李士林,王宜君,湯朝起,許贛榮
(1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122;2.上海煙草集團(tuán)有限責(zé)任公司,上海 200082)
耐高溫菌的分離及在固態(tài)發(fā)酵上部煙葉中的應(yīng)用
李士林1,王宜君1,湯朝起2,許贛榮1
(1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122;2.上海煙草集團(tuán)有限責(zé)任公司,上海 200082)
從上部低次煙葉中篩選出耐高溫淀粉酶產(chǎn)生菌GW-2和耐高溫蛋白酶產(chǎn)生菌GW-3,通過對菌落的形態(tài)觀察、16S rRNA的鑒定和同源性分析,初步確定GW-2為解淀粉芽胞桿菌,GW-3為枯草芽胞桿菌。對上部低次煙葉進(jìn)行雙菌種固態(tài)發(fā)酵,并優(yōu)化發(fā)酵條件,最佳發(fā)酵條件:GW-2菌懸液(OD600=1)接種量為7.5 mL/g,GW-3菌懸液(OD600=1)接種量為10 mL/g,物料填充度為500 mL三角瓶中裝50 g煙葉干基,當(dāng)煙葉發(fā)酵水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)為45%時,48℃發(fā)酵5 d。在該發(fā)酵條件下,上部低次煙葉的淀粉降解率為22.33%,蛋白質(zhì)降解率為16.74%。煙葉淀粉和蛋白質(zhì)的質(zhì)量分?jǐn)?shù)較大幅度下降,其含量指標(biāo)接近優(yōu)等煙葉的含量。該發(fā)酵方式比傳統(tǒng)的貯存式煙葉發(fā)酵大大縮短了發(fā)酵時間。
上部低次煙葉;耐高溫有益菌;固態(tài)發(fā)酵;淀粉;蛋白質(zhì)
國內(nèi)優(yōu)等煙葉中淀粉和蛋白質(zhì)的質(zhì)量分?jǐn)?shù)一般在4%和7%左右[1],而本實(shí)驗(yàn)所涉及的上部低次煙葉中的淀粉、蛋白質(zhì)的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為7%以上和10%以上,較優(yōu)等煙葉明顯偏高,致使吸食后香氣欠缺、較苦、刺激性大,目前只用于低檔卷煙的配方中,或者直接丟棄,嚴(yán)重影響了卷煙行業(yè)的經(jīng)濟(jì)效益[2-4]。如果能降低上部低次煙葉中淀粉和蛋白質(zhì)的含量,可有效減少煙葉在吸食過程中產(chǎn)生的辛辣味和刺激性,提高煙葉的利用價值,減少資源的浪費(fèi)[5]。
煙葉表面定殖大量微生物,這些微生物在煙葉的貯存過程中對于改進(jìn)煙葉品質(zhì)發(fā)揮一定的作用。目前,利用人工接種微生物對煙葉進(jìn)行發(fā)酵的研究也有不少報道,但是大多數(shù)研究均局限于低水分(發(fā)酵水分低于 20%)下的貯存式發(fā)酵[6-7]。在固態(tài)低水分狀態(tài)下,微生物的生長代謝速度一般較為緩慢,因此會影響煙葉發(fā)酵陳化的速度。而煙葉在高水分發(fā)酵時,雖然可以加快發(fā)酵速度,但是也極易引起霉菌的生長。筆者在研究中發(fā)現(xiàn),當(dāng)煙葉發(fā)酵溫度超過48℃時,未發(fā)現(xiàn)煙葉發(fā)霉現(xiàn)象。所以采用高溫、高水分發(fā)酵的方法值得探索。從煙葉中篩選產(chǎn)淀粉酶和蛋白酶的耐高溫微生物,并將其應(yīng)用于煙葉的固態(tài)發(fā)酵,有可能加速并有效地降解低次煙葉中的淀粉和蛋白質(zhì),從而提高煙葉的品質(zhì)。
1.1 材料與儀器
上部低次煙葉(2012年福建煙葉),由上海煙草集團(tuán)有限責(zé)任公司提供;H2-2型電熱恒溫振蕩水槽,上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;UV 3000型紫外-可見分光光度計,日本Hitachi公司;FA 1004型電子天平,上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司;PL602-S型電子天平,METTLER TOLEDO儀器上海儀器有限公司;PB-10型pH計,SartoriUs公司;Sartorius MA-40型紅外線水分測試儀,德國賽多利斯公司;PYX-XHS-405型電熱恒溫培養(yǎng)箱,上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠;SW-CJ-IFD型超凈工作臺,蘇州安泰空氣技術(shù)公司。
富集培養(yǎng)基(g/L):牛肉膏5.0,蛋白胨10.0, NaCl 5.0;pH 7.0~7.2。
種子液培養(yǎng)基:同富集培養(yǎng)基。
肉湯瓊脂培養(yǎng)基(g/L):牛肉膏5.0,蛋白胨10.0,瓊脂20.0,NaCl 5.0;pH 7.0~7.2。
斜面保藏培養(yǎng)基:同肉湯瓊脂培養(yǎng)基。
淀粉液態(tài)培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨 10.0,NaCl 5.0,可溶性淀粉20.0;pH 7.0~7.2。
淀粉瓊脂培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨 10.0,NaCl 5.0,可溶性淀粉20.0,酵母膏5.0,瓊脂20.0;pH 7.0~7.2。
奶粉液態(tài)培養(yǎng)基:酵母膏5.0 g,蛋白胨10.0 g,NaCl 5.0 g,瓊脂20.0 g,去離子水900 mL。脫脂奶粉10 g,溶于100 mL去離子水中,121℃滅菌20 min。將二者在無菌環(huán)境下混勻。
奶粉瓊脂培養(yǎng)基:于奶粉液態(tài)培養(yǎng)基中加20 g/L的瓊脂。
以上培養(yǎng)基都調(diào)節(jié)pH至7.0~7.2,于121℃滅菌20 min。
豆芽汁培養(yǎng)基:黃豆芽200 g,蒸餾水1 L,煮沸15 min,用紗布過濾,加葡萄糖20.0 g,酵母膏0.5 g,pH自然,121℃滅菌20 min。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 耐高溫淀粉酶產(chǎn)生菌和蛋白酶產(chǎn)生菌的分離篩選
耐高溫菌的篩選 取粉碎后的煙葉末1.0 g,裝入盛有100 mL富集培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,50℃、200 r/min搖床培養(yǎng)24 h。將培養(yǎng)液涂布到肉湯瓊脂培養(yǎng)基平板中,于培養(yǎng)箱50℃恒溫培養(yǎng)72 h,將生長出的細(xì)菌通過劃線法獲得單菌落后接入斜面保存。
初篩 將篩選出的單菌落分別點(diǎn)接種到淀粉培養(yǎng)基平板和奶粉培養(yǎng)基平板中,50℃培養(yǎng)24 h,篩選出的菌株接入斜面保藏。
篩選菌株發(fā)酵液酶活測定 將初篩得到的單菌落分別接種到含100 mL種子液培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,50℃、200 r/min搖床培養(yǎng)24 h,然后分別取2 mL菌液接種至100 mL淀粉液態(tài)培養(yǎng)基或奶粉液態(tài)培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,50℃、200 r/min培養(yǎng)72 h;發(fā)酵液于8 000 r/min離心5 min,取上清液測酶活。
菌株的復(fù)篩 取50 g煙葉,分別噴灑單一菌株的菌懸液5 mL,補(bǔ)水至煙葉水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)為40%,將煙葉裝入500 mL三角瓶中,50℃下發(fā)酵3 d,發(fā)酵結(jié)束后測煙葉的淀粉和蛋白質(zhì)含量。分別篩選出淀粉和蛋白質(zhì)降解率最高的菌株,接入斜面保藏。
1.2.2 種子菌懸液的制備
用接種針將斜面上的菌種點(diǎn)接到含100 mL種子液培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,37℃、200 r/min搖床培養(yǎng)24 h,然后分別取2 mL種子液接種至含100 mL豆芽汁培養(yǎng)基的500 mL三角瓶中,37℃、200 r/min搖床培養(yǎng)24 h,4 000 r/min離心5 min,取菌體,加適量無菌水,配制成OD600=1的菌懸液,用于人工接種發(fā)酵。
1.2.3 雙菌種固態(tài)發(fā)酵方法
量取優(yōu)化后的菌株菌懸液3.75 mL、優(yōu)化后的菌種菌懸液10 mL均勻噴灑50 g煙葉(干基)中,補(bǔ)水使煙葉水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)為45%。將煙葉均勻裝入500 mL三角瓶中,于培養(yǎng)箱中48℃下發(fā)酵。
1.3 分析方法
1.3.1 發(fā)酵液淀粉酶和蛋白酶酶活的測定
采用3,5-二硝基水楊酸(DNS)法[8]測定淀粉酶活性。溫度為50℃時,1 min催化分解淀粉生成1 mg麥芽糖所需酶量定義為1個酶活(U),對3個平行樣品進(jìn)行測定。
1.3.2 蛋白酶酶活測定
采用Folin-酚試劑顯色法[9]測定蛋白酶活性。溫度為50℃時,1 min生成1 μg酪氨酸所需酶量定義為1個酶活(U),對3個平行樣品進(jìn)行測定。
1.3.3 細(xì)菌的形態(tài)特征
將37℃培養(yǎng)48 h的平板進(jìn)行菌落形態(tài)觀察,將37℃培養(yǎng)24 h的種子液進(jìn)行革蘭氏染色,在油鏡下觀察細(xì)菌的形態(tài),參照文獻(xiàn)[10]。
1.3.4 16S rDNA序列分析
所用引物為細(xì)菌 16S rDNA的通用引物。16SF:5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′;16SR:5′-TACGGCTACCTTGTTACGACTT-3′由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
擴(kuò)增(PCR)反應(yīng)體系(25 μL)為 dNTP(10 mmol/L)0.5 μL,10×PCR緩沖液2.5 μL,Mg2+(20 mmol/L)2 μL,引物(20 μmol/L)各0.5 μL,模板DNA(約50 ng/μL)1 μL,Taq酶(5 U/μL)0.2 μL,補(bǔ)水至25 μL。
擴(kuò)增(PCR)程序:95℃預(yù)變性5 min,94℃變性30 s,52℃退火45 s,72℃延伸60 s,35個循環(huán);最后72℃延伸8 min。擴(kuò)增產(chǎn)物用0.75%的瓊脂糖凝膠電泳回收,純化后的產(chǎn)物進(jìn)行測序,測序后獲得的16S rDNA序列登錄http://blast.ncbi.nlm.nih. gov/Blast.cgi網(wǎng)站,用BLAST程序進(jìn)行序列比對分析,應(yīng)用ClustalX、Mega4軟件,采用Neighbor-Joining法(鄰接法)建立進(jìn)化樹狀圖。
1.3.5 煙葉化學(xué)成分的測定
煙葉水分的測定采用紅外快速水分測定儀測定;煙葉水溶性總糖及淀粉的測定參照文獻(xiàn)[11];總氮、蛋白質(zhì)測定采用凱氏定氮法;煙堿含量采用紫外分光光度法。淀粉和蛋白質(zhì)的降解率的計算見式(1)和式(2)。
2.1 耐高溫淀粉酶產(chǎn)生菌的初篩結(jié)果
經(jīng)50℃平板培養(yǎng),初篩獲得5株耐高溫細(xì)菌(編號為GW-1~GW-5)。利用淀粉瓊脂培養(yǎng)基對這5株菌進(jìn)行復(fù)篩,發(fā)現(xiàn)其中4株菌GW-1、GW-2、GW-4和GW-5具有淀粉降解能力,GW-3沒有淀粉降解能力。所測得的淀粉水解透明圈與發(fā)酵液淀粉酶活力如表1所示。
表1 4株菌的淀粉水解透明圈及發(fā)酵液淀粉酶活力Table 1 Starch hydrolysis halos and amylase activities of 4 strains
由表1比較不同菌種在平板上的透明圈直徑/菌落直徑值以及發(fā)酵液淀粉酶活力發(fā)現(xiàn),GW-5的透明圈直徑/菌落直徑比值最大,GW-2的發(fā)酵液淀粉酶活力最高。鑒于鑒定培養(yǎng)基與煙草發(fā)酵基質(zhì)成分上存在差異性,本研究進(jìn)一步將4株菌接種至煙葉發(fā)酵基質(zhì)進(jìn)行發(fā)酵實(shí)驗(yàn)考察煙葉中淀粉的降解情況,對照組為不接種煙葉,結(jié)果如圖1所示。
圖1 不同菌株發(fā)酵后煙葉淀粉降解率的比較Fig.1 Comparison of starch decomposition rates of tobacco leaf after fermentation
由圖1可見:4株淀粉酶產(chǎn)生菌均對煙葉中的淀粉有不同程度的降解,其中GW-2菌株的淀粉降解率最高,故選擇GW-2為最佳發(fā)酵菌株。
2.2 耐高溫蛋白酶產(chǎn)生菌株的篩選
利用奶粉瓊脂培養(yǎng)基對5株菌進(jìn)行復(fù)篩,發(fā)現(xiàn)GW-1、GW-2、GW-3、GW-4和GW-5具有蛋白質(zhì)降解能力。所測得的蛋白質(zhì)水解透明圈與發(fā)酵液淀粉酶活力如表2所示。
表2 5株菌的蛋白質(zhì)水解透明圈及發(fā)酵液蛋白酶活力Table 2 Protein hydrolysis halos and protease activities of 5 strains
由表2比較不同菌種在平板上的透明圈直徑/菌落直徑比值以及發(fā)酵液蛋白酶活力發(fā)現(xiàn),GW-3的透明圈直徑/菌落直徑比值最大,GW-4的發(fā)酵液蛋白酶活力最高。鑒于鑒定培養(yǎng)基與煙草發(fā)酵基質(zhì)成分上存在差異性,本研究進(jìn)一步將5株菌接種至煙葉發(fā)酵基質(zhì)進(jìn)行發(fā)酵實(shí)驗(yàn)考察煙葉中淀粉的降解情況,對照組為不接種煙葉,結(jié)果如圖2所示。
圖2 不同菌株發(fā)酵后煙葉蛋白質(zhì)降解率的比較Fig.2 Comparison of protein decomposition rates of tobacco leaf after fermentation
由圖2可見:發(fā)酵結(jié)束后,5種菌對煙葉蛋白質(zhì)都有不同程度的降解,GW-2菌株雖然有蛋白酶酶活性,但是在發(fā)酵過程中煙葉蛋白質(zhì)降解率與對照組相差不大,說明此菌株在煙葉發(fā)酵中沒有表現(xiàn)出蛋白酶酶活性。GW-3的淀粉降解率最高,故選擇GW-3為最佳發(fā)酵菌株。
2.3 GW-2與GW-3的形態(tài)觀察
經(jīng)平板培養(yǎng)48 h后觀察,GW-2菌落呈花瓣形狀,淡黃色不透明,菌落中間呈脈狀;GW-3菌落呈淡黃色不透明,邊緣不整齊,中間凸起。經(jīng)液態(tài)培養(yǎng)24 h后顯微鏡觀察,GW-2菌株呈短桿狀,GW-3菌株呈球狀或橢圓狀,經(jīng)革蘭氏染色后,兩株菌均呈陽性。
2.4 GW-2與GW-3的16S rRNA序列分析
GW-2菌株的16S rRNA序列全長為1 413 bp,用BLAST進(jìn)行比對,比對結(jié)果表明GW-2與解淀粉芽胞桿菌的同源性為100%,初步確定GW-2菌株為解淀粉芽胞桿菌。菌株GW-3菌株的16S rRNA序列全長1 404 bp,用BLAST進(jìn)行比對,比對結(jié)果表明GW-3與枯草芽胞桿菌的同源性為100%,初步確定GW-3菌株為枯草芽胞桿菌,經(jīng)比對構(gòu)建樹狀圖,如圖3所示。
2.5 雙菌種固態(tài)發(fā)酵上部低次煙葉發(fā)酵條件的確定
2.5.1 GW-3菌株菌懸液接種量的確定
由于上部低次煙葉蛋白質(zhì)含量過高,從而導(dǎo)致煙葉辛辣味,所以降低蛋白質(zhì)的含量是首要目標(biāo)。本實(shí)驗(yàn)中,筆者設(shè)計GW-3菌株菌懸液接種量為2.5~15(mL/g),發(fā)酵結(jié)束后測得煙葉蛋白質(zhì)降解率,如圖4所示。
圖3 GW-2和GW-3的16S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹Fig.3 Phylogenetic trees of 16S rDNA of GW-2 and GW-3 strain
圖4 GW-3接種量對煙葉蛋白質(zhì)降解率的影響Fig.4 Effects of inoculum of GW-3′s bacterial suspension on decomposition rate of protein in tobacco
由圖4可見:蛋白質(zhì)的降解率隨著GW-3菌懸液用量的增加而升高,當(dāng)接種量為10 mL/g時,蛋白質(zhì)降解率達(dá)到最大值,之后隨著接種量的增加,蛋白質(zhì)降解率基本不變。
2.5.2 GW-2菌懸液接種量的確定
設(shè)計GW-3接種量為10 mL/g,GW-2接種量為2.5~12.5 mL/g,發(fā)酵結(jié)束后煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率如圖5所示。
由圖5可見:當(dāng)GW-2接種量達(dá)到7.5 mL/g時,蛋白質(zhì)的降解率開始有所下降,這可能是GW-2生物量過多,影響了 GW-3的代謝。故選擇GW-2的接種量為7.5 mL/g。
2.5.3 物料填充度的影響
固態(tài)發(fā)酵時,煙葉物料填充度的大小會影響O2的傳遞,進(jìn)而影響微生物的生長。設(shè)計物料填充度范圍為每500 mL三角瓶中30~80 g煙葉干基,發(fā)酵結(jié)束后測得煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率,如圖6所示。
圖5 GW-2接種量對煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率的影響Fig.5 Effects of inoculum of GW-2′s bacterial suspension on decomposition rate of starch and protein in tobacco
圖6 物料填充度對煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率的影響Fig.6 Effects of filling degree on decomposition rate of starch and protein in tobacco
由圖6可見:填充度為30~50 g煙葉干基時,淀粉和蛋白質(zhì)的降解率維持較高且基本不變;當(dāng)填充度超過50 g煙葉干基時,淀粉和蛋白質(zhì)的降解率會隨著填充度的增大而降低。為了節(jié)省空間,最佳物料填充度確定為每500 mL三角瓶中填充50 g煙葉干基。
2.5.4 發(fā)酵溫度的影響
當(dāng)發(fā)酵水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)達(dá)30%以上時,發(fā)酵溫度只有到達(dá)48℃以上時霉菌才不能生長,而發(fā)酵溫度過高會使煙葉變黑,故設(shè)置本實(shí)驗(yàn)發(fā)酵溫度為48、50、52、54和56℃,煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率結(jié)果如圖7所示。
圖7 發(fā)酵溫度對煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率的影響Fig.7 Effects of fermentation temperatures on decomposition rate of starch and protein in tobacco
由圖7可見:煙葉淀粉和蛋白質(zhì)的降解率隨著發(fā)酵溫度的升高而下降,雖然2株菌都可以在48℃下生長,但溫度的升高也會抑制菌體的生長活動。所以本實(shí)驗(yàn)的發(fā)酵溫度確定為48℃。
2.5.5 煙葉物料水分的影響
水分是影響固態(tài)發(fā)酵的重要條件,水分的高低影響著微生物的生長代謝活動。研究不同發(fā)酵水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)對發(fā)酵后煙葉的淀粉和蛋白質(zhì)的降解率的影響,結(jié)果如圖8所示。
圖8 發(fā)酵水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)對煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率的影響Fig.8 Effects of tobacco leaf moisture content on decomposition rate of starch and protein in tobacco
由圖8可見:發(fā)酵結(jié)束后上部低次煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率隨著發(fā)酵水分的增加而逐漸提高。當(dāng)發(fā)酵水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)超過45%時,淀粉和蛋白質(zhì)降解率變化趨緩。考慮到水分過高,發(fā)酵后煙葉的顏色變深,發(fā)酵水分宜低不宜高,故發(fā)酵水分質(zhì)量分?jǐn)?shù)選擇45%。
2.5.6 發(fā)酵時間的影響
發(fā)酵時間對微生物生長及其代謝產(chǎn)物有重要的影響。在確定其他發(fā)酵條件下,設(shè)計不同的發(fā)酵時間,發(fā)酵結(jié)束后煙葉淀粉和蛋白質(zhì)的降解率如圖9所示。
煙葉在高水分高溫度發(fā)酵過程中,煙葉的形狀和顏色隨著發(fā)酵時間的延長而變化嚴(yán)重,因此應(yīng)該盡量縮短發(fā)酵時間。本實(shí)驗(yàn)在發(fā)酵第5天時,淀粉和蛋白質(zhì)的降解率達(dá)到 22.33%和16.74%。淀粉和蛋白質(zhì)的質(zhì)量分?jǐn)?shù)降低至5.80%和8.49%,已經(jīng)達(dá)到優(yōu)等煙葉的含量要求,而且從圖9中還可看出,延長發(fā)酵時間,對提高煙葉中淀粉和蛋白質(zhì)的降解率沒有明顯的作用。故本實(shí)驗(yàn)決定發(fā)酵時間為5 d。
圖9 發(fā)酵時間對煙葉淀粉和蛋白質(zhì)降解率的影響Fig.9 Effects of fermentation time on decomposition rate of starch and protein in tobacco
2.5.7 發(fā)酵結(jié)束后上部低次煙葉化學(xué)成分變化
將2.5.6中發(fā)酵結(jié)束的煙葉進(jìn)行化學(xué)成分的測定,結(jié)果如表3所示。
由表3可見:發(fā)酵結(jié)束后的煙葉較原煙葉淀粉和蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)大幅度降低,水溶性總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)略有上升,總氮和煙堿質(zhì)量分?jǐn)?shù)略有下降。煙堿的下降也會提高煙葉的利用價值。
施木刻值和糖氮比是衡量煙葉品質(zhì)的重要標(biāo)準(zhǔn)。優(yōu)等煙葉的施木刻值為2~2.5,糖氮比為(6~10)∶1[1]。發(fā)酵結(jié)束后的煙葉施木刻值更加接近2,糖氮比更加接近6,煙葉的化學(xué)成分變得更加協(xié)調(diào),煙葉的品質(zhì)得到了明顯的改善。
表3 雙菌種發(fā)酵結(jié)束后煙葉的主要化學(xué)成分及其變化Table 3 Changes of chemical composition in tobacco after fermentation by two strains
從上部低次煙葉中篩選出耐高溫淀粉酶產(chǎn)生菌GW-2和耐高溫蛋白酶產(chǎn)生菌GW-3,通過對2株菌菌落的形態(tài)觀察和16S rRNA的鑒定,初步鑒定為解淀粉芽胞桿菌和枯草芽胞桿菌。利用2株菌對上部低次煙葉進(jìn)行雙菌種固態(tài)發(fā)酵,并對發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果表明,上部低次煙葉雙菌種固態(tài)發(fā)酵的最佳發(fā)酵條件:GW-2菌懸液(OD600=1)接種量為7.5 mL/g,GW-3菌懸液(OD600=1)接種量為10 mL/g,物料填充度為每500 mL三角瓶中添加50 g煙葉干基,發(fā)酵溫度為48℃,煙葉水分為45%,發(fā)酵時間為5 d。在該發(fā)酵條件下,上部低次煙葉的淀粉降解率為22.33%,蛋白質(zhì)降解率為16.74%。煙葉淀粉和蛋白質(zhì)的含量得到了較大幅度的下降,基本達(dá)到了優(yōu)等煙葉的含量要求。
與傳統(tǒng)的煙葉自然陳化相比,筆者所采用的高水分雙菌種固態(tài)發(fā)酵方法最大的優(yōu)點(diǎn)在于能短時間內(nèi)大幅度降解上部低次煙葉中淀粉和蛋白質(zhì)的含量,而且由于采用高溫發(fā)酵,基本上可杜絕霉菌的生長,避免煙葉發(fā)霉產(chǎn)生異味。但固態(tài)高溫發(fā)酵對煙葉香氣成分及吸味的影響還有待于進(jìn)一步考察。
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(責(zé)任編輯 管 珺)
Isolation and application of thermotolerant bacterials to solid-state
fermentation of upper-leaves of tobacoo
LI Shilin1,WANG Yijun1,TANG Zhaoqi2,XU Ganrong1
(1.The Key Laboratory of Industrial Biotechnology of the Ministry of Education,School of Biotechnology,Jiangnan University,Wuxi 214122,China;2.Shanghai Tobacco Group Co.Ltd.,Shanghai 200082,China)
In this study,two thermotolerant strains were isolated from tobacoo leaves.One is an amylase producing bacterial strain named GW-2 and another is a protease producing bacterial strain named GW-3.By morphological observation of colonies and 16S rRNA sequence homology analysis,they were identified as Bacillus subtilis and Bacillus amyloliquefaciens.Then the two strains were used for tobacco solid-state fermentation,and the condition was optimized by monofactorial experiments.The experimental results show that the best conditions for solid-state fermentation were that:inoculum of bacterial suspension(OD600=1)of GW-2 and GW-3 were 7.5 mL/g and 10 mL/g,respectively,charge amount of tobacoo was 50 g(500 mL flask),fermentation temperature was 48℃,moisture content of the tobacco was 45%and fermentation time was 5 d.Under these conditions of solid-state fermentation,the starch and protein decomposition rates in the upper leaves of flue-cured tobacco were 22.33%and 16.74%,respectively.The content of starch and protein in the upper leaves of flue-cured tobacco was close to the standard of the top quality tobacco.In this way,the fermentation time was greatly shortened than traditional storage fermentation.
upper leaves of flue-cured tobacco;thermotolerant bacterials;solid-state fermentation;starch;protein
Q93
A
1672-3678(2015)01-0035-07
10.3969/j.issn.1672-3678.2015.01.007
2013-12-13
上海煙草集團(tuán)有限責(zé)任公司科技項(xiàng)目(SZBCW201000744)
李士林(1987—),男,山東臨沂人,碩士研究生,研究方向:發(fā)酵工學(xué);許贛榮(聯(lián)系人),教授,E-mail:grxu123@126.com