶解消化產(chǎn)物的能力，進一步減緩脂肪的消化。但是，三級乳液最終也會被完全消化，這可能是因為聚合電解質(zhì)多糖層從油滴表面上解析下來，或者殼聚糖自身被消化掉。結果表明，多層乳液不會阻止脂肪的消化，但是多層包埋的亞麻籽油的消化速率會有所降低，從而可以實現(xiàn)緩釋的效果。

3 結 論

確定了二級乳液的組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)5.0%、濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù)0.45%、果膠質(zhì)量分數(shù)0.2%；三級乳液的組成為亞麻籽油質(zhì)量分數(shù)2.5%、濃縮乳清蛋白質(zhì)量分數(shù)0.225%、果膠質(zhì)量分數(shù)0.1%、殼聚糖質(zhì)量分數(shù)0.2%；多層乳液對芯材具有一定的 控釋效果，能夠延緩亞麻籽油在模擬胃腸道中的消化速率。

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Preparation and Stability of Multilayer Emulsions of Linseed Oil by Electrostatic Layer-by-Layer Deposition

LI Jinwei, LIN Chuanzhou, LIU Yuanfa
(School of Food Science and Technology, Jiangnan University, Wuxi 214122, China)

This study investigated the preparation of multilayer emulsions of linseed oil by electrostatic layer-by-layer deposition. The fi nal composition of the secondary emulsion was 5.0% linseed oil, 0.45% whey protein and 0.2% pectin; and the tertiary emulsion was composed of 2.5% linseed oil, 0.225% whey protein, 0.1% pectin, and 0.2% chitosan. The multilayer emulsion technology is effective in controlling the release rate of linseed oil in the body.

linseed oil; layer-by-layer self-assembly; multilayer emulsions

10.7506/spkx1002-6630-201611001

TS225.1；R151.3

A

1002-6630（2016）11-0001-06

李進偉, 林傳舟, 劉元法. 制備亞麻籽油多層乳液及其穩(wěn)定性研究[J]. 食品科學, 2016, 37(11): 1-6. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201611001. http://www.spkx.net.cn

LI Jinwei, LIN Chuanzhou, LIU Yuanfa. Preparation and stability of multilayer emulsions of linseed oil by electrostatic layer-by-layer deposition[J]. Food Science, 2016, 37(11): 1- 6. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201611001. http://www.spkx.net.cn

2015-07-13

國家自然科學基金面上項目（31571878；31171703)；2013年糧食公益性行業(yè)科研專項（201313011-7-3）

李進偉（1972—），男，副教授，博士，主要從事脂質(zhì)科學研究。E-mail：jwli@jiangnan.edu.cn