王斯 周翠平 王敬君
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞又稱為骨髓間充質(zhì)基質(zhì)細(xì)胞,其在機(jī)體的骨代謝平衡的調(diào)節(jié)中起著關(guān)鍵的作用[1,2]。人體增加和維持骨量的主要細(xì)胞來源即為BMSCs 分化所形成得成骨細(xì)胞,是人體骨骼維持健康的重要因素[1-3]。骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的衰老是與人體的衰老一同發(fā)生發(fā)展的,隨著骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的逐漸衰老,其成骨分化的能力開始減弱,骨生成的能力隨之降低,從而導(dǎo)致一系列的骨代謝性疾?。?,5],如骨質(zhì)疏松癥(Osteoporosis)等[5]。(±)Bay K8644 是一種小分子化合物,是一種特異性的L 型鈣通道激動(dòng)劑,在研究中發(fā)現(xiàn)其能夠通過激活L 型鈣通道從而促進(jìn)細(xì)胞外的鈣離子內(nèi)流[6,7]。我們在小分子化合物的篩選過程中發(fā)現(xiàn)了(±)Bay K8644 對干細(xì)胞干性標(biāo)志物Nanog 的作用,通過(±)Bay K8644 干預(yù),Nanog 在轉(zhuǎn)錄水平的表達(dá)出現(xiàn)了明顯的提升。隨后我們進(jìn)行了一系列的相關(guān)研究,來探明(±)Bay K8644 對衰老的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的干性以及衰老特征的影響,同時(shí)對BMSC 的分化能力進(jìn)行了相關(guān)的檢測研究。
1.1 動(dòng)物與試劑
1.1.1 24 月齡健康雌性大鼠(n =8)用于衰老的BMSCs 的分離培養(yǎng)。大鼠購買自河北醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,清潔級(jí)。
1.1.2 試劑:高糖D-MEM 細(xì)胞培養(yǎng)基(Hyclone,美國)、胎牛血清(Gibco,美國),青鏈霉素(Coning,美國),胰蛋白酶(Hyclone,美國)β-甘油磷酸鈉、地塞米松、維生素C(Merck,美國);(±)Bay K8644(Sigma,美國)、二甲基亞砜(上海第一化學(xué)廠)、β-galactosidase染色試劑盒(Beyond,中國)、堿性磷酸酶活性定量試劑盒(Beyond,中國)、堿性磷酸酶染色試劑盒(建成生物,中國);Trizol reagent(Invitrogen,美國)、ReverTra Ace qPCR RT Master Mix(TAKALA,日本)、DEPC 水(碧云天,中國),THUNDERBIRD SYBR qPCR Mix(TAKALA,日本);RIPA 細(xì)胞裂解液(BD,美國),PMSF(Sigma,美國),BCA 蛋白濃度測定試劑盒(赫特生物,中國)、蛋白上樣緩沖液(loading buffer)(碧云天,中國)、PVDF 膜(0.45nm)(密理博,美國)、SDS-Page凝膠試劑盒、Tris-Glycine-SDS 電泳緩沖液、Tris-Tricine-SDS 轉(zhuǎn)膜緩沖液、牛血清白蛋白、TBS、吐溫20、anti-OCN(Abcam,美國)、ECL 顯色試劑盒(Santa Cruz,美國)。
1.2 衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離培養(yǎng)
1.2.1 細(xì)胞分離與培養(yǎng):大鼠注射過量1%戊巴比妥鈉麻醉后,斷頸處死。75%乙醇浸泡消毒10 min 后,置于超凈臺(tái)內(nèi),分離其四肢長骨,剪去長骨兩端并暴露髓腔,使用5 ml 注射器吸取PBS 對髓腔進(jìn)行沖洗,將沖出的骨髓于培養(yǎng)皿中吹打至粉碎,隨后收集組織懸液,1 500 r/min離心10 min,使用含10%胎牛血清1%雙抗的高糖D-MEM 細(xì)胞培養(yǎng)基重懸細(xì)胞,移入培養(yǎng)瓶內(nèi),置于37℃含5%二氧化碳的孵箱內(nèi)培養(yǎng)。待細(xì)胞生長至80%時(shí)進(jìn)行傳代培養(yǎng),第三代細(xì)胞用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
1.2.2 細(xì)胞衰老狀態(tài)的檢測:細(xì)胞生長至80%時(shí),使用胰蛋白酶消化細(xì)胞,并以6×104/孔的密度接種至24 孔培養(yǎng)板(NUNC,美國)內(nèi)培養(yǎng),在培養(yǎng)12 h 后使用β-gal 染色試劑盒進(jìn)行染色。方法為吸取培養(yǎng)孔內(nèi)的細(xì)胞培養(yǎng)液,使用PBS 洗滌3 次,隨后使用4%多聚甲醛于室溫固定10 min,PBS 洗滌3 次,染色工作液按說明書配置后加入培養(yǎng)板,于37℃無二氧化碳的孵箱過夜。第2 天在普通光學(xué)顯微鏡下進(jìn)行觀察。
1.3 (±)Bay K8644 對衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的作用
1.3.1 最適作用濃度的選定:將(±)Bay K8644 溶于DMSO 內(nèi),并配置(±)Bay K8644 濃度分別為1×10-6mol/L、1 ×10-7mol/L、1 ×10-8mol/L、1×10-9mol/L的細(xì)胞培養(yǎng)液用于細(xì)胞培養(yǎng)。在培養(yǎng)24 h 后提取各組細(xì)胞的RNA,使用實(shí)時(shí)定量PCR 檢測目標(biāo)基因Nanog 的表達(dá)。通過對不同濃度作用下,Nanog 表達(dá)的變化來選取最適的作用濃度,并用于后續(xù)的其他實(shí)驗(yàn)。實(shí)時(shí)定量PCR 的檢測中,細(xì)胞接種于六孔板內(nèi)進(jìn)行培養(yǎng)和化合物的干預(yù),在干預(yù)結(jié)束后,使用PBS 洗滌,加入1 ml/孔的Trizol,充分裂解細(xì)胞,并移入1.5 ml EP 管內(nèi),加入200 μl 氯仿混勻,于4℃離心機(jī)內(nèi)12 000 r/min 離心15 min,隨后吸取上清液,加入等體積異丙醇混勻后室溫靜置20 min,于4℃離心機(jī)內(nèi)12 000 r/min離心10 min,棄上清,加入500 μl 冰預(yù)冷的無水乙醇,于4℃離心機(jī)內(nèi)12 000 r/min 離心5 min,吸取上清后,使用DEPC 水20 μl 重懸沉淀。于酶標(biāo)儀中測定獲得的RNA 濃度,并使用ReverTra Ace qPCR RT Master Mix 反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行mRNA 的反轉(zhuǎn)錄,每2 毫克的總RNA 用于反轉(zhuǎn)錄。使用SYBR qPCR Mix 對反轉(zhuǎn)錄所獲得的cDNA 進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR 的檢測,選取2 μl 的cDNA 于20 μl 的反應(yīng)體系中進(jìn)行反應(yīng),反應(yīng)在CFX96 TM Real-Time System(Bio-Rad)中進(jìn)行,每個(gè)PCR 反應(yīng)體系使用2 μl 的cDNA。使用Bio-Rad CFX Manager 對結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。引物使用Primer Express 6.0 基于公開cDNA 序列合成,Actin 作為內(nèi)參,每個(gè)PCR 的反應(yīng)使用3 個(gè)副孔進(jìn)行。引物序列見表1。
表1 本文所用的引物序列列表
1.3.2 細(xì)胞β-半乳糖苷酶含量的測定:細(xì)胞以6×104/孔接種至24 孔板,接種后24 h 實(shí)驗(yàn)組使用含(±)Bay K8644 濃度為1×10-8mol/L 的培養(yǎng)液培養(yǎng)24 h,在干預(yù)完成后,使用β-gal 染色試劑盒對干預(yù)后的細(xì)胞進(jìn)行檢測。
1.4 (±)Bay K8644 對衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化的影響
1.4.1 Aging-BMSCs 的成骨分化誘導(dǎo):細(xì)胞生長至80%時(shí),配置含50 μg/ml VC,10 mmol/Lβ-甘油磷酸鈉,10-8mol/L 地塞米松、10%胎牛血清、100 U/ml 青鏈霉素的成骨誘導(dǎo)培養(yǎng)液,對細(xì)胞進(jìn)行誘導(dǎo)。每3 天換液。實(shí)驗(yàn)組加入(±)Bay K8644 進(jìn)行化合物的干預(yù),對照組加入等體積二甲基亞砜。
1.4.2 細(xì)胞成骨分化潛能的檢測:對細(xì)胞進(jìn)行成骨分化誘導(dǎo),在誘導(dǎo)的第7 天,分別提取細(xì)胞的mRNA 和總蛋白,對OCN 的表達(dá)進(jìn)行RT-PCR 檢測和western blot 的檢測。引物序列見表1。在成骨誘導(dǎo)后的第3、7、14 天使用AKP 試劑盒分別對細(xì)胞進(jìn)行堿性磷酸酶(ALP)活性的測定,在第14 天使用BCIP/NBT 試劑盒對細(xì)胞進(jìn)行ALP 染色,在誘導(dǎo)的第21 天對細(xì)胞進(jìn)行茜素紅的染色。細(xì)胞總蛋白的提取:吸取細(xì)胞培養(yǎng)液,pbs 洗滌3 次,加入含1%PMSF 的RIPA 裂解液于冰上進(jìn)行細(xì)胞裂解,10 min 后使用細(xì)胞刮刮取細(xì)胞,使用移液器置于1.5 ml EP 管內(nèi),于 4℃離心機(jī)內(nèi)12 000 r/min離心5 min,將上清移入新的EP 管中,使用BCA 蛋白定量試劑盒進(jìn)行蛋白定量,加入蛋白上樣緩沖液,配置濃度為2 μg/μl 的蛋白懸液,于100℃沸水中煮沸10 min 備用。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析應(yīng)用SPSS 9.0 統(tǒng)計(jì)軟件,使用單因素方差分析進(jìn)行樣本的總體比較,使用SNK 檢驗(yàn)進(jìn)行樣本間的相對比較,P <0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 衰老大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的分離培養(yǎng)選擇健康雌性24 月齡大鼠,取股骨髓腔內(nèi)的骨髓進(jìn)行培養(yǎng),原代培養(yǎng),細(xì)胞呈集落生長,傳代培養(yǎng),鏡下可見細(xì)胞形態(tài)飽滿,折光性好,生長致密。至第三代細(xì)胞進(jìn)行β-gal 染色,結(jié)果證實(shí)細(xì)胞中有大量的β-gal 陽性細(xì)胞分部,因此可以證實(shí)所獲得的BMSCs 為衰老細(xì)胞,可以用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。見圖1 ~2。
圖1 圖1 大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)的光鏡照片
圖2 對細(xì)胞進(jìn)行β-gal 染色,可見β-gal 陽性細(xì)胞大量分部
2.2 (±)Bay K8644 對衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的作用我們首先使用實(shí)時(shí)定量PCR 檢測了在不同濃度的(±)Bay K8644 的作用下,衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞內(nèi)Nanog 的表達(dá)的變化。實(shí)時(shí)定量PCR 的結(jié)果表明,在(±)Bay K8644 濃度為1 000 μmol/L 時(shí),Nanog 的表達(dá)較Control 組出現(xiàn)了降低,而濃度為100 μmol/L和10 μmol/L 時(shí)Nanog 的表達(dá)出現(xiàn)了明顯的提升,并在10 μmol/L 的作用時(shí)表達(dá)達(dá)到最高。而更低的作用濃度(1 μmol/L)的干預(yù)下,Nanog 的表達(dá)出現(xiàn)了降低。因此我們繼續(xù)選擇10 μmol/L 的濃度來進(jìn)行后續(xù)的實(shí)驗(yàn)。在β-gal 的染色的試驗(yàn)中,我們用10 μmol/L 濃度的(±)Bay K8644 對實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞進(jìn)行刺激,隨后染色,并使用Image Pro Plus 軟件進(jìn)行分析,結(jié)果顯示實(shí)驗(yàn)組陽性細(xì)胞的含量(染色面積/總面積)為(0.36±0.09)明顯低于Control 組(0.85±0.08),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。見表2,圖3。
表2 不同濃度(±)Bay K8644 干預(yù)下BMSCs 的Nanog 表達(dá)
圖3 細(xì)胞使用10 μM 的(±)Bay K8644 干預(yù)后β-gal 染色陽性細(xì)胞
2.3 (±)Bay K8644 對Aging-BMSCs 成骨分化能力的影響在成骨誘導(dǎo)第7 天時(shí)對OCN 的表達(dá)進(jìn)行RT-PCR 檢測Control OCN 表達(dá)為(1.00±0.17),(±)Bay K8644 為(1.75±0.21),western blot 檢測,并對所得條帶進(jìn)行提及分析Control OCN 表達(dá)為(74.65±13.59),(±)Bay K8644 為(136.98±21.14),顯示(±)Bay K8644 明顯促進(jìn)了OCN 在mRNA 和蛋白水平的表達(dá)(P <0.05)。在成骨誘導(dǎo)的第14 天對細(xì)胞進(jìn)行堿性磷酸酶染色,染色結(jié)果顯示,通過(±)Bay K8644 的干預(yù),(±)Bay K8644 深染細(xì)胞(0.82±0.23)高于Control(0.64±0.21),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。細(xì)胞內(nèi)堿性磷酸酶的活性出現(xiàn)了明顯的上升。而堿性磷酸酶活性的定量檢測的結(jié)果同樣顯示,實(shí)驗(yàn)組的堿性磷酸酶活性在第7、14 天時(shí)較Control 組有明顯上升。這一結(jié)果表明(±)Bay K8644 能夠促進(jìn)衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化能力。在成骨誘導(dǎo)的第21 天,對細(xì)胞進(jìn)行了茜素紅染色實(shí)驗(yàn),通過實(shí)驗(yàn)證實(shí)了,(±)Bay K8644 干預(yù)后的細(xì)胞產(chǎn)生了更多的礦化結(jié)節(jié)為(0.92±0.22)明顯高于Control 的(0.54±0.26),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05)。見圖4 ~6,表3。
圖4 在成骨誘導(dǎo)第7 天時(shí)對OCN 的表達(dá)進(jìn)行western blot 檢測結(jié)果
表3 成骨誘導(dǎo)的第3、7、14 天ALP 的活性 nmol/15 min/mg,±s
表3 成骨誘導(dǎo)的第3、7、14 天ALP 的活性 nmol/15 min/mg,±s
注:與(±)Bay K8644 組比較,*P <0.05
?
圖5 在成骨誘導(dǎo)第14 天時(shí)對細(xì)胞進(jìn)行堿性磷酸酶染色結(jié)果
圖6 在成骨誘導(dǎo)的第21 天進(jìn)行茜素紅染色結(jié)果
人體骨的形成及代謝的重要機(jī)制之一即為骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向成骨細(xì)胞分化的過程[8]。在人體的衰老過程中,骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞也隨之衰老,而這一衰老的進(jìn)程直接導(dǎo)致了其向成骨細(xì)胞分化的能力的下降,人體的骨代謝平衡被打破,骨量下降,從而導(dǎo)致骨質(zhì)疏松等骨代謝疾病的發(fā)生和發(fā)展[4,5]。
(±)Bay K8644 是一種鈣離子通道的激動(dòng)劑,由于其能夠特異性地激活L 型鈣離子通道[6],因此在心律失常、心絞痛以及高血壓等疾病的研究中有較多的應(yīng)用。而鈣離子對于人體具有極為廣泛的作用[9],鈣離子的活動(dòng)和骨折等骨疾病,以及老年病有著緊密的關(guān)系[10]。我們由此對(±)Bay K8644 與衰老干細(xì)胞之間的關(guān)系進(jìn)行了相關(guān)的探索研究,并證實(shí)了(±)Bay K8644 對衰老的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化的潛能有著一定的提升作用。
Nanog 是維持骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞多能性的重要核外轉(zhuǎn)錄因子[11,12]。而在衰老的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞中,Nanog 表達(dá)下降,因此其定向分化的能力也隨之減弱[11]。在本研究中,我們發(fā)現(xiàn)10 μmol/L 濃度的(±)Bay K8644 能夠在mRNA 水平明顯提升Nanog 的表達(dá),和對照組相比,實(shí)驗(yàn)組的Nanog 表達(dá)提升了2 倍以上,證實(shí)了(±)Bay K8644 對于維持骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的干性(stemness)具有一定的作用。
骨鈣素(Osteocalcin,OCN)是由成骨細(xì)胞(Osteoblasts)所特異性分泌的一種蛋白,骨鈣蛋白在骨礦化時(shí)大量合成,因此被認(rèn)為是成骨分化誘導(dǎo)的標(biāo)記之一[13,14]。在對衰老的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨分化誘導(dǎo)過程中,RT-PCR 和western Blot 的結(jié)果顯示(±)Bay K8644 能夠明顯的促進(jìn)衰老骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞內(nèi)OCN 的表達(dá)。
綜上所述,通過我們的研究發(fā)現(xiàn),(±)Bay K8644能夠使衰老的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的衰老狀態(tài)得到一定的改善,同時(shí)其成骨分化的潛能得到一定的提升。
1 Armas LA,Recker RR.Pathophysiology of osteoporosis:new mechanistic insights. Endocrinology and metabolism clinics of North America,2012,41:475-486.
2 Ding DC,Shyu WC,Lin SZ.Mesenchymal stem cells.Cell transplantation,2011,20:5-14.
3 Bergfeld SA,DeClerck YA. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells and the tumor microenvironment.CANCER METAST REV June 2010,29,:249-261.
4 Shuanhu Zhou,Joel S.Greenberger;Age-related intrinsic changes in human bone-marrow-derived mesenchymal stem cells and their differentiation to osteoblasts.Aging Cell,2008,7:335-343.
5 Mazziotti G,Bilezikian J,Canalis E,et al. New understanding and treatments for osteoporosis.Endocrine,2012,41:58-69.
6 Hu H,Li S,Wang P,et al. An L-type calcium channel agonist,bay K8644,extends the window of intervention against ischemic neuronal injury.Molecular neurobiology,2013,47:280-289.
7 Leistad E,Aksnes G,Verburg E,et al.Atrial contractile dysfunction after short-term atrial fibrillation is reduced by verapamil but increased by BAY K8644.Circulation,1996,93:1747-1754.
8 劉忠厚,潘子昂,王石麟,等.骨骼生長衰老規(guī)律和原發(fā)性骨質(zhì)疏松癥預(yù)診的研究.中國骨質(zhì)疏松雜志,1995,1:1-7.
9 常晶,陸菡,于布為.全麻機(jī)制研究——細(xì)胞內(nèi)鈣離子信號(hào)通路研究進(jìn)展.中國藥理學(xué)通報(bào),2013,29:11-14.
10 US Department of Health and Human Services. Bone health and osteoporosis:a report of the Surgeon General.2004.
11 Wang Z,Oron E,Nelson B,et al. Distinct lineage specification roles for NANOG,OCT4,and SOX2 in human embryonic stem cells. Cell stem cell,2012,10:440-454.
12 Loh Y H,Wu Q,Chew J L,et al. The Oct4 and Nanog transcription network regulates pluripotency in mouse embryonic stem cells.Nature genetics,2006,38:431-440.
13 Hauschka P V,Lian J B,Cole D E,et al.Osteocalcin and matrix Gla protein:vitamin K-dependent proteins in bone.Physiological Reviews,1989,69:990-1047.
14 賈媛,周鵬,張艷軍.骨鈣素及其功能研究.長春中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2012,28:899-900.