尹義敏,田豐偉,翟齊嘯,王剛,張秋香,張灝,陳衛(wèi),2
(1.江南大學(xué)食品學(xué)院,江蘇無錫214122;2.江南大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室,江蘇無錫214122)
乳酸菌是能夠利用糖類發(fā)酵產(chǎn)乳酸的一類無芽孢、革蘭氏陽性細(xì)菌的總稱,包括乳桿菌、乳球菌和雙歧桿菌等至少23個屬[1]。廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品和飼料等行業(yè)中,被公認(rèn)為是安全的食品級微生物[2]。乳酸菌能維持腸道平衡[3]、降低血清膽固醇[4-6]、增強免疫能力[7]等。
乳酸菌發(fā)酵不斷積累的乳酸,以及胃酸環(huán)境嚴(yán)重影響其生理活性。因此,耐酸性被認(rèn)為是益生乳酸菌篩選過程中重要的因素之一[8]。近年來,適應(yīng)性進化和定向進化被廣泛應(yīng)用于極端微生物的篩選,并且成功選育一些耐極端環(huán)境的微生物,但周期相對較長[9-12]。所以,傳統(tǒng)的誘變育種篩選菌株仍是不錯的選擇。
本實驗對Lactobacillus planturam CCFM8661進行紫外誘變,通過低pH MRS培養(yǎng)基篩選出兩株耐酸能力提高且性能較穩(wěn)定的誘變菌株。
實驗所用菌株為植物乳桿菌(Lactobacillus planta?rum CCFM8661),為江南大學(xué)食品學(xué)院生物技術(shù)中心實驗室自行分離。在MRS培養(yǎng)基中培養(yǎng),培養(yǎng)條件為37℃(24 h)。篩選培養(yǎng)基為pH值為3.5和3.0的MRS培養(yǎng)基(用濃度為1 mol/L的HCl調(diào)節(jié))。
1.2.1 實驗流程
菌種活化→初始菌株生長曲線的測定→菌懸液的制備→紫外誘變處理→耐酸突變株的初篩→耐酸突變株的復(fù)篩→突變株耐酸能力的分析→遺傳穩(wěn)定性的測定
1.2.2 生長曲線的測定
將活化的菌株以2%的接種量接種到MRS液體培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng),每隔2 h取樣測定
OD600值,以空白MRS培養(yǎng)基為對照。以時間為橫坐標(biāo),OD600值為縱坐標(biāo),繪制初始菌株的生長曲線。
將活化初始菌株以2%接種量接種到MRS液體培養(yǎng)基中,37℃恒溫培養(yǎng)至對數(shù)生長期中后期。取出10 mL菌液,在6 000 r/min下離心10 min,棄掉上清液,收集菌體。然后用濃度為0.1 mol/L pH值為7.0磷酸緩沖液(PBS)洗滌3次,主要是將殘留的培養(yǎng)基洗凈。將細(xì)胞重新懸浮在PBS緩沖液中,將細(xì)胞濃度調(diào)節(jié)到108mL-l,制成菌懸液。最后加入玻璃株振蕩分散10 min,用無菌脫脂棉過濾,使形成單細(xì)胞,分散程度達90%~95%。
取制備好的菌懸液5 mL于直徑9 cm的無菌平皿中,在其中加入轉(zhuǎn)子。紫外燈打開預(yù)熱30 min,以穩(wěn)定光波。將盛有菌懸液的平皿放置磁力攪拌器上,放到離功率為15W的紫外燈30 cm處,開啟磁力攪拌器,打開平皿蓋,暴露紫外光下照射一定時間,邊攪拌邊照射,力求使細(xì)胞均勻吸收紫外線光波。使用秒表計時,分別照射15,30,45,60,75,90 s。以上照射過程是在有紅光的暗室內(nèi)進行,以免光修復(fù)。
分別取經(jīng)過UV照射處理的菌液與未照射處理的(作為空白對照)菌懸液1 mL進行梯度稀釋。取0.1 mL稀釋液在MRS固體培養(yǎng)基上涂勻,將平板用黑布包好,倒置于37℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,待平板上長出菌落進行計數(shù)計算致死率[13]。實驗三次平行,取平均值。
致死率為
致死率=(A-B)/A×100%,
式中:A為未經(jīng)照射處理菌體長出的菌落數(shù);B為紫外照射處理菌體長出的菌落數(shù)。
挑選形狀規(guī)則的誘變后單菌落移至MRS液體培養(yǎng)基上,并置于37℃,培養(yǎng)24 h。再以2%接種量分別接種于含200 μL pH3.5 MRS培養(yǎng)基的96孔板中,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,使用酶標(biāo)儀測得OD600,計算相對生長率。將初篩得到相對生長率明顯高于出發(fā)菌株的菌體挑選出來,以2%接種量轉(zhuǎn)接到含200 μL pH3.0 MRS培養(yǎng)基的96孔板中,37℃下培養(yǎng)24 h,用酶標(biāo)儀測得OD600,計算相對生長率[14],即相對生長率=(d-b-c)/(a-b-c)× 100%,
式中:a為測定的菌株在pH=6.3的培養(yǎng)基中生長的吸光值;b為測得的空白培養(yǎng)基的吸光值;c為計算得接種時的吸光值(10%接種量×菌株活化后的吸光值);d為測定的菌株在pH=3.5培養(yǎng)基中生長的吸光值。
將上述實驗得到的突變株在MRS液體培養(yǎng)基中連續(xù)傳代10次,將每一代都接種到pH值為3.0的MRS液體培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)24 h。取每次傳代菌株的菌液測定其OD600,計算相對生長率。每代重復(fù)三次,觀察其遺傳穩(wěn)定性。
為了比較突變株與原始菌株在pH值為3.5條件下的生長情況,將正突變株與出發(fā)菌株分別接種到pH值為3.5的MRS液體培養(yǎng)基中,37℃下培養(yǎng)24 h。然后梯度稀釋,測定活菌數(shù)。
將突變株與原始菌株接種到pH值為3.0的MRS液體培養(yǎng)基中,脅迫不同時間,梯度稀釋涂在MRS平板上測定活菌數(shù)和存活率來比較分析存活能力。
為了保證誘變處理時細(xì)胞具有一定的濃度從而可以增加細(xì)胞變異數(shù),選擇對數(shù)生長中后期的細(xì)胞進行誘變處理。生長曲線如圖1所示。
由圖1可以看出,L.plantarum CCFM8661的對數(shù)期在4~14 h,之后菌液濃度基本保持不變,因此選用12 h的菌體制備菌懸液進行紫外誘變處理。
圖1 L.plantarum CCFM8661的生長曲線
用于微生物誘變的紫外線劑量的表示方法,可分絕對劑量和相對劑量。絕對劑量需要用一種劑量儀來測定,由于操作困難,不常被采用。常采用紫外線的致死率來表示相對劑量。
根據(jù)文獻報道[12],一般認(rèn)為誘變后菌體的致死率在90%~95%效果較好,更容易篩選出變異幅度較大的突變菌株。因此本文以此為依據(jù)確定最佳誘變劑量。
以照射時間為橫坐標(biāo),致死率(%)為縱坐標(biāo)繪制L.plantarum CCFM8661的致死率曲線,如圖2所示。
圖2 L.plantarum CCFM8661的致死率曲線
由圖2可以看出,隨著紫外線照射時間的延長,致死率逐漸上升。當(dāng)照射15 s時,致死率為65.27%。當(dāng)照射30 s時,致死率達到90.30%,之后致死率趨于平緩。按照菌體致死率大約在90%~95%之間的誘變劑量來觀察其正突變率。因此,本研究采取照射時間為30 s,致死率為90.30%。
對L.plantarum CCFM8661紫外誘變30 s,從誘變后的突變菌株中挑取107個菌落進行篩選,分別編號為V-1到V-107,在pH3.5的MRS液體培養(yǎng)基中初篩得到13株相對生長率明顯高于原始菌株,然后在pH3.0的MRS液體培養(yǎng)基進行復(fù)篩。13株菌的相對生長率具體數(shù)據(jù)結(jié)果如表1所示。表1中數(shù)據(jù)為三組平行的平均值。
表1 菌株在不同pH值的培養(yǎng)基中的相對生長率
由表1可以看出,經(jīng)過初步篩選,有13株突變菌株在pH值為3.5的MRS液體培養(yǎng)基中相對生長率明顯高于原始菌株;經(jīng)過pH值為3.0的培養(yǎng)基進行復(fù)篩,其相對生長率提高幅度不大,僅有兩株突變株相對生長率大于6%。其中,V-30在pH值為3.5的相對生長率由39.83%提高到49.67%,V-48相對生長率由39.83%提高到51.18%;V-30在pH值為3.0的相對生長率由3.30%提高到7.30%,V-48相對生長率由3.30%提高到6.96%。所以由此可判斷V-30與V-48較原始菌株更能耐受pH值為3.5與pH值為3.0的酸環(huán)境。即V-30與V-48作為下面實驗研究的目標(biāo)突變株。
L.plantarumCCFM8661的突變菌株V-30和V-48遺傳穩(wěn)定性的測定結(jié)果如圖3所示。
由圖3可以得出,在pH值為3.0的條件下突變株V-30和V-48每傳一代的相對生長率都比較穩(wěn)定,沒有出現(xiàn)原位回復(fù)突變的情況,由此可以說明誘變菌株的遺傳穩(wěn)定性較好。
為了分析突變菌株的耐酸性質(zhì),將原始菌株與突變株在pH值為3.5條件培養(yǎng)測定活菌數(shù),在pH值為3.0條件下分別培養(yǎng)2,4和6 h測定存活率,結(jié)果如圖4所示。圖4中,V-30與V-48的活菌數(shù)明顯高于原始菌株,分別是原始菌株的2.06和2.46倍。不同字母代表的組別間具有顯著性差異(P<0.05)。
圖3 遺傳穩(wěn)定性測定結(jié)果
圖4 突變菌株在pH3.5的MRS液體培養(yǎng)基中的生長能力
由圖4可以看出,在pH值為3.5的MRS中培養(yǎng)24 h后,V-30與V-48的活菌數(shù)明顯高于原始菌株,分別是原始菌株的2.06和2.46倍。
圖5 突變株在pH=3.0 MRS培養(yǎng)基中的存活率
圖5為突變菌株V-30、V-48和原始菌株L.plan?tarumCCFM8661對鹽酸脅迫的耐受性。由圖4可以看出,隨著鹽酸脅迫時間的延長,原始菌株與突變菌株的存活率都存在不同程度的下降,當(dāng)脅迫6 h后,原始菌株存活率為44%,而突變株V-30存活率為74.58%,V-48存活率為76.74%,分別提高了30.58%和32.74%。
乳酸菌作為益生菌,發(fā)揮其益生作用必須達到一定的活菌數(shù)。然而,外部的酸脅迫環(huán)境與人體內(nèi)胃酸溶液都嚴(yán)重地影響了它的生理特性。因此,提高乳酸菌的酸耐受性是非常有必要的。而紫外誘變作為一種傳統(tǒng)的誘變育種方法,條件簡單、易于操作,在篩選耐極端環(huán)境的乳酸菌也有成功的報道。
本研究選擇L.plantarum CCFM8661作為出發(fā)菌株,通過紫外誘變的方法來提高耐酸能力。結(jié)果表明,經(jīng)過紫外誘變得到的兩株突變株V-30與V-48在pH值為3.5和3.0的相對生長率均有所提高,且在pH值為3.0條件下存活能力也明顯增強。表明紫外誘變對植物乳桿菌提高耐酸性是有效果的,為進一步研究耐酸機制奠定了基礎(chǔ)。
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