王振河,許丹焰,李衛(wèi)華,謝 強,黃崢嶸,姜德謙△
1.廈門大學附屬第一醫(yī)院心內(nèi)科,福建廈門361003;2.中南大學湘雅二醫(yī)院心內(nèi)科,長沙410011;
3.廈門市心血管病研究所,福建廈門361003)
環(huán)氧二十碳三烯酸(epoxyeicosatrienoic acids,EETs)是具有強大生物活性的內(nèi)生脂質(zhì)環(huán)氧化合物,具有舒張血管、抗炎等作用[1-3]。EETs在細胞內(nèi)由可溶性環(huán)氧化物水解酶(soluble epoxide hydrolase,sEH)迅速降解[4],使其作用明顯受限。因此,使用sEH抑制劑,抑制EETs在體內(nèi)降解可有效增加EETs在細胞內(nèi)濃度及效用。內(nèi)皮祖細胞(endothelial progenitor cells,EPCs)在干細胞移植修復心肌梗死中扮演重要角色,研究表明EETs可通過多種機制激活EPCs[5-7]。EPCs從外周向心肌組織歸巢為EPCs修復心肌梗死重要途徑[8-10],因此,增強EPCs歸巢功能可能有效增強EPCs對梗死心肌的修復。本研究觀察不同濃度sEH抑制劑對EPCs歸巢功能的影響,以便為其在促進EPCs修復心肌梗死的研究奠定基礎(chǔ)。
1.1 材料 本實驗選用6周齡清潔級雄性云南昆明小鼠(中南大學湘雅二醫(yī)院實驗動物中心提供)作為EPCs的來源;CD34、CD133、CD31、Flk-1、Dil-acLDL、FITC-UEA-1購自美國Molecular probes公司;小動物呼吸機購自美國哈佛大學;胃蛋白酶、檸檬酸抗原修復緩沖液、DAB顯色劑購自美國Vector公司。
1.2.1 實驗分組 依據(jù)可溶性環(huán)氧化物水解酶抑制劑(t-AUCB)不同濃度干預組分為6組,分別為0μmol/L t-AUCB、1μmol/L t-AUCB、10μmol/L t-AUCB、50μmol/L t-AUCB、100μmol/L t-AUCB干預組。
1.2.2 EPCs的分離、培養(yǎng) 小鼠脛骨及股骨骨髓通過密度梯度離心法分離單個核細胞,按5×105/cm密度放置預先包被fibronectin的細胞培養(yǎng)皿中,加入EBM-2培養(yǎng)基培養(yǎng),培養(yǎng)基預先加入5%FBS和生長因子,4d后去除懸浮細胞,隔天半量更換培養(yǎng)基,倒置相差顯微鏡下觀察不同時間點細胞形態(tài)。
1.2.3 EPCs的鑒定 雙染色(Dil-acLDL,F(xiàn)ITC-UEA-1):細胞培養(yǎng)7d后,依序往培養(yǎng)瓶內(nèi)加入Dil-acLDL及FITCUEA-1(10mg/L),觀察上述培養(yǎng)細胞攝取 Dil-acLDL及結(jié)合FITC-UEA-1能力,同時結(jié)合 Dil-ac-LDL、FITC-UEA-1細胞為EPCs;EPCs表面抗原鑒定:培養(yǎng)7d的細胞洗滌、離心后應(yīng)用流式細胞儀檢測 CD34、CD133、CD31、Flk-1表面標志表達。
1.2.4 t-AUCB體外對EPCs歸巢功能的影響 EPCs培養(yǎng)7 d后,上述不同濃度t-AUCB(0、1、10、50、100μmol/L)預干預24h,加入Dil-acLDL至上述細胞懸液,濃度為2μg/mL,避光孵育1h,顯微鏡下觀察Dil-acLDL吸收情況;開胸呼吸機輔助下結(jié)扎冠脈左前降支,1h后經(jīng)尾靜脈注射上述干預的EPCs,24h后處死小鼠,按不同區(qū)域分為梗死區(qū)、邊緣區(qū)、正常區(qū),邊緣區(qū)為距離梗死區(qū)5mm,將上述各區(qū)域心臟剪成小粒,消化離心,熒光顯微鏡下記數(shù)不同區(qū)域心肌消化后Dil標記陽性細胞數(shù)。
1.3 統(tǒng)計學處理 采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析,計量資料用x±s表示,并進行正態(tài)性和方差齊性檢驗,組間均數(shù)顯著性檢驗用多個樣本均數(shù)比較的方差分析(LSD-t檢驗),以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 小鼠EPCs的生長情況 剛接種時骨髓來源分離的單個核細胞呈圓形,散在懸浮于培養(yǎng)液內(nèi),24~48h后,部分細胞開始貼壁;4d后首次換液,去除培養(yǎng)瓶內(nèi)未貼壁懸浮細胞,倒置相差顯微鏡下觀察貼壁細胞生長狀況(圖1),細胞呈菊花狀集落,中央為圓形細胞,周圍為梭形細胞(圖1A);7d后,細胞集落明顯擴大,集落中央圓形細胞逐漸向梭形細胞轉(zhuǎn)化(圖1B);第8天可見細胞形成條索狀(圖1C);第10天細胞可達80%~90%融合,以多角形、類圓形及梭形細胞為主(圖1D)。
2.2 熒光雙染色結(jié)果 熒光顯微鏡下觀察小鼠骨髓來源EPCs攝 取 Dil-acLDL、結(jié) 合 FITC-UEA-1 能 力,攝 取 DilacLDL陽性細胞呈紅色熒光,結(jié)合UEA-1陽性細胞呈綠色熒光,雙陽性細胞呈黃色熒光,結(jié)果示95%以上培養(yǎng)的細胞呈雙陽性黃色熒光:雙陽性細胞為EPCs(圖2)。
2.3 表面分化抗原流式細胞儀鑒定結(jié)果 流式細胞儀檢測結(jié)果示:相較于同型分化抗原,小鼠骨髓來源EPCs各表面分化抗原 含 量 CD34 為 (53.89±0.34)%,CD133 為 (52.79±0.67)%,CD31 為 (36.67±0.93)%,F(xiàn)lk-1 為 (43.88±0.48)%,見圖3。
圖1 內(nèi)皮祖細胞培養(yǎng)結(jié)果(×200)
圖2 EPCs攝取Dil-acLDL及FITC-UEA-1熒光染色結(jié)果(×200)
圖3 小鼠骨髓來源EPCs表面分化抗原流式細胞儀分析結(jié)果
2.4.1 心肌梗死模型制作 稱重小鼠,戊巴比妥那50mg/kg腹腔注射麻醉,連接各心電圖電極,正常心電圖示S-T段在基線水平位置(圖4A),小鼠氣管插管后連接呼吸機,打開胸腔,剪開心包,暴露左心耳(圖4C)結(jié)扎冠狀動脈中1/3,結(jié)扎后可見心電圖呈ST段弓背向上抬高(圖4B),結(jié)扎遠端心肌活動度減弱(圖4D),心肌蒼白后紫紺(圖4E),表明模型制作成功(圖4)。
圖4 正常、梗死心電圖形態(tài)及心梗模型制作過程中心肌演變過程
2.4.2 不同濃度t-AUCB對EPCs歸巢至梗死心肌不同部位的影響 從0~100μmol/L t-AUCB干預組,隨著濃度增加,t-AUCB可明顯呈濃度依賴性增強EPCs歸巢至梗死心肌邊緣區(qū)、正常區(qū)及梗死區(qū)能力,與0μmol/L t-AUCB相比,1、10、50、100μmol/L t-AUCB可顯著增強EPCs歸巢至上述區(qū)域能力(P<0.05),見表1。
表1 不同濃度t-AUCB干預對EPCs歸巢至心肌不同部位的影響(x±s)
EPCs從外周向心肌組織歸巢為EPCs修復心肌梗死重要途徑。觀察t-AUCB干預對EPCs歸巢的影響可發(fā)現(xiàn):在梗死心肌邊緣區(qū),增加t-AUCB濃度,邊緣區(qū)的EPCs明顯增多,達數(shù)百個,并且呈濃度依賴性,提示t-AUCB促進EPCs歸巢至梗死心肌邊緣區(qū);從0μmol/L至100μmol/L,t-AUCB可呈濃度依賴性增強EPCs向心梗邊緣區(qū)歸巢;在正常心肌區(qū)域,隨著t-AUCB干預濃度變大,正常心肌組織的EPCs細胞數(shù)雖有增多(組間P<0.05),但各組差異不大,只有數(shù)個細胞,且歸巢至正常心肌細胞的細胞基數(shù)都不大,50個左右,提示在正常心肌,t-AUCB雖有作用,但明顯減弱;計數(shù)梗死心肌細胞時作者發(fā)現(xiàn):隨著干預濃度逐漸增加,不同濃度t-AUCB干預的EPCs歸巢至梗死心肌細胞數(shù)明顯增加,各組之間比較差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),但歸巢的細胞數(shù)均少,最多只有30個左右。
分析原因:(1)t-AUCB對外周培養(yǎng)的EPCs激活對歸巢具有刺激作用;(2)心肌方面,完整的心肌組織需要有完整的血管內(nèi)皮,開通的血管及活動的血流,以利于EPCs向心肌組織歸巢,此為EPCs順利歸巢的前提條件及重要影響因素。在梗死區(qū),由于結(jié)扎冠脈中斷血流,EPCs經(jīng)靜脈進入小鼠后不能隨血流運行至梗死區(qū);EPCs雖有遷移能力[11-13],但心肌梗死后細胞腫脹、壞死,處于缺血缺氧環(huán)境,亦為EPCs向梗死心肌遷移提供障礙,心肌梗死后雖然有促進刺激EPCs歸巢的細胞因子分泌[14-15],但抑制EPCs歸巢至梗死區(qū)的因素遠遠大于其促進因素,所以,經(jīng)外周靜脈注射的EPCs歸巢至梗死區(qū)域的細胞數(shù)少,而大量聚集在梗死心肌邊緣區(qū)域;在正常區(qū)域,雖然供應(yīng)心肌組織的血流沒有中斷,但缺少促進EPCs歸巢的細胞因子,所以,歸巢的細胞數(shù)介于上述兩區(qū)域之間。
綜上所述,從0~100μmol/L,隨著濃度增加,可溶性環(huán)氧化物水解酶抑制劑t-AUCB進行性增強其正向調(diào)控EPCs歸巢功能。心肌梗死后歸巢至正常區(qū)域及梗死區(qū)域內(nèi)EPCs較少,正常區(qū)雖有差異,但差異較小,經(jīng)t-AUCB干預的EPCs主要歸巢至梗死心肌邊緣區(qū)域。所以,在后繼檢測t-AUCB干預EPCs對梗死心肌的影響研究時,研究對象只選取最有代表性的邊緣區(qū),可明顯增加實驗的特異性及準確性。
[1] Feng W,Xu X,Zhao G,et al.EETs and CYP2J2inhibit TNF-α-induced apoptosis in pulmonary artery endothelial cells and TGF-β1-induced migration in pulmonary artery smooth muscle cells[J].Int J Mol Med,2013,32(3):685-693.
[2]Jiang JX,Zhang SJ,Liu YN,et al.EETs alleviate ox-LDL-induced inflammation by inhibiting LOX-1receptor expression in rat pulmonary arterial endothelial cells[J].Eur J Pharmacol,2014,727:43-51.
[3] Xu DY,Davis BB,Wang ZH,et al.A potent soluble epoxide hydrolase inhibitor,t-AUCB,acts through PPARγto modulate the function of endothelial progenitor cells from patients with acute myocardial infarction[J].Int J Cardiol,2013,167(4):1298-1304.
[4] Shao J,Li Q,Wang H,et al.P-450-dependent epoxygenase pathway of arachidonic acid is involved in myeloma-induced angiogenesis of endothelial cells[J].J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci,2011,31(5):596-601.
[5] Li L,Li N,Pang W,et al.Opposite effects of gene deficiency and pharmacological inhibition of soluble epoxide hydrolase on cardiac fibrosis[J].PLoS One,2014,9(4):e94092.
[6] Shen L,Peng H,Zhao S,et al.A potent soluble epoxide hydrolase inhibitor,t-AUCB,modulates cholesterol balance and oxidized low density lipoprotein metabolism in adipocytes in vitro[J].Biol Chem,2014,395(4):443-451.
[7] Borghini A,Sbrana S,Vecoli C,et al.Stromal cell-derived factor-1-3′A polymorphism is associated with decreased risk of myocardial infarction and early endothelial disturbance[J].J Cardiovasc Med(Hagerstown),2014,15(9):710-716.
[8] Wan C,Li J,Yang C,et al.Dynamics of endogenous endothelial progenitor cells homing modulated by physiological ischaemia training[J].J Rehabil Med,2015,47(1):87-93.
[9] Bertelsen LB,Hagensen M,Busk M,et al.In vivo bio-distribution and homing of endothelial outgrowth cells in a tumour model[J].Nucl Med Biol,2014,41(10):848-855.
[10]Liberda EN,Cuevas AK,Qu Q,et al.The acute exposure effects of inhaled Nickel nanoparticles on murine endothelial progenitor cells[J].Inhal Toxicol,2014,26(10):588-597.
[11]Huang L,Wang F,Wang Y,et al.Acidic fibroblast growth factor promotes endothelial progenitor cells function via Akt/FOXO3apathway[J].PLoS One,2015,10(6):e0129665.
[12]Li W,Du D,Wang H,et al.Silent information regulator 1(SIRT1)promotes the migration and proliferation of endothelial progenitor cells through the PI3K/Akt/eNOS signaling pathway[J].Int J Clin Exp Pathol,2015,8(3):2274-2287.
[13]Liu LH,Lai Y,Linghu LJ,et al.Effect of different concentrations of medroxy-progesterone acetate combined with 17β-estradiol on endothelial progenitor cells[J].Eur Rev Med Pharmacol Sci,2015,19(10):1790-1795.
[14]Kwon YW,Heo SC,Jeong GO,et al.Tumor necrosis factor-α-activated mesenchymal stem cells promote endothelial progenitor cell homing and angiogenesis[J].Biochim Biophys Acta,2013,1832(12):2136-2144.
[15]Shih CM,Chen YH,Lin YW,et al.MK-0626,a dipeptidyl peptidase-4inhibitor,improves neovascularization by increasing both the number of circulating endothelial progenitor cells and endothelial nitric oxide synthetase expression[J].Curr Med Chem,2014,21(17):2012-2022.