• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    微囊藻群體形成影響因子及機理

    2016-04-10 16:29:32靜李根保
    水生生物學(xué)報 2016年2期
    關(guān)鍵詞:柵藻微囊藍(lán)藻

    董 靜李根保

    (1. 河南師范大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院, 新鄉(xiāng) 453007; 2. 中國科學(xué)院水生生物研究所, 淡水生態(tài)與生物技術(shù)國家重點實驗室, 武漢 430072)

    綜述

    微囊藻群體形成影響因子及機理

    董 靜1李根保2

    (1. 河南師范大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院, 新鄉(xiāng) 453007; 2. 中國科學(xué)院水生生物研究所, 淡水生態(tài)與生物技術(shù)國家重點實驗室, 武漢 430072)

    富營養(yǎng)化導(dǎo)致的湖泊、水庫藍(lán)藻水華帶來了一系列環(huán)境和生態(tài)問題。微囊藻群體形成, 在水體表面的聚集是形成水華的重要策略之一。微囊藻群體形成有效抵御了草食性動物攝食、病毒、細(xì)菌的侵害, 耐受不良環(huán)境因子(紫外輻射、高光強、重金屬等)能力顯著增強。文章探討了野外微囊藻群體占優(yōu)勢的機制并綜述了影響微囊藻群體形成的外源因子及作用機理, 包括非生物因子(營養(yǎng)、溫度、光照、重金屬、微囊藻毒素、乙醛酸)、生物因子(草食性動物、細(xì)菌、魚類、藻類)?;诂F(xiàn)有研究, 本綜述還對未來研究進行展望:(1)非生物因子與生物因子協(xié)同效應(yīng)對藻類形態(tài)影響研究; (2)人類活動對浮游藻類形態(tài)及動態(tài)的影響研究;(3)藻類形態(tài)對沉水植物的響應(yīng)在未來淡水生態(tài)系統(tǒng)修復(fù)中的應(yīng)用; (4)促進藻類群體形成的胞外多糖分泌在未來工業(yè)生產(chǎn)中的作用。

    藍(lán)藻水華; 微囊藻; 群體形成; 非生物因子; 生物因子

    由于水體富營養(yǎng)化, 世界范圍內(nèi)的湖泊、池塘、河流和水庫正承受著藍(lán)藻水華威脅: 水體溶氧量的降低、物種多樣性降低、異味毒素的產(chǎn)生以及水體飲用價值、景觀價值、生態(tài)服務(wù)功能的下降。在野外水體中, 水華優(yōu)勢種多以群體形態(tài)存在,以我國淺水湖泊太湖、巢湖、滇池為例, 微囊藻聚集成大個體群體, 形成有害藍(lán)藻水華。然而在室內(nèi)長期培養(yǎng)后, 微囊藻主要以單細(xì)胞或者成對細(xì)胞形態(tài)存在[1]。群體特征的消失表明: 在室內(nèi)培養(yǎng)過程中, 促進群體形成的因子在培養(yǎng)基中不存在。環(huán)境條件的變化導(dǎo)致了藻類形態(tài)的改變, 因此, 要了解這種形態(tài)改變的機制, 也就需要了解外界各種環(huán)境因素對其影響。本文綜述了群體形態(tài)在藍(lán)藻水華形成方面扮演的重要角色, 并探討了影響微囊藻群體形成的外源因子及其作用機理。

    1 野外微囊藻群體占優(yōu)勢機制

    藍(lán)藻群體形態(tài)不僅有利于抵擋浮游動物攝食,免受病毒、細(xì)菌侵害[2], 還具有一些其他生態(tài)優(yōu)勢:(1)群體大小與藻類晝夜遷移速率呈正相關(guān), 晝夜遷移或浮力調(diào)控使得藍(lán)藻能夠調(diào)節(jié)自身在水體中的最優(yōu)位置, 從而利用光照或者營養(yǎng)[3]; (2)群體微囊藻(Microcystis sp.)吸收磷的效率顯著高于單細(xì)胞[4];(3)群體微囊藻抗紫外輻射、抗高光強、抗化學(xué)物質(zhì)(CuSO4、綠霉素、直鏈烷基苯磺酸)脅迫能力明顯高于單細(xì)胞[5—8]。

    1.1 具有光保護效應(yīng)

    光抑制作用是浮游藻類保護光合器官的策略之一。太湖微囊藻水華期間, 群體形成對微囊藻細(xì)胞具有光保護效應(yīng), 能夠降低高光強下的光抑制[9]。藍(lán)藻具有3種抵抗光抑制的機制[10]。一是藍(lán)藻能夠介導(dǎo)細(xì)胞色素氧化酶光合作用, 具有另一種電子傳遞通道。二是群體藍(lán)藻能夠反射高光強。三是藍(lán)藻細(xì)胞葉綠素配額誘導(dǎo)色素自篩選。

    有研究發(fā)現(xiàn)群體微囊藻的最大電子傳遞速率(ETRmax)、半飽和光強(Ik)顯著高于單細(xì)胞, 表明群體光合能力高于單細(xì)胞, 尤其是在高光強下。群體還能夠有效抵抗黑暗損失和強光強, 因為群體最大熒光效率(Fv/Fm)和非光化學(xué)淬滅(NPQ)顯著高于單細(xì)胞。NPQ可能是避免光破壞的重要機制[11]。

    1.2 有利于毒素含量的增加

    群體形成促進藻類分泌毒素。相較于單細(xì)胞,大型群體微囊藻分泌的微囊藻毒素含量以及mcy B+基因比例顯著提高[12]。這與塔瑪亞歷山大藻Alexandrium tatmarensezai 類似, 毒素分泌增加可能也是抵擋攝食的有效策略之一[13]。

    1.3 抵御攝食

    藻類群體形成, 使得攝食者萼花臂尾輪蟲Brachionus calyciflorus、大型溞Daphnia magna、長額象鼻溞Bosmina longirostris和棘爪網(wǎng)紋蚤Ceriodaphnia reticulata的攝食率顯著降低[14]。

    2 微囊藻群體形成機制研究

    許多浮游藻類存在表型可塑性(Phenotypic plasticity), 即一種基因型在不同的環(huán)境條件下呈現(xiàn)出多種表型的現(xiàn)象。浮游藻類可能產(chǎn)生不同的表型來應(yīng)對外界環(huán)境條件的變化, 改變自身形態(tài)形成群體或集聚是最常見的一種形式。

    藻類形成群體有兩種機制: 一是在繁殖過程中, 子代細(xì)胞沒有從母細(xì)胞里面脫離下來; 另一個是單細(xì)胞的集聚。有研究表明太湖銅綠微囊藻群體以及柵藻群體形成, 并不是單細(xì)胞的黏連, 而是屬于第一種機制[15,16]。在母細(xì)胞細(xì)胞壁里, 母細(xì)胞分裂成大量單個細(xì)胞, 它們或是以單細(xì)胞形式釋放出來或是以群體形式存在。群體里的細(xì)胞數(shù)取決于親本細(xì)胞原生質(zhì)含量必須有足夠的原生質(zhì)才能滿足細(xì)胞分裂的需要, 因此群體形成的前提是藻類的正常生長[17]。

    有很多非生物因子和生物因子在影響浮游藻類形態(tài)方面扮演重要角色, 尤其是群體和單細(xì)胞形態(tài)的轉(zhuǎn)變。盡管有很多關(guān)于微囊藻群體形成機制的研究, 但是仍然沒有足夠的數(shù)據(jù)來完全解釋群體形成的原因。胞外多糖(EPS)由C、H、O構(gòu)成, 是構(gòu)成群體微囊藻膠被的主要成分, 在藻類聚集方面扮演重要角色, 有研究表明, 在群體和單個銅綠微囊藻中, 其單糖含量沒有顯著差異, 群體微囊藻的黏連主要是由于多糖總含量的增加, 而不是多糖成分的改變。多糖含量與很多因子相關(guān), 這些因子可能通過影響多糖分泌進而影響藻類的群體形成。

    2.1 非生物因子

    營養(yǎng) 在營養(yǎng)充足的情況下, 藻類光合產(chǎn)物轉(zhuǎn)換成蛋白質(zhì)、核酸以及ATP用于細(xì)胞分裂、藻類生長和正常代謝活動, 在這種情況下, EPS積累減少, 限制生長的群體形態(tài)減少[18]。但是當(dāng)營養(yǎng)不足時, 微囊藻分泌胞外多糖含量增加, 例如氮(N)或者磷(P)饑餓能夠促進EPS的合成, 從而促進藻類群體形成[19]。

    除微囊藻外, 研究表明高C:N或C:P條件下, 即氮不足或磷缺乏時, 有利于衣藻Chlamydomonas mexicana[20]、藍(lán)桿藻Cyanothece sp.[21]、魚腥藻Anabaena sp.[22]、新月柱鞘藻Cylindrotheca closterium[23]以及具鞘微鞘藻Microcoleus vaginatus[24]EPS分泌的增加。因為氮不足或磷缺乏時, 藻類光合作用固定的有機物主要以不含氮磷的碳水化合物形式存在, 胞內(nèi)碳水化合物的過量累積導(dǎo)致其逐步向胞外轉(zhuǎn)移釋放, 使得胞外多糖EPS含量顯著升高, 從而有利于藻類群體形成。

    目前關(guān)于氮或磷對藻類形態(tài)影響還存在一定的爭議。有學(xué)者認(rèn)為席藻Phormidium多糖含量對磷濃度沒有響應(yīng)[25], 同樣Pereira等[26]發(fā)現(xiàn)P濃度的增加對藻類胞外聚合物含量影響很小。近期研究又發(fā)現(xiàn), 葛仙米Nostoc sphaeroides在50和250 μmol/ L磷培養(yǎng)下, 62%—73%形成了群體, 但是在0.5和5 μmol/L磷培養(yǎng)下, 只有10%—15%的葛仙米形成群體[27], 這又表明較高磷濃度利于藻類群體形成。此外, Otero和Vincenzini[19]、Suresh Kumar等[28]研究認(rèn)為氮濃度的增加能夠促進藻類EPS的合成。

    通過已有研究結(jié)果可以看出藍(lán)藻多糖產(chǎn)生對外界營養(yǎng)水平的響應(yīng)具有藻株依賴性, 可能是不同藻株產(chǎn)生多糖的生理機制不同。此外, 究竟在藻類單細(xì)胞-群體形態(tài)轉(zhuǎn)變過程中, 營養(yǎng)閾值在怎樣的一個范圍內(nèi)是值得今后密切關(guān)注的。因為這對研究藍(lán)藻水華生理生態(tài)學(xué)特征具有重要的意義。未來的水體富營養(yǎng)化究竟對藻類形態(tài)是一個怎樣的影響?通過相關(guān)研究能夠為控制藍(lán)藻水華提供一定的科學(xué)參考, 例如我們可以通過調(diào)控營養(yǎng)水平改變微囊藻形態(tài), 讓野外水體中微囊藻由群體形態(tài)慢慢裂解, 從而破壞其聚集優(yōu)勢。

    溫度 Aaronson[29]認(rèn)為低溫能夠增加單位細(xì)胞碳水化合物含量。胞內(nèi)積累的過量多糖可能逐漸釋放到胞外, 導(dǎo)致胞外多糖含量增加(Extracellular polysaccharides)。目前關(guān)于溫度對藻類形態(tài)影響研究還相對較少, 有研究認(rèn)為低溫有利于柵藻、海洋硅藻、Bellerochea、棕囊藻P. globosaand和P. antarctica群體形成, 海洋優(yōu)勢種類在高溫下黏液分泌減少、群體比例降低[30]。與營養(yǎng)影響相似,溫度對藻類形態(tài)影響也存在爭議。Moreno等[22]研究發(fā)現(xiàn)魚腥藻Anabaena sp.胞外多糖含量隨溫度升高顯著增加。

    迄今為止, 溫度對微囊藻形態(tài)影響研究還未見報道。楊州和李佳佳[31]推測溫度可能通過影響胞外多糖的分泌從而在促進微囊藻群體形成方面扮演著重要角色。面對氣候變暖的巨大威脅, 此方面的研究也是必不可少的。通過溫度對微囊藻形態(tài)影響研究, 能夠進一步為微囊藻水華的控制提供科學(xué)依據(jù)。

    光照 在低光強下, 浮游藻類細(xì)胞主要合成蛋白質(zhì)[32], 高光強能夠促進碳水化合物的積累, 從而促進藻類群體形成[19,33]。肖艷[34]采用梯度光強[0、10、25、80、120和200 μmol/(m2·s)]培養(yǎng)6株微囊藻, 結(jié)果表明隨著光強的增加, 6種微囊藻群體大小顯著增加。除了微囊藻, 研究報道隨著光強的增加, 葛仙米(Nostoc sphaeroides)、柵藻Scenedesmus、顆粒直鏈藻Melosira granulata、彎角藻Eucampia群體形成顯著增加[35—38]。這些可能是高光強下藻類細(xì)胞快速分裂造成的。光強對浮游藻類群體建成影響在野外水體中也得到了證實, Naselli-Flores等[39]指出在富營養(yǎng)化水體中, 光照是浮游藻類形成聚集體的重要因子; Naselli-Flores和Barone[40]的研究表明, 在地中海水庫的不同水層中,藻類形態(tài)與獲得的光強有重要關(guān)系。這表明光強對浮游藻類群體形成具有重要影響。

    除了高光強影響下碳水化合物的積累, 細(xì)胞疏水性在微囊藻單細(xì)胞-群體形態(tài)轉(zhuǎn)變過程中也扮演重要角色, 單細(xì)胞具有親水性, 群體轉(zhuǎn)向單細(xì)胞時,細(xì)胞疏水性顯著降低。Yang等[41]認(rèn)為高光強能夠降低藻類細(xì)胞疏水性, 從而影響其群體形成。群體微囊藻比單細(xì)胞具有更厚的多糖外被[1], 微囊藻單細(xì)胞低疏水性可能與薄的多糖外被有關(guān)[42]。

    重金屬 重金屬例如鉛、鎘、銅、鋅是微囊藻水華底泥表層的常見污染物, 它們能夠通過沉積物的再懸浮進入水柱中[43]。銅綠微囊藻會持續(xù)承受重金屬脅迫[44], 促進EPS的合成。Bi等[45]研究發(fā)現(xiàn)高濃度Pb(Ⅱ)(20.0和40.0 mg/L)處理銅綠微囊藻能夠顯著提高藻類可溶性胞外多糖含量和結(jié)合態(tài)胞外多糖含量, 促進中小型群體形成, 而且高濃度更顯著。這表明重金屬可能在自然水體中銅綠微囊藻水華形成過程中扮演著重要角色。除微囊藻外, 重金屬在促進其他藍(lán)藻EPS分泌方面也具有重要作用, Sharma等[46]研究表明Cr(VI)積累增加了黏球藻Gloeocapsa calcarea 和點狀念珠藻Nostoc punctiforme EPS含量; 集胞藻Synechocystis sp.在Cd(Ⅱ)處理后EPS含量也顯著增加[47]。

    微囊藻毒素 在藍(lán)藻水華發(fā)生的水體, 草食性動物減少或消失, 這部分可能是由于毒素的影響。有研究表明銅綠微囊藻能夠分泌毒素抵抗枝角類的攝食[48], 而棕鞭毛蟲能夠降解毒素, 所以銅綠微囊藻必須進化出其他的防御策略——群體形成, 從而抵御棕鞭毛蟲的攝食。

    一個有趣的現(xiàn)象是: 一方面微囊藻群體形成有利于毒素基因表達(dá)和毒素的分泌[12], 而另一方面在微囊藻毒素影響下, 又進一步促進EPS的分泌、微囊藻群體形成。Sedmak和Eler?ek[49]發(fā)現(xiàn)3種微囊藻毒素能夠促進微囊藻群體形成, 細(xì)胞生物體積、光合色素含量、胞外多糖增加。分泌毒素和群體形態(tài)協(xié)同作用使得微囊藻在水體中持續(xù)占優(yōu)勢。

    乙醛酸 乙醛酸, 促進碳代謝的化學(xué)物質(zhì),有利于藻類多糖含量增加, 這在黏合細(xì)胞聚集形成群體方面扮演著重要角色。乙醛酸能夠誘導(dǎo)一些藍(lán)藻多糖含量的增加, 例如魚腥藻Anabaena cylindrica[50]、Cyanospira capsulate[51]在添加乙醛酸處理時, 導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)多糖聚集以及可溶性胞外多糖分泌, 總的多糖含量隨著乙醛酸濃度增加而升高。同樣, 乙醛酸處理能夠促進柵藻群體形成, 群體大小與多糖含量成正相關(guān)[52]。

    2.2 生物因子

    草食性動物 環(huán)境因子影響浮游藻類的表型, 藻類面臨的最危險環(huán)境是草食性動物的攝食。浮游藻類并不是毫無抵御能力、輕易被攝食的食物顆粒。在自然水體中, 草食性動物和微囊藻通常是共存的, 它們可能也是誘導(dǎo)微囊藻群體形成的重要因子[53]。藻類降低被捕食風(fēng)險的有效方式之一是群體大小的增加, 因為淡水浮游動物主要以2—30 μm大小的藻類為食[54]。

    Ha 等[55]研究表明枝角類多刺裸腹蚤(Moina macrocopa)攝食銅綠微囊藻(Microcystis aeruginosa)時, 能誘導(dǎo)其群體形成。原生動物棕鞭毛蟲(Ochromonas sp.)誘導(dǎo)銅綠微囊藻大型群體形成, 群體形成后單個細(xì)胞的胞外多糖(EPS)以及偽空泡顯著增加, 但是單糖含量并沒有顯著變化[1]。滴蟲Monas guttula能有效誘導(dǎo)微囊藻群體形成[56]。楊桂軍等[57]發(fā)現(xiàn)棘爪網(wǎng)紋蚤Ceriodaphnia cornuta 攝食銅綠微囊藻時, 也能誘導(dǎo)其群體形成。

    除微囊藻外, 其他藻類在草食性動物誘導(dǎo)下的群體響應(yīng)也得到了廣泛研究。例如藻青蛋白豐富的雙色藻Cyanobium sp.在棕鞭毛蟲攝食壓力下, 由單細(xì)胞形態(tài)聚集成40 mm的微小群體[58]; 小球藻Chlorella vulgaris在棕鞭毛蟲Ochromonas vallescia誘導(dǎo)下形成8-細(xì)胞群體[59]; 衣藻Chlamydomonas reinhardtii在萼花臂尾輪蟲Brachionus calyciflorus誘導(dǎo)下形成四集藻形態(tài)[60]; 枝角類大型溞Daphnia能誘導(dǎo)空星藻Coelastrum sp.[61]、集星藻Actinastrum sp.[62]、柵藻Scenedesmus群體形成[63]。

    目前關(guān)于草食性動物誘導(dǎo)藻類群體形成機理尚不完全明確, 然而草食性動物分泌的化學(xué)信息物質(zhì)(Infochemical)-種間激素-Kairomone可能是維持藻類群體形態(tài)的關(guān)鍵因子之一。Von Elert和Franck[64]研究認(rèn)為誘導(dǎo)柵藻群體形成的化學(xué)物質(zhì)是非揮發(fā)性的、具有熱穩(wěn)定性的低分子量有機質(zhì),活性部分是中等親脂性的烯羧酸。Lürling和Beekman[65]認(rèn)為浮游動物分泌的化學(xué)活性物質(zhì)與普遍使用的陰離子表面活性劑相似(FFD-6、介質(zhì)十二烷基硫酸鹽), 能誘導(dǎo)斜生柵藻群體形成。Van Holthoon等[66]首次嘗試分析了大型溞分泌的化學(xué)信息物質(zhì)。Yasumoto 等通過液相層析法從10 kg大型溞樣品中分離出了8種硫代脂肪酸, 在低濃度(<1 ng/ mL)的條件下就具有生物活性。柵藻對這8種硫代脂肪酸均具有響應(yīng), 該類化學(xué)信息物質(zhì)的兩性分子特征對其活性具有重要作用, 然而迄今為止, 沒有證據(jù)證明這些物質(zhì)是由活體大型溞分泌的,而且與小型捕食者例如輪蟲分泌的硫代脂肪酸還未進行對比[67,68]。 此外, 大型溞分泌的誘導(dǎo)柵藻群體形成的物質(zhì)是否對其他柵藻有相同效應(yīng), 而且其他溞類或者其他草食性動物是否會分泌相同或者相似的群體誘導(dǎo)物質(zhì)尚不清楚, 在微囊藻群體形成過程中扮演重要角色的化學(xué)信息物質(zhì)還有待進一步分析。

    細(xì)菌 細(xì)菌和有害藻類之間的相互作用對闡明有害藻類水華動態(tài)具有重要意義。有研究表明異養(yǎng)型細(xì)菌群落在微囊藻水華發(fā)生扮演重要角色, 紫桿菌屬Porphyrobacter、黃桿菌屬Flavobacteriaceae、黃色桿菌Xanthobacter autotrophicus可能是誘導(dǎo)群體形成的種類[89,70]。在有菌培養(yǎng)下, 銅綠微囊藻ETRmax增加說明異養(yǎng)細(xì)菌對銅綠微囊藻的PSⅡ有促進作用, 因而細(xì)胞聚集后, 銅綠微囊藻光合活性增強, 解釋了群體微囊藻光合參數(shù)[4]、藻類生長率、Chl.a含量的增加, 這些生理特征使得微囊藻能夠在水體中占優(yōu)勢。

    Shen等[70]研究發(fā)現(xiàn)在群體微囊藻細(xì)胞中, 可溶性胞外多糖含量濃度增加, 表明異養(yǎng)細(xì)菌群落在細(xì)胞聚集和黏液形成方面扮演重要角色。群體銅綠微囊藻光合活性增強, 因此光合產(chǎn)物(碳水化合物含量)增加, 這與Fogg[71]結(jié)果一致, 快速生長的浮游藻類能將同化的光合產(chǎn)物分泌到水環(huán)境中。

    魚類 濾食性硬骨魚類潘氏細(xì)鯽Tanichthys albonubes、青鳉Oryzias latipes濾液也能誘導(dǎo)銅綠微囊藻群體形成[69]。

    藻類 在淡水生態(tài)系統(tǒng)中, 信息流不僅存在于攝食者與被攝食者之間, 藻類-藻類之間的相互作用也是信息化學(xué)活性物質(zhì)分泌的重要誘導(dǎo)力之一。

    以往研究主要關(guān)注的藻類相互作用是對生長(生物量、光合活性)的影響, 例如柱孢藻Cylindrospermopsis raciborskii[72]、水華魚腥藻Anabaena flosaquae[73]、常絲藻Tychonema bourrellyi[74]、斜生柵藻Scenedesmus obliquus[75]能分泌活性物質(zhì)抑制銅綠微囊藻生長。然而銅綠微囊藻濾液能夠促進斜生柵藻[75]、水華魚腥藻[73]的生長。發(fā)揮作用的活性物質(zhì)包括硫化物、萘系衍生物、雪松烯衍生品、醌類、酚類衍生物、聯(lián)苯衍生物、蒽衍生物以及鄰苯二甲酸酯類[73]。

    對于藻類-藻類相互作用誘導(dǎo)的形態(tài)改變也有報道, 但是相關(guān)研究還幾乎處于空白。僅有兩個報道, Mello等[72]通過模擬實驗表明柱孢藻Cylindrospermopsis raciborskii 能誘導(dǎo)銅綠微囊藻群體形成;絲狀綠藻滸苔Uronema confervicolum (Ulotrichales)能誘導(dǎo)四尾柵藻 Desmodesmus quadrispina (Chlorococcales) 群體形成[76], 隨著四尾柵藻群體形成, 沉降率增加, 減小了對滸苔的遮擋。藻類相互作用誘導(dǎo)的形態(tài)改變也是減少競爭的生態(tài)策略之一。關(guān)于此方面的研究還有待進一步開展, 從而為自然水體藻類群體形成提供依據(jù)。

    3 討論與展望

    世界范圍內(nèi)富營養(yǎng)淡水水體中藍(lán)藻水華頻繁發(fā)生, 關(guān)于藍(lán)藻水華形成的生態(tài)生理特征以及占優(yōu)勢的機制得到了廣泛的研究。具有異形胞的種類例如魚腥藻、束絲藻、柱胞藻能夠固定N2[77]。因此認(rèn)為, 它們的優(yōu)勢在于能夠固定N2, 一些不能固定N2的種類, 例如微囊藻, 能夠快速吸收可溶性的無機氮[78], 高效的氮吸收能力, 以及強大的磷儲存能力[79]解釋了為什么藍(lán)藻能夠在N限制的水體占優(yōu)勢。近年來, 越來越多的研究發(fā)現(xiàn)微囊藻群體形態(tài)在藻類聚集形成水華方面扮演重要角色, 正如棕囊藻能在海洋中占優(yōu)勢歸功于它們能夠形成群體, 群體形成使得藻類抵御攝食、病毒、細(xì)菌、抗脅迫能力增強。以我國淺水湖泊太湖、巢湖、滇池為例, 微囊藻聚集成大個體群體, 形成有害藍(lán)藻水華。藍(lán)藻水華的暴發(fā)給湖泊生態(tài)系統(tǒng)帶來嚴(yán)重的危害。然而在室內(nèi)培養(yǎng)過程中, 群體特征逐漸消失,因而推測在自然水體中可能存在誘導(dǎo)群體形成的因子。誘導(dǎo)微囊藻群體形成的環(huán)境因子研究得到了廣泛關(guān)注, 包括上述的溫度、光照、營養(yǎng)、攝食、細(xì)菌可能通過影響微囊藻EPS合成和分泌從而誘導(dǎo)藻類群體形成。

    3.1 野外綜合環(huán)境因子誘導(dǎo)群體形成

    室內(nèi)誘導(dǎo)的微囊藻群體與野外水體中有很大的不同, 無論是在大小還是形狀[80], 例如棕鞭毛蟲誘導(dǎo)的銅綠微囊藻群體僅僅是由幾個或者幾十個銅綠微囊藻細(xì)胞構(gòu)成的, 遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于自然水體中銅綠微囊藻細(xì)胞群體[80]。這說明棕鞭毛蟲誘導(dǎo)的群體形成是非常微弱的。野外環(huán)境中的各種非生物因子, 例如溫度、光照、營養(yǎng)和風(fēng)力, 在銅綠微囊藻群體形成方面可能也扮演重要角色[80]。

    另外, 在自然條件下, 食草性動物的種群密度變化很大, 使得它們分泌的化學(xué)信號物質(zhì)的濃度變化也是很大的, 生物降解使得化學(xué)信號隨著時間的推移而減弱。因而野外大型藻類群體的維持還受到其他環(huán)境因子的影響, 進一步說明藻類群體形成可能是非生物因子和生物因子協(xié)同效應(yīng)的結(jié)

    果[15, 81]。

    迄今為止, 很少有研究報道生物因子和非生物因子是如何相互作用影響浮游藻類形態(tài)的[82,83]。非生物因子對藻類的防御型表達(dá)可能具有重要影響, 這些因子如何調(diào)節(jié)物種間相互作用對研究浮游生物群落生態(tài)學(xué)具有重要意義。Wang等[84]研究發(fā)現(xiàn)低氮水平下, 棕鞭毛蟲對銅綠微囊藻群體形成影響增強。該結(jié)果對預(yù)測野外水體中攝食和營養(yǎng)濃度對銅綠微囊藻群體形成影響有重要意義。

    淡水生態(tài)系統(tǒng)正承受著富營養(yǎng)化和氣候變化的雙重影響, 因而研究非生物因子和生物信息物質(zhì)的相互作用對預(yù)測環(huán)境變化如何影響浮游生物動態(tài)具有重要意義。群體形成后, 氮或磷的吸收如何受到影響需要進一步研究, 該研究對了解人類活動對水生生態(tài)系統(tǒng)影響具有重要意義。

    此外, 目前關(guān)于環(huán)境因子(溫度、光照、營養(yǎng)、攝食、細(xì)菌)誘導(dǎo)的藻類群體形成主要是通過一對一的實驗。藻類形態(tài)可塑性應(yīng)該朝向另一個新階段發(fā)展, 應(yīng)該從群落水平以及整個生態(tài)系統(tǒng)水平進行研究[142]。其他環(huán)境因子例如pH、溶解氧等對群體形成影響研究也是必要的。

    3.2 人類活動對藻類形態(tài)影響

    除草劑廣泛用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中, 在表層水體中往往能監(jiān)測到其存在[85]。Lürling[80]認(rèn)為農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中添加的除草劑賽克津能夠抑制斜生柵藻Scenedesmus obliquus從單細(xì)胞向群體的轉(zhuǎn)變。單細(xì)胞比例的增加顯著提高了柵藻被攝食者攝食的機率。

    人類活動造成的溫室氣體排放增加, 使得全球氣溫升高。模型預(yù)測表明, 至2017—2100年, 全球平均溫度將升高1.5—5.8℃, 導(dǎo)致海面溫度升高[87],從而改變浮游藻類動態(tài)。研究表明: 溫度升高能夠使得P. globosa群體變小或沒有群體形成[88], 然而藻類總生物量顯著升高。低溫促進P. globosaand和P. antarctica群體形成, 溫度的升高能降低群體形成和黏液分泌, 海面溫度進一步升高可能顯著改變以棕囊藻占優(yōu)勢的水生生態(tài)系統(tǒng)的生態(tài)及生物地理化學(xué)循環(huán), 能進一步導(dǎo)致群體降解[88]。

    目前, 關(guān)于人類活動造成的農(nóng)藥排放、氣候變暖、重金屬污染、富營養(yǎng)化對淡水生態(tài)系統(tǒng)浮游藻類形態(tài)影響研究還罕見報道。尤其是水華優(yōu)勢種類—微囊藻有怎樣的響應(yīng)值得密切關(guān)注和廣泛研究。這些研究將對藍(lán)藻水華控制提供進一步的科學(xué)參考。

    3.3 生態(tài)修復(fù)

    在野外調(diào)查中發(fā)現(xiàn), 高生物多樣性水生植物存在情況下, 有害浮游藻類(銅綠微囊藻)往往生物量較低[89]。迄今為止, 已經(jīng)有大量研究報道表明沉水植物例如金魚藻(Ceraophyllum demersum)[90]、苦草(Vallisneria gigantea)、大茨藻(Najas marina)、輪藻(Chara sp.)、狐尾藻(Myriophyllum spicatum)[91]、伊樂藻(Elodea sp.)[92]能夠顯著抑制藍(lán)藻, 尤其是抑制微囊藻的生長及生物量的增加。正因為此, 沉水植物在水體生態(tài)修復(fù)中扮演著極其重要的角色。

    我國淺水湖泊滇池沉水植物占優(yōu)勢時期, 浮游藻類以柵藻、盤星藻、空星藻等綠藻門種類為主[93]。有學(xué)者認(rèn)為水生植物顯著提高附著浮游動物生物多樣性和生物量[94]。那么綠藻是如何抵御浮游動物的攝食, 從而維持其在水生植物占優(yōu)勢水體的豐富度呢?Gross等[95]提出, 除了藻類生物量,水生植物分泌的活性物質(zhì)還可能影響藻類細(xì)胞形態(tài)。Mulderij等[96]研究認(rèn)為, 水劍葉Stratiotes aloides 培養(yǎng)液能夠促進斜生柵藻群體形成, 這是首次報道的沉水植物誘導(dǎo)的柵藻群體形成研究。隨后, 本文作者通過金魚藻-斜生柵藻共培養(yǎng)以及濾液培養(yǎng)實驗證明, 金魚藻也能夠分泌活性物質(zhì)促進斜生柵藻[97]。沉水植物可能通過誘導(dǎo)綠藻群體形成, 一方面提高了綠藻在水體中抵抗攝食的能力;另一方面群體形成使得綠藻沉降水底比例增加, 緩解了與沉水植物之間的競爭; 從而維持了其在自然水體中的生物量和優(yōu)勢度。

    水生植物分泌的化感活性物質(zhì)對浮游藻類形態(tài)影響研究能夠補充生物間相互作用內(nèi)容。目前關(guān)于水生植物對藻類形態(tài)影響研究還幾乎處于空白。根據(jù)藍(lán)藻和綠藻對沉水植物的不同響應(yīng)機制能夠為水體藻類群落結(jié)構(gòu)調(diào)控及水生態(tài)修復(fù)提供重要科學(xué)依據(jù)。

    3.4 群體形成經(jīng)濟與生態(tài)價值

    從20世紀(jì)50年代早期至今, 發(fā)現(xiàn)100多種藍(lán)藻包括銅綠微囊藻, 能夠分泌胞外多糖(EPS)[98—99]。藍(lán)藻的胞外多糖分為兩大類: 結(jié)合態(tài)胞外多糖(bEPS)

    [1]Zhang M, Kong F X, Tan X, et al. Biochemical, morphological, and genetic variations in Microcystis aeruginosa due to colony disaggregation [J]. World Journal of Microbiology & Biotechnology, 2007, 23(5): 663—670

    [2]Yang Z, Kong F, Yang Z, et al. Benefits and costs of the grazer-induced colony formation in Microcystis aeruginosa [J]. Annales de Limnologie-International Journal of Limnology, 2009, 45(3): 203—208

    [3]Brookes J D, Ganf G G. Variations in the buoyancy response of Microcystis aeruginosa to nitrogen, phosphorus and light [J]. Journal of Plankton Research, 2001,23(12): 1399—1411

    [4]Shen H, Song L. Comparative studies on physiological responses to phosphorus in two phenotypes of bloomforming Microcystis [J]. Hydrobiologia, 2007, 592(1): 475—486

    [5]Li M, Nkrumah P N, Peng Q. Different tolerances to chemical contaminants between unicellular and colonial morph of Microcystis aeruginosa: Excluding the differences among different strains [J]. Journal of Hazardous Materials, 2015, 285: 245—249

    [6]Sommaruga R, Chen Y W, Liu Z W. Multiple strategies of bloom-forming Microcystis to minimize damage by solar ultraviolet radiation in surface waters [J]. Microbial Ecology, 2009, 57(4): 667—674

    [7]Wu Z X, Gan N Q, Huang Q, et al. Response of Microcystis to copper stress - Do phenotypes of Microcystis make a difference in stress tolerance [J]? Environmental Pollution, 2007, 147(2): 324—330

    [8]Ma J R, Brookes J D, Qin B Q, et al. Environmental factors controlling colony formation in blooms of the cyanobacteria Microcystis spp in Lake Taihu, China [J]. Harmful Algae, 2014, 31: 136—142

    [9]Wu X D, Kong F X, Zhang M. Photoinhibition of colonial and unicellular Microcystis cells in a summer bloom in Lake Taihu [J]. Limnology, 2011, 12(1): 55—61

    [10]Anishchenko O V, Kolmakov V I, Gladyshev M I. Effect of meteorological factors on the fluorescence parameters of a blooming body of water [J]. Doklady Biological Sciences, 2004, 397(1): 301—304

    [11]Zhang M, Shi X L, Yu Y, et al. The acclimative changes in photochemistry after colony formation of the cyanobacteria microcystis aeruginosa [J]. Phycological Society of America, 2011, 47(3): 524—532以及可溶性胞外多糖(sEPS)[21]??扇苄园舛嗵强赏ㄟ^液體培養(yǎng)獲得, 適合于一系列工業(yè)應(yīng)用, 是新多糖的重要前景來源[21]。另外, EPS具有大量的重金屬結(jié)合部位, 能夠去除水環(huán)境中的有害重金屬[100],在水生生態(tài)系統(tǒng)調(diào)解中具有重要價值。

    [12]Kurmayer R, Christiansen G, Chorus I. The abundance of microcystin-producing genotypes correlates positively with colony size in Microcystis sp. and determines its microcystin net production in Lake Wannsee[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2003,69(2): 787—795

    [13]Selander E, Fagerberg T, Wohlraub S, et al. Fight and flight in Dinoflagellates? Kinetics of simultaneous grazer induced responses in Alexandrium tamarense [J]. Limnology and Oceanography, 2012, 57(1): 58—64

    [14]Van Donk E, Ianora A, Vos M. Induced defences in marine and freshwater phytoplankton: a review [J]. Hydrobiologia, 2011, 668(1): 3—19

    [15]Cao H S, Yang Z. Variation in Colony Size of Microcystis aeruginosa in a Eutrophic Lake during Recruitment and Bloom Formation [J]. Journal of Freshwater Ecology, 2010, 25(3): 331—335

    [16]Trainor F R. Biological aspects of Scenedesmus (Chlorophyceae)- phenotypic plasticity [M]. Nova Hedwigia,Beiheft, 1998, 117: 1—367

    [17]?etlík I, Berková E, Doucha J, et al. The coupling of synthetic and reproduction processes in Scenedesmus quadricauda [J]. Archiv für Hydrobiologie-Algological Studies, 1972, 41(2): 172—213

    [18]Li M, Zhu W, Gao L, Lu L. Changes in extracellular polysaccharide content and morphology of Microcystis aeruginosa at different specific growth rates [J]. Journal of Applied Phycology, 2013, 25(4):1023—1030

    [19]Otero A, Vincenzini M. Extracellular polysaccharide synthesis by Nostoc strains as affected by N source and light intensity [J]. Journal of Biotechnology, 2003,102(2): 143—152

    [20]Kroen W K, Rayburn W R. Influence of growth status and nutrients on extracellular polysaccharide synthesis by the soil alga Chlamydomonas mexicana (Chlorophyceae) [J]. Journal of Phycology, 1984, 20(2): 253—257

    [21]De Philippis R, Margheri M C, Materassi R, et al. Potential of unicellular cyanobacteria from saline environments as exopolysaccharide producers [J]. Applied and Environmental Microbiology, 1998, 64(3): 1130—1132

    [22]Moreno J, Vargas M A, Olivares H, et al. Exopolysaccharide production by the cyanobacterium Anabaena sp. ATCC 33047 in batch and continuous culture [J]. Journal of Biotechnology, 1998, 60(3): 175—182

    [23]Staats N, Stal L J, Mur L R. Exopolysaccharide production by the epipelic diatom Cylindrotheca closterium: effects of nutrient conditions [J]. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology, 2000, 249(1): 13—27

    [24]Chen S J, Zheng W J, Yang F. Study advances on heavy metals bio-absorbed by cyanobacteria [J]. Marine Environmental Science, 2006, 25(4): 103—106 [陳思嘉,鄭文杰, 楊芳. 藍(lán)藻對重金屬的生物吸附研究進展. 海洋環(huán)境科學(xué), 2006, 25(4): 103—106]

    [25]Fattom A, Shilo M. Phormidium J-1 bioflocculant: production and activity [J]. Archives of Microbiology, 1984,139(4): 421—426

    [26]Pereira S, Zille A, Micheletti E, et al. Complexity of cyanobacterial exopolysaccharides: composition, structures, inducing factors and putative genes involved in their biosynthesis and assembly [J]. FEMS Microbiology Reviews, 2009, 33(5): 917—941

    [27]Chen Z, Chen S, Lu G F, et al. Phosphorus limitation for the colony formation, growth and photosynthesis of an edible cyanobacterium, Nostoc sphaeroides [J]. Biotechnology Letters, 2012, 34(1): 137—143

    [28]Suresh Kumar A, Mody K, Jha B. Bacterial exopolysaccharides apperception [J]. Journal of Basic Microbiology, 2007, 47(2): 103—117

    [29]Aaronson S. Effect of incubation temperature on the macromolecular and lipid content of the phytoflagellate Ochromonas danica [J]. Journal of Phycology, 1973,9(1): 111—113

    [30]Trainor F R. Cyclomorphosis in Scennedesmus communis Hegew. Ecomorph expression at low temperature[J]. British Phycological Journal, 1992, 27(1): 75—81

    [31]Yang Z, Li J J. Effects of abiotic factors on algal extracellular polysaccharides content [J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2008, 19(1): 198—202 [楊州, 李佳佳.非生物因素對藻類胞外多聚糖含量影響. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報, 2008, 19(1): 198—202]

    [32]Hawes I. The effects of light and temperature on photosynthate partitioning in Antarctic freshwater phytoplankton [J]. Journal of Plankton Research, 1990, 12(3): 513—518

    [33]Brookes J D, Ganf G G, Green D, et al. The influence of light and nutrients on buoyancy, filament aggregation and flotation of Anabaena circinalis [J]. Journal of Plankton Research, 1999, 21(2): 327—341

    [34]Xiao Y. Responses and underlying mechanism of colonial Microcystis to light intensity and microcystins [D]. Thesis for Doctor of Science. Institute of Hydrobiology,Chinese Academy of Scinences, Wuhan, 2011 [肖艷. 群體微囊藻響應(yīng)光照和毒素的方式及其機理探析. 博士學(xué)位論文, 中國科學(xué)院水生生物研究所, 武漢, 2011]

    [35]Bentley K, Clack C. Diatom colony formation: a computational study predicts a single mechanism can produce both linkage and separation valves sue to an environmental switch [J]. Journal of Phycology, 2012, 48(3): 716—728

    [36]Deng Z Y, Hu Q, Lu F, et al. Colony development and physiological characterization of the edible blue-green alga, Nostoc sphaeroides (Nostocaceae, Cyanophyta) [J]. Progress in Natural Science, 2008, 18(12): 1475—1483

    [37]Fryxell G A, Prasad A K S K. Eucampia Antarctica var. recta (Mangin) stat. nov. (Biddulphiaceae, Bacillariophyceae): life stages at the Weddell Sea ice edge [J]. Phycologia, 1990, 29(1): 27—38

    [38]Tukaj Z, Kubínová A, Zachleder V. Effect of irradiance on growth and reproductive processes during the cell cycle in Scenedesmus armatus [J]. Journal of Phycology,1996, 32(4): 624—631

    [39]Naselli-Flores L, Padisák J, Albay M. Shape and size in phytoplankton ecology: do they matter [J]? Hydrobiologia, 2007, 578(1): 157—161

    [40]Naselli-Flores L, Barone R. Pluriannual morphological variability of phytoplankton in a highly productive Mediterranean reservoir (Lake Arancio, Southwestern Sicily) [J]. Hydrobiologia, 2007, 578(1): 87—95

    [41]Yang H L, Cai Y F, Xia M, et al. Role of Cell Hydrophobicity on Colony Formation in Microcystis (Cyanobacteria) [J]. International Review of Hydrobiology,2011, 96(2): 141—148

    [42]Hadjoudja S, Deluchat V, Bauda M. Cell surface characterisation of Microcystis aeruginosa and Chlorella vulgaris [J]. Journal of Colloid and Interface Science, 2010,342(2): 293—299

    [43]Yu S, Li H B. Perspectives on the release of heavy metals via sediment resuspension [J]. Ecology and Environmental Sciences, 2010, 19(7): 1724—1731 [俞慎,歷紅波. 沉積物再懸浮-重金屬釋放機制研究進展. 生態(tài)環(huán)境學(xué)報, 2010, 19(7): 1724—1731]

    [44]Lin Y X, Yan H, Liu X F, et al. The accumulation to heavy metals and the variation of amino acids in Microcystis aeruginosa Küitz in the Dianchi lake [J]. Techniques and Equipment for Environmental Pollution Control, 2003, 4(3): 39—41 [林毅雄, 閆海, 劉秀芬, 等. 滇池銅綠微囊藻對重金屬的富集和氨基酸含量的變化.環(huán)境污染治理技術(shù)與設(shè)備, 2003, 4(3): 39—41]

    [45]Bi X D, Zhang S L, Dai W, et al. Effects of lead(Ⅱ) on the extracellular polysaccharide(EPS) production and colony formation of cultured Microcystis aeruginosa [J]. Water Science and Technology, 2013, 67(4): 803—809

    [46]Sharma M, Kaushik A, Somvir Bala K, et al. Sequestration of chromium by exopolysaccharides of Nostoc and Gloeocapsa from dilute aqueous solutions. Journal of Hazardous Materials, 2008, 157(2—3): 315—318

    [47]Ozturk S, Aslim B, Suludere Z. Cadmium(Ⅱ) sequestration characteristics by two isolates of Synechocystis sp. in terms of exopolysaccharide (EPS) production and monomer composition [J]. Bioresource Technology,2010, 101(24): 9742—9748

    [48]Jang M H, Ha K, Joo G J, et al. Toxin production of cyanobacteria is increased by exposure to zooplankton [J]. Freshwater Biology, 2003, 48(9): 1540—1550

    [49]Sedmak B, Eler?ek T. Microcystins induce morphological and physiological changes in selected representative phytoplanktons [J]. Microbial Ecology, 2005, 50(2): 298—305

    [50]Bergman B. Glyoxylate induced changes in the carbon and nitrogen metabolism of the cyanobacterium Anabaena cylindrical [J]. Plant Physiology, 1986, 80(3): 698—701

    [51]De Philippis R, Sili C, Vincenzini M. Response of an exopolysaccharide-producing heterocystous cyanobacterium to changes in metabolic carbon flux [J]. Journal of Applied Phycology, 1996, 8(4): 275—281

    [52]Liu Y, Wang W, Zhang M, et al. PSII-efficiency, polysaccharide production, and phenotypic plasticity of Scenedesmus obliquus in response to changes in metabolic carbon flux [J]. Biochemical Systematics and Ecology, 2010, 38(3): 292—299

    [53]Ferrari M C O, Wisenden B D, Chivers D P. Chemical ecology of predator-prey interactions in aquatic ecosystems: a review and prospectus [J]. Canadian Journal of Zoology, 2010, 88(7): 698—724

    [54]Lehman J T. Selective herbivory and its role in the evolution of phytoplankton growth strategies [M]. In: Sandgren C D (Eds.), Growth and Reproductive Strategies of Freshwater Phytoplankton. Cambridge University Press. 1988, 369—387

    [55]Ha K, Jang M H, Takamura N. Colony Formation in Planktonic algae induced by zooplankton culture media filtrate [J]. Journal of Freshwater Ecology, 2004, 19(1): 9—16

    [56]Serizawa H, Amemiya T, Enomoto T, et al. Mathematical modeling of colony formation in algal blooms: phenotypic plasticity in cyanobacteria[J]. Ecological Research,2008, 23(5): 841—850

    [57]Yang G J, Qin B Q, Gao G, et al. Effect of Ceriodaphnia cornuta in colony formation of Microcystis in Lake Taihu [J]. Journal of Lake Sciences, 2009a, 21(4): 495—501 [楊桂軍, 秦柏強, 高光, 等. 角突網(wǎng)紋溞在太湖微囊藻群體形成中的作用. 湖泊科學(xué), 2009a, 21(4): 495—501]

    [58]Jezberová J, Komárková J. Morphological transformation in a freshwater Cyanobiumsp. induced by grazers[J]. Environmental Microbiology, 2007, 9(7): 1858—1862

    [59]Boraas M E, Seale D B, Boxhorn J E. Phagotrophy by a flagellate selects for colonial prey: a possible origin of multicellularity [J]. Evolutionary Ecology, 1998, 12(2): 153—164

    [60]Lurling M, Beekman W. Palmelloids formation in Chlamydomonas reinhardtii: defence against rotifer predators [J]? International Journal of Limnology, 2006,42(2): 65—72

    [61]Van Donk E, Lürling M, Lampert W. Consumer induced changes in phytoplankton: inducibility, costs, benefits, and the impact on grazers [M]. In: Tollrian R,Harvell C D (Eds.), The Ecology, Evolution of Inducible Defenses. Princeton University Press, Princeton, NJ. 1999, 89—103

    [62]Yasumoto M, Ooi T, Takenori K, et al. Characterization of Daphnia kairomone inducing morphological change of green alga Actinastrum sp [J]. Tennen Yuki Kagobutsu Toronkai Keon Yoshishu, 2000, 42: 385—390 (In Japanese)

    [63]Hessen D O, Van Donk E. Morphological changes in Scenedesmus induced by substances released from Daphnia [J]. Archiv fur Hydrobiologie, 1993, 127: 129—140

    [64]Von Elert E, Franck A. Colony formation in Scenedesmus: grazer-mediated release and chemical features of the infochemical [J]. Journal of Plankton Research,1999, 21(4): 789—804

    [65]Lürling M, Beekman W. Extractable substances (anionic surfactants) from membrane filters induce morphological changes in the green alga Scenedesmus obliquus(Chlorophyceae) [J]. Environmenatl Toxicology and Chemistry, 2002, 21(6): 1213—1218

    [66]Van Holthoon F L, van Beek T A, Lürling M, et al. Colony formation in Scenedesmus: a literature overview and further steps towards the chemical characterisation of the Daphnia kairomone [J]. Hydrobiologia, 2003,491(1): 241—254

    [67]Yasumoto K, Nishigami A, Kasai F, et al. Isolation and absolute configuration determination of aliphatic sulfates as the Daphnia kairomones inducing morphological defense of a phytoplankton [J]. Chemical Pharmaceutical Bulletin, 2006, 54(2): 271—274

    [68]Yasumoto K, Nishigami A, Yasumoto M, et al. Aliphatic sulphates released from Daphnia induce morphological defense of phytoplankton: isolation and synthesis of kairomones [J]. Tetrahedron Letters, 2005, 46(28): 4765—4767

    [69]Kim B H, Hwang S J, Han M S. Bacterium and fish mediated morphological changes of the toxic cyanobacterium Microcystis aeruginosa [J]. Journal of Freshwater Ecology, 2008, 23(4): 613—622

    [70]Shen H, Niu Y, Xie P, et al. Morphological and physiological changes in Microcystis aeruginosa as a result of interactions with heterotrophic bacteria [J]. Freshwater Biology, 2011, 56(6): 1065—1080

    [71]Fogg G E. The ecological significance of extracellular products of phytoplankton photosynthesis [J]. Botanica Marina, 1983, 26(1): 3—14

    [72]Mello M M E, Soares M C S, Roland F, et al. Growth inhibition and colony formation in the cyanobacterium Microcystis aeruginosa induced by the cyanobacterium Cylindrospermopsis raciborskii [J]. Journal of Plankton Research, 2012, 34(1): 987—994

    [73]Zhang X W, Fu J, Song S, et al. Interspecific competition between Microcystis aeruginosa and Anabaena flosaquae from Taihu Lake, China [J]. Zeitschrift furNaturforschung Section C-A Journal of Biosciences,2014, 69(1—2): 53—60

    [74]Shao J H, Peng L, Luo S, et al. First report on the allelopathic effect of Tychonema bourrellyi (Cyanobacteria)against Microcystis aeruginosa (Cyanobacteria) [J]. Journal of Applied Phycology, 2013, 25(5): 1567—1573

    [75]Chen J Q, Guo R X. Inhibition effect of green alga on cyanobacteria by the interspecies interactions [J]. International Journal of Environmental Science and Technology, 2014, 11(3): 839—842

    [76]Leflaive J, Lacroix G, Nicaise Y, et al. Colony induction and growth inhibition in Desmodesmus quadrispina(Chlorococcales) by allelochemicals released from the filamentous alga Uronema confervicolum (Ulotrichales)[J]. Environmental Microbiology, 2008, 10(6): 1536—1546

    [77]Adams D G, Duggan P S. Heterocyst and akinete dierentiation in cyanobacteria [J]. New Phytologist, 1999,144(1): 3—33

    [78]Takamura N, Iwakuma T, Yasuno M. Uptake of13C and15N (ammonium, nitrate and urea) by Microcystis in Lake Kasumigaura [J]. Journal of Plankton Research,1987, 9(1): 151—165

    [79]Sbiyyaa B, Loudiki M, Oudra B. Nitrogen and phosphorus intracellular capacity in storage by Microcystis aeruginosa Kütz and Synechocystis sp.: toxic cyanobacteria occasionally forming blooms in Marrakesch area(Morocco) [J]. Annales de Limnologie-International Journal of Limnology, 1998, 34(3): 247—257

    [80]Yang Z, Kong F X, Cao H S, et al. Observation on colony formation of Microcystis aeruginosa induced by filtered lake water under laboratory conditions [J]. Annales de Limnologie-International Journal of Limnology,2005, 41(3): 169—173

    [81]Zhu W, Li M, Luo Y G, et al. Vertical distribution of Microcystis colony size in Lake Taihu: Its role in algal blooms [J]. Journal of Great Lakes Research, 2014,40(4): 949—955

    [82]Lundgren V, Granéli E. Grazer-induced defense in Phaeocystis globosa (Prymnesiophyceae): influence of different nutrient conditions [J]. Limnology and Oceanography, 2010, 55(5): 1965—1976

    [83]Selander E, Cervin G, Pavia H. Effects of nitrate limitation on grazer-induced toxin production in Alexandrium minutum [J]. Limnology and Oceanography, 2008,53(2): 523—530

    [84]Wang W, Liu Y, Yang Z. lombind effects of nitrogen cintent in media and Ochromonas SP. grazing on colong formation of cultured Microystis aeruginosa [J]. Joumal of Limnology, 2010b, 69(2): 193—198

    [85]Schuler L J, Rand G M. Aquatic risk assessment of herbicides in freshwater ecosystems of South Florida [J]. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 2008, 54(4): 571—583

    [86]Lürling M. Metribuzin impairs the unicell-colony transformation in the green alga Scenedesmus obliquus [J]. Chemosphere, 2011, 82(3): 411—417

    [87]Hansen J, Sato M, Ruedy R, et al. Global temperature change [J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 2006, 103(39): 14288—14293

    [88]Wang Y, Smith Jr W O, Wang X D, et al. Subtle biological responses to increased CO2concentrations by Phaeocystis globosa Scherffel, a harmful algal bloom species [J]. Geophysical Reserach Letters, 2010c, 37(9): 1—5

    [89]Zuo S P, Wan K, Ma S, et al. Combined allelopathic potential of aquatic plants species to control algae [J]. Allelopathy Journal, 2014, 34(2): 315—324

    [90]K?rner S, Nicklisch A. Allelopathic growth inhibition of selected phytoplankton species by submerged macrophytes [J]. Journal of Phycology, 2002, 38(5): 862—871

    [91]Svanys A, Paskauskas R, Hilt S. Effects of the allelopathically active macrophyte Myriophyllum spicatum on a natural phytoplankton community: a mesocosm study[J]. Hydrobiologia, 2014, 737(1): 57—66

    [92]Vanderstukken M, Declerck S A J, Decaestecker E, et al. Long-term allelopathic control of phytoplankton by the submerged macrophyte Elodea nuttallii [J]. Freshwater Biology, 2014, 59(5): 930—941

    [93]Dong J, Yang K, Li S S, et al. Submerged vegetation removal promotes shift of dominant phytoplankton functional groups in a eutrophic lake [J]. Journal of Environment Sciences, 2014, 26(8): 1699—1707

    [94]Van Onsem S, De Backer S, Triest L. Microhabitat-zooplankton relationships in extensive macrophyte vegetations of eutrophic clear water ponds [J]. Hydrobiologia,2011, 656(1): 67—81

    [95]Gross E M, Erhard D, Enik? I. Allelopathic activity of Ceratophyllum demersum L. and Najas marina spp. Intermedia (Wolfgang) Casper [J]. Hydrobiologia, 2003,506—509(1—3): 583—589

    [96]Mulderij G, Mooij W M, Van Donk E. Allelopathic growth inhibition and colony formation of the green alga Scenedesmus obliquus by the aquatic macrophate Stratiotes aloides [J]. Aquatic Ecology, 2005, 39(1): 11—21

    [97]Dong J, Lu J J, Li G B, et al. Influences of a submerged macrophyte on colony formation and growth of a green alga [J]. Aquatic Biology, 2013, 19(5): 265—274

    [98]Ge H M, Zhou X P, Xia L, et al. Effects of light and nitrogen source on the secrection of extracellular polysaccharides from Nostoc sp. [J]. Acta Hydrobiologica Sinica, 2014, 38(3): 480—486 [葛紅梅, 周旭萍, 夏令, 等.光強和氮源對念珠藻胞外多糖分泌的影響. 水生生物學(xué)報, 2014, 38(3): 480—486]

    [99]Liu F F, Feng M H, Shang L X, et al. Effects of tempe

    rature on the growth and generation of extracellular organic matterof Microcystis aerugionsa and Anabaena sp.[J]. Journal of Lake Sciences, 2014, 26(5): 780—788.[劉菲菲, 馮慕華, 尚麗霞, 等. 溫度對銅綠微囊藻 Microcystis aeruginosa 和魚腥藻Anabaena sp. 生長及胞外有機物產(chǎn)生的影響. 湖泊科學(xué), 2014, 26(5): 780—788]

    [100]Li J H, Zeng Z Q, Xue Y M, et al. Study on mechanism of heavy metal accumulation in Spirulina Maxima, Cyanophyta [J]. Oceanologia et Limnologia Sinica, 1998,29(3): 274—279 [李建宏, 曾昭琪, 薛宇鳴, 等. 極大螺旋藻富集重金屬機理的研究. 海洋與湖沼, 1998,29(3): 274—279]

    INFLUENCING FACTORS AND MECHANISMS ON COLONY FORMATION OF MICROCYSTIS: A REVIEW

    DONG Jing1and LI Gen-Bao2
    (1. College of Fisheries, Henan Normal University, Xinxiang 453007, China; 2. State Key Laboratory of Freshwater Ecology and Biotechnology, Institute of Hydrobiology, Chinese Academy of Sciences, Wuhan 430072, China)

    Cyanobacterial blooms in lakes and reservoirs caused by eutrophication coming with a series of environmental and ecological problems. Colony formation of Microcystis and aggregation at the surface of water column is one of the most important factors of forming cyanobacterial blooms. Compared with single-cell, Microcystis colonies have higher tolerance ability to adverse conditions (ultraviolet radiation, high light, heavy metal and so on) and are more resistance to predation, virus and bacteria, and the potential mechanisms were discussed in this review article. We also reviewed the recent findings of affecting factors on phytoplankton colony formation including abiotic factors (nutrition,temperature, light, heavy metal, microcystin, and glyoxylic acid), and biotic factors (herbivore, bacteria, fish, and algae). We also made the prospect for future researches: (1) Synergistic effects of abiotic-biotic factors on algae morphology; (2) Influences of human activities on phytoplankton morphology and community structure; (3) Applications of the responses of phytoplankton morphology to submerged plants in future aquatic ecosystems; (4) The application of exopolysaccharide secretion by algae in future industrial production.

    Cyanobacterial blooms; Microcystis; Colony formation; Abiotic factors; Biotic factors

    10.7541/2016.50

    Q934

    A

    1000-3207(2016)02-0378-10

    2015-04-14;

    2015-09-07

    國家自然科學(xué)基金青年基金項目(31500380)資助 [Supported by the National Natural Science Fund (31500380)]

    董靜(1988—), 女, 河南焦作人; 博士, 講師; 主要從事藻類環(huán)境生物學(xué)研究。E-mail: happydj111@163.com

    李根保, E-mail: ligb@ihb.ac.cn

    猜你喜歡
    柵藻微囊藍(lán)藻
    藻-菌混合培養(yǎng)及添加NaHCO3促進柵藻生長和脂類合成
    中國油脂(2020年8期)2020-08-12 00:47:14
    南美白對蝦養(yǎng)殖池塘藍(lán)藻水華處理舉措
    不同濃度的磷對柵藻生長的影響
    針對八月高溫藍(lán)藻爆發(fā)的有效處理方案
    柵藻作為生物指示劑的生物延遲發(fā)光研究*
    中藥生地黃對柵藻生物光子輻射的影響*
    可怕的藍(lán)藻
    微囊懸浮-懸浮劑和微囊懸浮劑不是同種劑型
    微囊藻毒素-LR對秀麗線蟲精子形成的毒性作用
    馬錢子生物堿微囊的制備及評價
    国产精品,欧美在线| 侵犯人妻中文字幕一二三四区| 青草久久国产| 国产精品,欧美在线| 国产视频一区二区在线看| 亚洲成a人片在线一区二区| 精品国产乱码久久久久久男人| www.自偷自拍.com| 50天的宝宝边吃奶边哭怎么回事| 久久精品成人免费网站| 草草在线视频免费看| 老熟妇乱子伦视频在线观看| 给我免费播放毛片高清在线观看| 国产91精品成人一区二区三区| 亚洲一区中文字幕在线| 欧美黄色淫秽网站| 两个人视频免费观看高清| 91字幕亚洲| 午夜久久久久精精品| 亚洲中文av在线| 午夜视频精品福利| 国产精品电影一区二区三区| 91国产中文字幕| 亚洲熟妇中文字幕五十中出| 久久欧美精品欧美久久欧美| 韩国av一区二区三区四区| 国产v大片淫在线免费观看| 午夜亚洲福利在线播放| 亚洲第一av免费看| 亚洲五月色婷婷综合| 淫妇啪啪啪对白视频| 国产成人一区二区三区免费视频网站| or卡值多少钱| 搡老岳熟女国产| 亚洲五月色婷婷综合| 99国产精品99久久久久| 最新在线观看一区二区三区| 亚洲国产欧美一区二区综合| 长腿黑丝高跟| 巨乳人妻的诱惑在线观看| 搞女人的毛片| 法律面前人人平等表现在哪些方面| 黄片大片在线免费观看| av有码第一页| 男人舔奶头视频| 亚洲午夜精品一区,二区,三区| 精品国产乱子伦一区二区三区| 午夜日韩欧美国产| 精品欧美一区二区三区在线| 一边摸一边抽搐一进一小说| 黄色视频不卡| 日韩欧美 国产精品| 日韩国内少妇激情av| 很黄的视频免费| 桃红色精品国产亚洲av| 成人亚洲精品一区在线观看| 国产乱人伦免费视频| 精品欧美国产一区二区三| 搡老岳熟女国产| 久久人妻av系列| 国产精品精品国产色婷婷| 激情在线观看视频在线高清| 欧美色视频一区免费| 18禁黄网站禁片免费观看直播| 免费观看精品视频网站| 免费女性裸体啪啪无遮挡网站| 国产午夜福利久久久久久| 亚洲成国产人片在线观看| 天堂√8在线中文| 黄色成人免费大全| 99久久99久久久精品蜜桃| 亚洲人成网站高清观看| 成年女人毛片免费观看观看9| 亚洲一卡2卡3卡4卡5卡精品中文| 欧美黑人巨大hd| 日韩欧美免费精品| 一夜夜www| 国产精品av久久久久免费| 亚洲,欧美精品.| avwww免费| 日韩欧美国产一区二区入口| 每晚都被弄得嗷嗷叫到高潮| 亚洲国产精品合色在线| 亚洲精品av麻豆狂野| 特大巨黑吊av在线直播 | 午夜激情福利司机影院| 男女视频在线观看网站免费 | 国内揄拍国产精品人妻在线 | 一区福利在线观看| 欧美+亚洲+日韩+国产| 夜夜看夜夜爽夜夜摸| 色综合婷婷激情| 国产又黄又爽又无遮挡在线| 十分钟在线观看高清视频www| 黄片大片在线免费观看| 国产成人精品无人区| 成人免费观看视频高清| 18禁国产床啪视频网站| 无遮挡黄片免费观看| 欧美一区二区精品小视频在线| 一级a爱视频在线免费观看| 中文字幕精品免费在线观看视频| 国产亚洲欧美精品永久| 久99久视频精品免费| 国产av又大| 俺也久久电影网| 最近最新免费中文字幕在线| 最近最新中文字幕大全免费视频| 国产精品自产拍在线观看55亚洲| 日韩三级视频一区二区三区| 国产一卡二卡三卡精品| 久久国产精品男人的天堂亚洲| 最好的美女福利视频网| 日韩欧美国产一区二区入口| 久久久久久人人人人人| 亚洲国产高清在线一区二区三 | 国产一级毛片七仙女欲春2 | 久久精品国产亚洲av高清一级| 国产精品av久久久久免费| 国产精品九九99| 亚洲精品美女久久av网站| 一进一出好大好爽视频| 波多野结衣av一区二区av| 一a级毛片在线观看| 日韩免费av在线播放| 婷婷亚洲欧美| av电影中文网址| 亚洲欧美日韩高清在线视频| 午夜久久久在线观看| 日本一区二区免费在线视频| 欧美在线一区亚洲| 午夜成年电影在线免费观看| 1024手机看黄色片| 大香蕉久久成人网| 国产精品 国内视频| 亚洲精品中文字幕一二三四区| 国产欧美日韩精品亚洲av| avwww免费| 亚洲成人精品中文字幕电影| 每晚都被弄得嗷嗷叫到高潮| 国产精品1区2区在线观看.| 久久久久免费精品人妻一区二区 | 精品国内亚洲2022精品成人| 国产激情偷乱视频一区二区| 亚洲精品av麻豆狂野| 一级毛片高清免费大全| 免费在线观看日本一区| 国产av一区在线观看免费| 色综合欧美亚洲国产小说| 国产成人欧美在线观看| 国产v大片淫在线免费观看| 一卡2卡三卡四卡精品乱码亚洲| 久久这里只有精品19| 可以在线观看的亚洲视频| 欧美日韩福利视频一区二区| 欧美色视频一区免费| 一本一本综合久久| 大香蕉久久成人网| 这个男人来自地球电影免费观看| а√天堂www在线а√下载| 亚洲性夜色夜夜综合| 一个人免费在线观看的高清视频| 波多野结衣高清作品| 欧美激情极品国产一区二区三区| 中文字幕人妻丝袜一区二区| 婷婷六月久久综合丁香| 欧美午夜高清在线| 黄片小视频在线播放| 日韩欧美一区视频在线观看| 中文字幕人成人乱码亚洲影| 99re在线观看精品视频| 亚洲国产精品999在线| 国产主播在线观看一区二区| 午夜福利欧美成人| 久久精品国产亚洲av香蕉五月| 男女下面进入的视频免费午夜 | 丰满的人妻完整版| 亚洲,欧美精品.| 日本精品一区二区三区蜜桃| 在线天堂中文资源库| 亚洲精品国产精品久久久不卡| 在线天堂中文资源库| 黄色视频不卡| 哪里可以看免费的av片| 亚洲成人国产一区在线观看| 免费av毛片视频| 久久狼人影院| 中文字幕人成人乱码亚洲影| 亚洲自拍偷在线| 婷婷精品国产亚洲av在线| 亚洲成人免费电影在线观看| 日本黄色视频三级网站网址| 动漫黄色视频在线观看| 999精品在线视频| 12—13女人毛片做爰片一| 亚洲 欧美 日韩 在线 免费| 亚洲午夜精品一区,二区,三区| 国产精品乱码一区二三区的特点| 国产精品国产高清国产av| 欧美日韩瑟瑟在线播放| 搞女人的毛片| 级片在线观看| 18禁观看日本| 亚洲无线在线观看| av福利片在线| 999精品在线视频| 一级黄色大片毛片| 又紧又爽又黄一区二区| 亚洲 欧美 日韩 在线 免费| 999久久久精品免费观看国产| 一区二区三区高清视频在线| 12—13女人毛片做爰片一| 亚洲av成人不卡在线观看播放网| 亚洲精品中文字幕在线视频| 亚洲国产欧美日韩在线播放| 亚洲激情在线av| 免费电影在线观看免费观看| 国产主播在线观看一区二区| 欧美av亚洲av综合av国产av| 97人妻精品一区二区三区麻豆 | 亚洲国产毛片av蜜桃av| 欧美+亚洲+日韩+国产| 亚洲 国产 在线| 男女午夜视频在线观看| 一区二区日韩欧美中文字幕| 亚洲av日韩精品久久久久久密| 嫁个100分男人电影在线观看| 观看免费一级毛片| 精品一区二区三区视频在线观看免费| 国产精品久久久人人做人人爽| 亚洲黑人精品在线| www国产在线视频色| 一本综合久久免费| 91成人精品电影| 俄罗斯特黄特色一大片| xxxwww97欧美| 一本综合久久免费| 久久人人精品亚洲av| 国产黄色小视频在线观看| 成年免费大片在线观看| 亚洲一区二区三区不卡视频| 无遮挡黄片免费观看| 成人午夜高清在线视频 | 国产精品久久久久久精品电影 | 成年版毛片免费区| 亚洲九九香蕉| 亚洲精品av麻豆狂野| 日韩欧美一区视频在线观看| 午夜激情福利司机影院| 亚洲熟女毛片儿| 一夜夜www| 丁香六月欧美| 午夜a级毛片| 欧美日韩一级在线毛片| 又黄又粗又硬又大视频| 丰满的人妻完整版| 日韩欧美在线二视频| 国产男靠女视频免费网站| 香蕉国产在线看| www日本在线高清视频| 琪琪午夜伦伦电影理论片6080| √禁漫天堂资源中文www| 亚洲真实伦在线观看| 午夜免费激情av| 国产免费男女视频| 淫秽高清视频在线观看| 黑人欧美特级aaaaaa片| 两个人免费观看高清视频| 最新在线观看一区二区三区| 波多野结衣高清无吗| 一本久久中文字幕| 精品福利观看| 成在线人永久免费视频| 人人妻人人看人人澡| 88av欧美| 国内久久婷婷六月综合欲色啪| 久久国产乱子伦精品免费另类| 后天国语完整版免费观看| 国产精品1区2区在线观看.| 香蕉丝袜av| 欧美一级a爱片免费观看看 | 精品欧美国产一区二区三| 午夜激情av网站| 黑丝袜美女国产一区| 看免费av毛片| 欧美黄色片欧美黄色片| 最近最新中文字幕大全电影3 | 97超级碰碰碰精品色视频在线观看| 身体一侧抽搐| 最近最新免费中文字幕在线| 老司机在亚洲福利影院| 欧美在线一区亚洲| 亚洲一区中文字幕在线| 国产黄色小视频在线观看| 亚洲中文日韩欧美视频| 黄色视频不卡| 成人一区二区视频在线观看| 哪里可以看免费的av片| 看免费av毛片| 天堂√8在线中文| 国产aⅴ精品一区二区三区波| 男女下面进入的视频免费午夜 | 男人舔女人的私密视频| 日韩有码中文字幕| 欧美一区二区精品小视频在线| 在线观看免费日韩欧美大片| 少妇 在线观看| 性色av乱码一区二区三区2| 国产成人精品久久二区二区免费| 欧美日韩中文字幕国产精品一区二区三区| 两个人看的免费小视频| 18禁国产床啪视频网站| 成人18禁高潮啪啪吃奶动态图| 国产高清激情床上av| 在线av久久热| 亚洲国产精品999在线| 日韩一卡2卡3卡4卡2021年| 亚洲精品国产区一区二| 真人一进一出gif抽搐免费| 黄色成人免费大全| 18美女黄网站色大片免费观看| 岛国在线观看网站| 日本a在线网址| 美国免费a级毛片| 琪琪午夜伦伦电影理论片6080| 午夜免费鲁丝| АⅤ资源中文在线天堂| 高潮久久久久久久久久久不卡| 免费电影在线观看免费观看| 欧美大码av| 黄色女人牲交| 国内久久婷婷六月综合欲色啪| 亚洲国产看品久久| 国产精品久久电影中文字幕| 久热这里只有精品99| 熟女少妇亚洲综合色aaa.| 精华霜和精华液先用哪个| 国产日本99.免费观看| www.自偷自拍.com| 亚洲欧美激情综合另类| 18禁观看日本| 国内精品久久久久久久电影| 欧美+亚洲+日韩+国产| 久99久视频精品免费| 丝袜在线中文字幕| 真人一进一出gif抽搐免费| 亚洲电影在线观看av| 久久久久九九精品影院| 国产99白浆流出| 欧美成人一区二区免费高清观看 | 亚洲专区字幕在线| 欧美日韩亚洲综合一区二区三区_| 国产亚洲精品综合一区在线观看 | 国产成人av教育| 国产爱豆传媒在线观看 | 脱女人内裤的视频| 美女高潮到喷水免费观看| 日日夜夜操网爽| 在线天堂中文资源库| 免费在线观看日本一区| 亚洲精品美女久久av网站| 两个人看的免费小视频| 国产欧美日韩精品亚洲av| 黄色a级毛片大全视频| 99精品欧美一区二区三区四区| 中文字幕最新亚洲高清| 亚洲成av片中文字幕在线观看| 久久久久久久久免费视频了| 波多野结衣高清作品| 精品国产乱子伦一区二区三区| 国产精品二区激情视频| 国产精品野战在线观看| 黑丝袜美女国产一区| 免费一级毛片在线播放高清视频| 国产精品久久久人人做人人爽| 亚洲男人的天堂狠狠| 一区二区日韩欧美中文字幕| 久久午夜综合久久蜜桃| 长腿黑丝高跟| 免费一级毛片在线播放高清视频| 嫩草影院精品99| 好看av亚洲va欧美ⅴa在| 亚洲狠狠婷婷综合久久图片| 又黄又粗又硬又大视频| 人成视频在线观看免费观看| 婷婷精品国产亚洲av| 免费搜索国产男女视频| 老熟妇乱子伦视频在线观看| 国产精品 国内视频| 在线观看66精品国产| 精品久久久久久久末码| 国产亚洲精品久久久久久毛片| 亚洲五月婷婷丁香| 久久久久久九九精品二区国产 | 国产高清videossex| 男女做爰动态图高潮gif福利片| 成人18禁在线播放| 中文字幕人妻丝袜一区二区| 久久国产亚洲av麻豆专区| 午夜福利免费观看在线| 亚洲av中文字字幕乱码综合 | 国产乱人伦免费视频| 久久精品91无色码中文字幕| 国产一级毛片七仙女欲春2 | 亚洲国产看品久久| 国产高清videossex| 99热只有精品国产| 久久 成人 亚洲| 国产一区二区三区在线臀色熟女| 欧美性长视频在线观看| 色精品久久人妻99蜜桃| 亚洲精品国产区一区二| 精品一区二区三区四区五区乱码| 亚洲专区中文字幕在线| 国产精品亚洲av一区麻豆| 久久国产精品男人的天堂亚洲| 99热这里只有精品一区 | 亚洲电影在线观看av| 后天国语完整版免费观看| 午夜福利高清视频| 女人被狂操c到高潮| 中文字幕人成人乱码亚洲影| 亚洲精品国产一区二区精华液| 少妇被粗大的猛进出69影院| 中文字幕久久专区| 亚洲性夜色夜夜综合| 日本熟妇午夜| 又大又爽又粗| 午夜福利高清视频| 少妇的丰满在线观看| 国产一区在线观看成人免费| 高清在线国产一区| 中文字幕人妻丝袜一区二区| 亚洲av中文字字幕乱码综合 | 在线观看66精品国产| 国产亚洲av嫩草精品影院| 欧美一区二区精品小视频在线| 国产日本99.免费观看| 国产真人三级小视频在线观看| 亚洲第一电影网av| 日本精品一区二区三区蜜桃| 亚洲国产欧美网| 亚洲精品中文字幕一二三四区| 亚洲精品一卡2卡三卡4卡5卡| 丝袜人妻中文字幕| 精品电影一区二区在线| 天堂影院成人在线观看| 久久99热这里只有精品18| 久久午夜综合久久蜜桃| 亚洲av日韩精品久久久久久密| 韩国av一区二区三区四区| 国产高清有码在线观看视频 | 少妇粗大呻吟视频| 亚洲欧美激情综合另类| 国内揄拍国产精品人妻在线 | 男人舔女人下体高潮全视频| 国产久久久一区二区三区| 亚洲激情在线av| 99精品在免费线老司机午夜| 免费观看人在逋| 美女国产高潮福利片在线看| 黄片大片在线免费观看| 日韩欧美国产一区二区入口| 熟女少妇亚洲综合色aaa.| 精品乱码久久久久久99久播| 午夜日韩欧美国产| 夜夜爽天天搞| 国产一区二区三区视频了| 日本一区二区免费在线视频| 国产又爽黄色视频| 亚洲天堂国产精品一区在线| 亚洲精品粉嫩美女一区| 在线十欧美十亚洲十日本专区| 老鸭窝网址在线观看| 欧美三级亚洲精品| 午夜激情福利司机影院| 国内揄拍国产精品人妻在线 | 两个人免费观看高清视频| 我的亚洲天堂| 精品国产乱码久久久久久男人| 免费无遮挡裸体视频| 久久午夜亚洲精品久久| 午夜免费成人在线视频| 亚洲av电影不卡..在线观看| 十八禁网站免费在线| 香蕉久久夜色| 亚洲五月天丁香| 一区二区三区高清视频在线| 国产v大片淫在线免费观看| 久久中文看片网| 色播在线永久视频| av超薄肉色丝袜交足视频| 每晚都被弄得嗷嗷叫到高潮| 成年女人毛片免费观看观看9| 91麻豆精品激情在线观看国产| 久久国产亚洲av麻豆专区| 两个人视频免费观看高清| 精品国产亚洲在线| 国产日本99.免费观看| 一区二区日韩欧美中文字幕| 国产精品野战在线观看| 亚洲aⅴ乱码一区二区在线播放 | 亚洲精品色激情综合| 久久精品国产综合久久久| 成人午夜高清在线视频 | 亚洲免费av在线视频| 国产蜜桃级精品一区二区三区| 亚洲精品av麻豆狂野| 亚洲七黄色美女视频| 欧美三级亚洲精品| 首页视频小说图片口味搜索| 午夜免费观看网址| 真人做人爱边吃奶动态| 一级片免费观看大全| 国产精品综合久久久久久久免费| 成人三级做爰电影| 国产精品二区激情视频| 免费在线观看视频国产中文字幕亚洲| 91国产中文字幕| 国产三级在线视频| 日本三级黄在线观看| 天堂√8在线中文| 欧美性长视频在线观看| 欧美色视频一区免费| 美女免费视频网站| 亚洲在线自拍视频| 亚洲欧美一区二区三区黑人| 老汉色∧v一级毛片| 国产v大片淫在线免费观看| 日本精品一区二区三区蜜桃| 欧美性长视频在线观看| 久9热在线精品视频| 国产真人三级小视频在线观看| 精品国产乱子伦一区二区三区| 性色av乱码一区二区三区2| 亚洲精品在线美女| 成年免费大片在线观看| 岛国视频午夜一区免费看| 国产精品亚洲美女久久久| 国产精华一区二区三区| 成人三级黄色视频| 免费在线观看日本一区| 亚洲国产精品成人综合色| 日本免费一区二区三区高清不卡| 色av中文字幕| 国产精品日韩av在线免费观看| 精品福利观看| 久久这里只有精品19| 国产欧美日韩一区二区三| 国产亚洲精品av在线| 中国美女看黄片| 男人舔奶头视频| 国产人伦9x9x在线观看| 精品久久久久久久毛片微露脸| 欧美精品亚洲一区二区| 国产国语露脸激情在线看| 久久婷婷人人爽人人干人人爱| 黄色毛片三级朝国网站| 18美女黄网站色大片免费观看| 午夜免费成人在线视频| 男女那种视频在线观看| 久久精品国产亚洲av高清一级| 一区二区三区高清视频在线| 日韩欧美在线二视频| 亚洲人成77777在线视频| 午夜两性在线视频| 久久精品国产99精品国产亚洲性色| 国产精品免费一区二区三区在线| 久久久久免费精品人妻一区二区 | 国产精品国产高清国产av| 久99久视频精品免费| 一a级毛片在线观看| 成人精品一区二区免费| 18禁裸乳无遮挡免费网站照片 | 精品国产乱码久久久久久男人| 欧美精品亚洲一区二区| e午夜精品久久久久久久| 欧美激情 高清一区二区三区| 好看av亚洲va欧美ⅴa在| 精品欧美国产一区二区三| 午夜a级毛片| 9191精品国产免费久久| 一本久久中文字幕| 啦啦啦免费观看视频1| 麻豆一二三区av精品| 亚洲精华国产精华精| 2021天堂中文幕一二区在线观 | 午夜亚洲福利在线播放| 一进一出抽搐gif免费好疼| 亚洲第一电影网av| 国产亚洲精品久久久久5区| 日韩欧美 国产精品| 黄色丝袜av网址大全| 免费女性裸体啪啪无遮挡网站| 久久久久久九九精品二区国产 | 在线观看www视频免费| 老司机午夜福利在线观看视频| 亚洲精品美女久久av网站| 变态另类成人亚洲欧美熟女| 亚洲成国产人片在线观看| 久久香蕉国产精品| 久热爱精品视频在线9| 国产日本99.免费观看| 天堂动漫精品| 亚洲欧美精品综合一区二区三区| 欧美黄色淫秽网站| 国产一区二区激情短视频| 久久国产亚洲av麻豆专区| 嫁个100分男人电影在线观看| 日韩 欧美 亚洲 中文字幕| 一级毛片高清免费大全| 这个男人来自地球电影免费观看| 成人三级黄色视频| 色综合婷婷激情| 男人操女人黄网站|