許正新, 鄭 雪, 朱 磊
(揚州大學(xué)醫(yī)學(xué)院, 江蘇 揚州, 225001)
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蛇床子素對大鼠心室肌細(xì)胞鈉通道的影響
許正新, 鄭雪, 朱磊
(揚州大學(xué)醫(yī)學(xué)院, 江蘇 揚州, 225001)
摘要:目的探討蛇床子素對大鼠心室肌細(xì)胞鈉離子通道電流(I(Na))的影響。方法采用Langendorff 裝置,恒壓恒溫灌流及酶解消化等方法對大鼠心肌細(xì)胞進(jìn)行分離和處理。應(yīng)用膜片鉗技術(shù),觀察給予不同濃度蛇床子素(Ost)后鈉離子通道電流特征的變化。結(jié)果Ost(>100 μmol/L)能明顯抑制鈉電流,其作用呈濃度依賴性(500 μmol/L幾乎完全阻斷)和時間依賴性(10 min左右抑制力達(dá)到最強(qiáng))。100 μmol/L和300 μmol/L Ost使鈉電流I-V曲線明顯上移,峰值鈉電流(-29.8±4.21) pA/pF分別降為(-20.1±3.7) pA/pF和 (-17.7±5.7 ) pA/pF (P<0.05),但激活電位和峰電位沒有改變。對于鈉通道失活曲線,不同濃度的Ost能使其向超級化方向移動,V(1/2)(空白,100 μmol/L,300 μmol/L)分別為(-81.10±0.35)、(-91.62±1.06)、(-100.60±0.21) mV (P<0.01)。Ost還能顯著延長鈉通道失活后恢復(fù)時間,τ(空白,100 μmol/L,300 μmol/L)分別為(15.09±0.78)、(23.41±1.23)、(31.62±0.97) ms (P<0.01)。結(jié)論Ost對大鼠心室肌鈉通道電流有明顯的抑制作用。
關(guān)鍵詞:蛇床子素; 鈉通道; 心室肌; 大鼠; 膜片鉗
蛇床子素,又名甲氧基歐芹酚 (Ost),是從傘形科蛇床子屬植物蛇床的果實中提取的一種香豆素類化合物,化學(xué)名稱為7-甲氧基-8-異戊烯基香豆素,是蛇床子中含量最高(約1%)的一種烴基香豆素類有效化學(xué)成分[1]。研究[2-4]報道, Ost具有降低血壓、抗心律失常、抑制心臟、擴(kuò)張血管等一系列心血管藥理作用。此外,該藥對免疫系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)也能產(chǎn)生一定影響[5-6],同時具有抗菌[7-8]、止癢[9-12]等效應(yīng)。本研究探討蛇床子素對大鼠心室肌細(xì)胞鈉離子通道電流(INa)的影響,現(xiàn)報告如下。
1材料與方法
1.1動物
SD大鼠(200~300 g),揚州大學(xué)比較醫(yī)學(xué)中心提供,雌雄不拘。
1.2藥品與試劑
蛇床子素購自成都普思生物科技有限公司,HEPES、?;撬?、葡萄糖購自美國Sigma公司,膠原酶Ⅱ購自Worthington公司,其余均為國產(chǎn)分析純。
1.3溶液配制
臺氏液(mM): NaCl 135; KCl 5.4; MgCl21; CaCl21.8; HEPES 5; NaH2PO40.33; glucose 10; pH值用 NaOH調(diào)至7.30~7.40。無鈣臺氏液:臺氏液中去除CaCl2即可。酶液: 無鈣臺氏液中加入0.4 g/L膠原酶Ⅱ, 1g/L的BSA和30 μmol/L的CaCl2。
KB液(mM): L-glutamic acid 70; KCl 25;taurine 10; NaH2PO410;
HEPES 5; glucose 11; EGTA 0.5(用KOH 調(diào)pH至7.30~7.40)。
細(xì)胞外液(mM): NaCl 5; CsCl 140; MgCl21; CaCl21; CoCl21; glucose 10; HEPES 10 (用CsOH調(diào)pH至7.30)。電極內(nèi)液(mM): CsCl 133; NaCl 5; TEACl 20; EGTA 10; HEPES 10; MgATP 5 (用CsOH調(diào)pH至7.2)。
1.4大鼠心室肌細(xì)胞分離
整個大鼠心室肌細(xì)胞分離過程參照文獻(xiàn)[13]并略作改進(jìn)。大鼠腹腔注射肝素2 000 IU/kg, 約15 min后繼續(xù)腹腔注射2%戊巴比妥鈉(8 mL/kg)。麻醉成功后開胸迅速取下心臟置于預(yù)先以100% O2飽和的4℃臺式液中,常規(guī)整理、清洗、固定,經(jīng)主動脈行Langendorff 灌流。其程序為:先用臺式液經(jīng)主動脈逆行灌流約1 min,使心臟復(fù)跳排出心腔殘留血液,繼之以無鈣臺氏液灌流心臟約8 min,直至心臟停跳為止。最后用預(yù)先以純氧飽和的酶溶液50 mL循環(huán)灌流20~30 min,直至心臟變得柔軟、松弛,流出液渾濁并呈拉絲狀。整個灌流過程在37℃恒溫、灌流液中持續(xù)通純氧的條件下進(jìn)行。酶解消化結(jié)束后分離并剪碎心室組織,在KB液中輕輕吹打以游離出單個心室肌細(xì)胞,過濾得到細(xì)胞混懸液,貯存于KB液中,靜置2 h后待用。期間重復(fù)換液3次。
1.5全細(xì)胞膜片鉗記錄
將細(xì)胞置于培養(yǎng)皿中靜置10~20 min,待其貼壁后換用細(xì)胞外液進(jìn)行灌流以除去殘存的KB液。使用P-97水平拉制儀拉制玻璃微電極,電極入液電阻保持在2~3 MΩ,選用邊緣完整、橫紋清晰、表面光滑無顆粒感的細(xì)胞進(jìn)行實驗。串聯(lián)電阻補償60%。
1.6統(tǒng)計學(xué)方法
采用PatchMaster軟件采集所記錄電流,結(jié)合使用Origin70和graphpadprism5.1對數(shù)據(jù)進(jìn)行轉(zhuǎn)換分析以及擬合。以SPSS 16.0軟件對實驗數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計處理,所有數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。顯著性檢驗的標(biāo)準(zhǔn)為P<0.05。
2結(jié)果
2.1Ost對大鼠心室肌細(xì)胞INa影響的時間依賴性
保持電位-80 mV,給予指令電壓為-30 mV,脈寬50 ms,頻率0.5 Hz的方波單刺激,記錄鈉電流。由于電流記錄之初(0~5 min),電流大小不穩(wěn)定,所以不采集此段的數(shù)據(jù)。5~10 min后電流趨于穩(wěn)定后觀察給藥前后INa峰值的大小。當(dāng)100 μmol/L蛇床子素作用10 min之后,INa即明顯減弱(降低31.6%)(圖1A);隨著藥物劑量的增加,當(dāng)300 μmol/L蛇床子素作用10 min之后,INa減弱更加明顯(降低58.2%)(圖1B)。使用正常的細(xì)胞外液灌流5 min,INa可部分恢復(fù)。由此證明,INa的減小是Ost對電流的抑制作用。
2.2Ost對大鼠心室肌細(xì)胞INaI-V曲線的影響
在電壓鉗模式下,保持電位-80 mV,給予-70~+40 mV、階躍5 mV、持續(xù)時間30 ms的方波串刺激,刺激頻率0.5 Hz,記錄給藥前后的INa(圖2A),以電流密度對相應(yīng)的電壓作圖,繪制出INa的I-V曲線(圖2B)。Ost 可使INa的 I-V曲線顯著上移,100 μmol/L和300 μmol/L蛇床子素使峰值鈉電流(-29.8±4.21) pA/pF分別降為(-20.1±3.7) pA/pF and (-17.7±5.7 ) pA/pF (P<0.01), 但I(xiàn)-V曲線的形狀、激活電位、峰電位和反轉(zhuǎn)電位不改變。
圖1 100 μmol/L 和300μmol/L蛇床子素對INa抑制作用的時間依賴性
與對照組加藥前比較, **P<0.01。
圖2100μmol/L 和300μmol/L蛇床子素對INa影響的原始曲線及I-V曲線
2.3Ost對大鼠心室肌細(xì)胞INa影響的濃度
依賴性
刺激方案同2.1。采用累積加藥法,分別觀察 10、50、100、200、300、400、500 μmol/L Ost對大鼠心室肌細(xì)胞INa的影響(圖3)。當(dāng)Ost濃度為10 μmol/L和50 μmol/L時,其對INa無明顯作用,但當(dāng)濃度大于此值時,隨著藥物濃度的增加,對電流的抑制作用也隨之增強(qiáng),表現(xiàn)出明顯的濃度依賴性抑制現(xiàn)象。
與對照組加藥前比較,**P<0.01。圖3 不同濃度蛇床子素對INa的影響
2.4蛇床子素對INa失活動力學(xué)的影響
在電壓鉗模式下,采用雙脈沖刺激法。保持電位-80 mV, 條件脈沖從-140 mV開始逐步去極化至+30 mV,階躍10 mV,持續(xù)時間50 ms, 然后再給予去極化至-30 mV, 持續(xù)時間25 ms的測試脈沖,分別引導(dǎo)出給藥前后INa的失活電流,以相對電流I/Imax對各膜電位作圖,采用Boltzmann方程I/Imax =1/{ 1 + exp [ (V-V1/2)/k ] }進(jìn)行擬合,得到穩(wěn)態(tài)失活曲線,其中V1/2代表50 %通道失活時的條件脈沖電壓, k為斜率因子。Ost能使INa的失活曲線顯著左移,即向超極化方向移動,100 μmol/L 和300 μmol/L蛇床子素使V1/2由用藥前的(-81.10±0.35) mV分別變?yōu)?-91.62±1.06) mV和 (-100.60±0.21) mV (n=10,P<0.01),k從(9.95±0.31) mV變?yōu)?9.93±0.18) mV(n=10,P>0.05)和(12.70±0.94 ) mV (P<0.01)。所以,Ost可明顯改變INa的失活動力學(xué)特征,加快INa的失活。見圖4和表1。
2.5蛇床子素對INa失活后恢復(fù)動力學(xué)的影響
在電壓鉗模式下,采用雙脈沖刺激法,保持電位為-80 mV, 給予去極化至-30 mV的刺激,持續(xù)30、5 ms后,再給予去極化至-30 mV、30 ms的刺激,前后2個脈沖的間隔時間以5 ms的幅度逐漸增加,共20個脈沖。分別引出用藥前后INa的復(fù)活電流,以相對電流I/Imax對時間間隔作圖,用指數(shù)方程I/Imax=1-exp(-t/)擬合。t為兩脈沖之間的時間間隔,為滅活后再激活(61.8%)的時間常數(shù)。Ost能使INa的失活后恢復(fù)曲線顯著右移,由給藥前的(15.09±0.78) ms變?yōu)?23.41±1.23) ms和(31.62±0.97) ms(P<0.01)。Ost可明顯改變INa的失活后恢復(fù)動力學(xué)特征,使INa從失活態(tài)向激活態(tài)轉(zhuǎn)變的時間延長。見圖5和表1
圖4 蛇床子素對INa失活曲線的影響
與空白相比, *P<0.05, **P<0.01。
與對照組加藥前比較, **P<0.01。
圖5蛇床子素對INa失活后恢復(fù)曲線的影響
3討論
目前有關(guān)Ost對離子通道影響的報道還較少,袁春華等[10]證實了Ost能抑制多種鈣通道亞型并表現(xiàn)出不同的親和力。近年來,隨著電生理技術(shù)的發(fā)展,尤其是膜片鉗技術(shù)的應(yīng)用,使人類有能力從分子水平來探討離子通道的結(jié)構(gòu)和功能,以及其與疾病的關(guān)系。研究表明,心肌細(xì)胞上離子通道與很多心血管系統(tǒng)疾病有相關(guān)性。
鈉通道是選擇性允許Na+跨膜通過的離子通道,主要是電壓門控離子通道,其功能是維持細(xì)胞興奮性及其傳導(dǎo)。在心臟、神經(jīng)和肌肉細(xì)胞,動作電位始于快鈉通道的激活,鈉離子內(nèi)流引起動作電位的0期去極化。INa異常會導(dǎo)致一系列的心律失常。本實驗采用全細(xì)胞膜片鉗技術(shù)觀察了蛇床子素(Ost)對大鼠心室肌細(xì)胞INa幅值、I-V曲線及其失活和恢復(fù)動力學(xué)的影響。結(jié)果表明,Ost可以濃度依賴性地抑制鈉電流。其中,100 M Ost可使INaI-V曲線明顯上移,但并不改變I-V曲線的激活電位、峰電位和反轉(zhuǎn)電位,提示Ost在不同膜電位水平對INa具有均勻一致的抑制作用。Ost使INa的失活曲線顯著左移,即向超極化方向移動,加快鈉通道的失活。而對失活后恢復(fù)曲線則使其顯著右移,使INa從失活態(tài)恢復(fù)的時間延長。此外,Ost對鈉電流的抑制作用還具有濃度依賴性,在100~500 μmol/L范圍內(nèi),隨著藥物濃度的增加,抑制作用逐漸增強(qiáng)。此分子水平的實驗結(jié)果與整體實驗[3,14]中Ost的作用相一致,可以部分解釋其抗心律失常效應(yīng)的作用基礎(chǔ),從而為該藥及其同類藥物的進(jìn)一步開發(fā)、應(yīng)用及指導(dǎo)臨床合理用藥提供相應(yīng)的理論依據(jù)。
關(guān)于受Ost影響的鈉通道的狀態(tài),綜合整個實驗結(jié)果,作者發(fā)現(xiàn)Ost對激活、失活、失活后恢復(fù)等過程均有影響。說明該藥不僅作用于鈉通道的靜息狀態(tài)或激活狀態(tài),對通道的失活也有抑制作用,故Ost對鈉通道的不同狀態(tài)都是存在一定的抑制作用,只是親和力不同或者結(jié)合與解離的速度不同[15]。作者通過直接在細(xì)胞外液中加入藥物來觀察Ost對鈉通道的影響,還可以考慮通過在電極內(nèi)液中加入同樣濃度的Ost來比較內(nèi)、外部給藥作用的差別,以此來判斷藥物與通道的結(jié)合位點是更靠近膜內(nèi)側(cè)還是外側(cè)。
Ost為中國傳統(tǒng)中藥蛇床子中的提取物,研究發(fā)現(xiàn)其對心血管系統(tǒng)的影響,包括其抗心律失常作用。Ost對氯仿誘發(fā)的小鼠室顫、CaCl2誘發(fā)的大鼠室顫均有明顯的預(yù)防作用,對烏頭堿誘發(fā)的大鼠心律失常也有療效。Fabio F等[16]實驗結(jié)果表明,Ost對血管平滑肌細(xì)胞的Ca2+通道具有抑制作用。關(guān)于Ost的確切作用機(jī)制或其對離子通道的直接影響尚不清楚。由于心律失常發(fā)生的機(jī)制非常復(fù)雜,有眾多的離子通道參與,臨床上的一系列抗心律失常藥物可分別從鈉通道、鉀通道和鈣通道等途徑發(fā)揮相關(guān)的作用。因此,本研究從心肌鈉離子通道方面探討Ost對該通道的影響具有重要的現(xiàn)實意義。
參考文獻(xiàn)
[1]張開臣, 李 梅. 蛇床子總香豆素組分的含量測定[J]. 中國中醫(yī)藥信息雜志2010, 17(5): 45.
[2]Yao L, Lu P, Li Y, et al. Osthole relaxes pulmonary arteries through endothelial phosphatidylinositol 3-kinase/Akt-eNOS-NO signaling pathway in rats[J]. Eur J Pharmacol, 2013, 699 (1/2/3): 23.
[3]沈麗霞, 金樂群, 張丹參, 等. 蛇床子素的抗實驗性心律失常作用[J]. 張家口醫(yī)學(xué)院學(xué)報, 2001, 18(1): 9.
[4]Zhou F, Zhong W, Xue J, et al. Reduction of rat cardiac hypertrophy by osthol is related to regulation of cardiac oxidative stress and lipid metabolism[J]. Lipids 2012, 47(10): 987.
[5]楊大朋, 王海嘯, 彭延延, 等. 蛇床子素對人乳腺癌細(xì)胞增殖、細(xì)胞周期及凋亡的影響[J]. 南京師大學(xué)報, 2010, 33(2): 76.
[6]宋美卿, 馮瑪莉, 賈力莉, 等. 蛇床子的鎮(zhèn)靜催眠作用、宿醉反應(yīng)和耐受性[J]. 現(xiàn)代藥物與臨床, 2010, 25(1): 41.
[7]馮 鋒, 楊建宏, 張俊威. 蛇床子提取物抗解脲支原體作用的研究[J]. 時珍國醫(yī)國藥, 2008, 19(9): 2105.
[8]李 寧, 楊小紅. 蛇床子有效成分對金黃色葡萄球菌凝固酶活性的影響[J]. 廣東醫(yī)學(xué), 2007, 28(6): 876.
[9]劉明平, 吳依娜, 韋品清, 等. 蛇床子止癢有效組分篩選及作用機(jī)制研究[J]. 中醫(yī)藥導(dǎo)報, 2009, 15(7): 66.
[10]Yuan C H, Li B X, Sun LR, et al. Effect of Osthole on L-and N-type Calcium Channels[J]. Progress Modern Biomedcine, 2011, 11(15): 2806.
[11]Nikolaidou T, Cai XJ, Stephenson RS, et al. Congestive Heart Failure Leads to Prolongation of the PR Interval and Atrioventricular Junction Enlargement and Ion Channel Remodelling in the Rabbit[J]. PLoS One, 2015, 10(10): 1.
[12]劉泰搖. 心肌細(xì)胞電生理學(xué)[M]. 北京: 人民衛(wèi)生出版社, 2005: 2.
[13]Monika S S, Bartosz G, Adam S, et al. Isolated heart perfusion according to Langendorff—Still viable in the new millennium [J]. Journal of Pharmacological and Toxicological Methods, 2007, 55(2): 113.
[14]Li SJ, Sun LR, Yuan C H. Effects of osthole on sodium channel in rat ventricular cardiomyocytes [J]. Journal of mathematical medicine, 2011, 24(3): 286.
[15]Hondeghem L M, Katzung B G. Time and voltage-dependent interactions of antiarrhythmic drugs with cardiac sodium channels[J]. Biochim Biophys Acta, 1977, 472(3/4): 373.
[16]Fabio Fusi, Giampietro Sgaragli, Le MH, et al. Mechanism of osthole inhibition of vascular Cav1. 2 current[J]. European Journal of Pharmacology, 2012, 680(1/2/3): 22.
Effect of osthole on sodium channels of ventricular myocytes in rat
XU Zhengxin, ZHENG Xue, ZHU Lei
(MedicalCollegeofYangzhouUniversity,Yangzhou,Jiangsu, 225001)
ABSTRACT:ObjectiveTo explore the effect of osthole on sodium channel current of ventricular myocytes in rats. MethodsCardiomyocytes were enzymatically dissociated from SD rats by Langendorrf with constant pressure and temperature. Whole-cell patch clamp techniques were used to evaluate the changes of sodium channel current characteristics at different concentrations of osthole. ResultsOsthole (>100 μmol/L) inhibited sodium current in a concentration-dependent (500 μmol/L almost blocked completely) and time-dependent manner (it blocked sodium current quickly and the strongest inhibition appeared 10 minutes later). The I-V curves of the sodium current raised obviously with the peak current density from (-29.8±4.21) pA/pF to (-20.1±3.7) pA/pF and (-17.7±5.7 ) pA/pF (P<0.01) at concentration of 100 μmol/L and 300 μmol/L, but the activation potential and peak potential did not change. In addition, osthole at different concentration caused significant hyperpolarizing shifts in voltage-dependent channel inactivation of I(Na). 100 μmol/L and 300 μmol/L Ost shifted the V(1/2) of I(Na) from (-81.10±0.35) mV in control to (-91.62 ±1.06) mV and (-100.60±0.21) mV. Ost could significantly prolong the sodium channel recovery time from inactivation with τ increasing from (15.09±0.78) ms in control to (23.41±1.23) ms and (31.62±0.97) ms (n=10, P<0.01). ConclusionOsthole can significantly inhibit sodium current of ventricular myocytes in rat.
KEYWORDS:osthole; sodium channel; ventricular myocytes; rats; patch clamp
中圖分類號:R 542.2
文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號:1672-2353(2016)07-001-05
DOI:10.7619/jcmp.201607001
基金項目:國家自然科學(xué)基金資助項目(NO. 31071171)
收稿日期:2015-11-20