硫氧還蛋白與肝纖維化相關(guān)研究進(jìn)展
鄭灃周小爽白潔
(昆明理工大學(xué)醫(yī)學(xué)院,云南`昆明650500)
關(guān)鍵詞〔〕肝纖維化;氧化應(yīng)激,肝星狀細(xì)胞;硫氧還蛋白
中圖分類號(hào)〔〕R36〔文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼〕A〔
基金項(xiàng)目:國(guó)家科技重大專項(xiàng)重大新藥創(chuàng)制(No.2014ZX09301307);云南省高校醫(yī)學(xué)神經(jīng)生物學(xué)創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)
通訊作者:白潔(1966-),女,博士,教授,博士生導(dǎo)師,主要從事硫氧還蛋白生物活性和神經(jīng)退行性疾病的研究。
doi24Matsuo Y,YoJ.Extracellular thioredoxin:a therapeutic tool to combat inflammation〔J〕.Cytokine Growth Factor Rev,2013;24(4):345-53.
第一作者:鄭灃(1988-),男,在讀碩士,主要從事肝纖維化研究。
肝纖維化是由各種原因引起慢性肝損傷的病理變化。它的特點(diǎn)是肝臟中細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)的過(guò)度積累,影響肝臟功能。肝纖維化的病因十分復(fù)雜,多種類型的慢性肝病均可以發(fā)展為肝纖維化。有關(guān)肝纖維化發(fā)病機(jī)制的研究主要集中在肝臟的炎癥反應(yīng),氧化應(yīng)激,肝細(xì)胞的生長(zhǎng)和凋亡,以及肝星狀細(xì)胞(HSC)的激活方面。硫氧還蛋白(Trx)是一種廣泛存在于原核生物和真核生物體內(nèi)的具有多種生物學(xué)功能的小分子量蛋白質(zhì),它和Trx還原酶及NADPH組成硫氧還蛋白系統(tǒng),具有抗氧化、促細(xì)胞生長(zhǎng)、抗細(xì)胞凋亡和調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子的活性作用。本文綜述了Trx在肝纖維化的發(fā)生和發(fā)展中的相關(guān)研究。
1肝纖維化
肝臟是人體內(nèi)最大的器官,在新陳代謝方面發(fā)揮著至關(guān)重要的作用?,F(xiàn)代社會(huì)中,過(guò)度飲酒、慢性肝炎、長(zhǎng)期服藥等都會(huì)給肝臟帶來(lái)一定的負(fù)擔(dān),引起肝損傷。肝臟內(nèi)基質(zhì)蛋白的堆積與長(zhǎng)期肝損傷有著密切的聯(lián)系,也是肝纖維化發(fā)生和發(fā)展的主要原因〔1〕。
1.1肝纖維化與氧化應(yīng)激肝纖維化與氧化應(yīng)激有著密不可分的聯(lián)系。肝星狀細(xì)胞(HSC)作為肝纖維化的靶細(xì)胞,它的激活可導(dǎo)致肝纖維化的產(chǎn)生,而氧化應(yīng)激壓力的增加可直接導(dǎo)致HSC由休眠狀態(tài)(維生素A貯藏細(xì)胞)轉(zhuǎn)化為激活狀態(tài)(肌成纖維細(xì)胞)〔2〕。研究表明,在砒霜誘導(dǎo)的小鼠短期肝損傷模型中,肝組織里反映氧化應(yīng)激壓力的嗜中性細(xì)胞中彈性蛋白酶化合物明顯增多,肝組織中還原型煙酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸(NADPH)氧化酶的含量遞增,肝組織中活性氧(ROS)的含量也相應(yīng)增加〔3〕。在用酒精和四氯化碳同時(shí)作用誘導(dǎo)的肝損傷和肝纖維化動(dòng)物模型中,其肝組織中超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽(GSH)的水平相比正常大鼠顯著降低,而丙二醛(MDA)的水平顯著上升〔4〕。由此可見(jiàn),氧化應(yīng)激的增加與肝纖維化有著密切的聯(lián)系。
1.2肝纖維化與細(xì)胞周期HSC是肝纖維化的靶細(xì)胞,一些外在的或者內(nèi)在的因素例如長(zhǎng)期飲酒、慢性乙肝病毒感染等都會(huì)導(dǎo)致肝臟氧化應(yīng)激增加,引起HSC由正常的休眠狀態(tài)轉(zhuǎn)化為激活狀態(tài)?;罨腍SC一方面會(huì)分泌Ⅰ型膠原,引起肝組織中細(xì)胞外基質(zhì)的過(guò)度堆積;另一方面使基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)及其特異性基質(zhì)金屬蛋白酶抑制劑(TIMPs)的分泌平衡發(fā)生紊亂,其結(jié)果是細(xì)胞外基質(zhì)不能及時(shí)分解,最終導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)的過(guò)度堆積,加劇肝纖維化。同時(shí),隨著活化的HSC增生,細(xì)胞周期縮短并向肝損傷部位遷徙,增加Ⅰ型膠原和Ⅲ型膠原以及基質(zhì)金屬蛋白酶抑制劑1(TIMP-1)的分泌,加重肝纖維化。因此,調(diào)節(jié)活化的HSC周期可以改善肝纖維化。
1.3肝纖維化與細(xì)胞凋亡肝纖維化與肝細(xì)胞的凋亡密切相關(guān),肝細(xì)胞的凋亡程度是反映肝損傷的一個(gè)生物標(biāo)志。在砒霜誘導(dǎo)小鼠肝纖維化的動(dòng)物模型中,通過(guò)流式細(xì)胞術(shù)發(fā)現(xiàn)肝細(xì)胞出現(xiàn)了一定程度的凋亡。在四氯化碳誘導(dǎo)小鼠肝纖維化的過(guò)程中,經(jīng)蘇木素-伊紅(HE)染色發(fā)現(xiàn)肝細(xì)胞出現(xiàn)不同程度的凋亡,肝內(nèi)形成空泡,粘膠纖維增生〔5〕。在膽道結(jié)扎(BDL)的小鼠肝纖維化模型中也發(fā)現(xiàn)肝細(xì)胞出現(xiàn)明顯凋亡,肝門靜脈纖維增生〔6〕。因此,抑制肝細(xì)胞的凋亡,也能在一定程度上延緩肝纖維化的進(jìn)程。
1.4肝纖維化與炎癥反應(yīng)肝纖維化與機(jī)體炎癥反應(yīng)密切相關(guān),感染肝炎病毒可導(dǎo)致肝纖維化。研究發(fā)現(xiàn),在長(zhǎng)期經(jīng)受乙肝病毒感染的人群中,肝臟內(nèi)巨噬細(xì)胞的浸潤(rùn)增加并且伴隨著M-2樣的巨噬細(xì)胞活化程度的增加,這些巨噬細(xì)胞的活化和增生能夠加速肝臟的纖維化進(jìn)程〔7〕。最近的研究表明,休眠狀態(tài)的HSC能夠通過(guò)Toll-like受體3(TLR3)來(lái)調(diào)節(jié)肝臟的先天性免疫應(yīng)答并且能夠誘導(dǎo)γ干擾素(IFNγ)以及一些細(xì)胞因子和炎癥趨化因子的轉(zhuǎn)錄和分泌,而休眠狀態(tài)下的HSC一旦活化就迅速失去了分泌γ干擾素的功能〔8〕。另外,庫(kù)普弗細(xì)胞(Kupffer Cell)是一種位于肝竇內(nèi)表面的吞噬細(xì)胞,能夠清除血液中的外來(lái)抗原、抗原抗體復(fù)合物和細(xì)胞碎片等物質(zhì),它是全身單核-吞噬細(xì)胞系統(tǒng)的重要組成部分,也是肝臟防御系統(tǒng)的主要成員,在全身和肝臟疾病發(fā)生發(fā)展中起到重要作用。在索拉菲尼抵抗肝纖維的進(jìn)程中,誘導(dǎo)庫(kù)普弗細(xì)胞分泌白介素(IL)-6,上調(diào)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)蛋白和轉(zhuǎn)錄激活物3(STAT3)的磷酸化,從而抵抗肝纖維化的發(fā)生〔9〕。由此可見(jiàn),肝纖維化與炎癥反應(yīng)也有著密切關(guān)系。
2硫氧還蛋白(Trx)
Trx廣泛存在于原核生物和真核生物中〔10〕,分子量12 kD。Trx是重要的氧化還原調(diào)節(jié)蛋白,其活性位點(diǎn)為-Cys-Gly-Pro-Cys-。Trx還原作用的機(jī)制在于其與底物X-s2結(jié)合后可還原蛋白底物。因此,當(dāng)活性中心的兩個(gè)半胱氨酸突變成Ser(C32S/C35S)時(shí)其還原活性喪失。Trx還具有抗氧化、促生長(zhǎng)、抗凋亡和調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子等等特性〔11〕。
2.1Trx與氧化應(yīng)激生物體在應(yīng)答多種外界刺激例如紫外線、X射線、炎癥因子以及化學(xué)藥品過(guò)程中也會(huì)產(chǎn)生活性氧和自由基,而過(guò)多的活性氧和自由基會(huì)打破生物體內(nèi)的氧化還原平衡,這會(huì)引發(fā)生物體內(nèi)多種生物機(jī)能障礙和疾病〔12〕,有研究表明,Trx可以調(diào)節(jié)肝纖維化中的氧化應(yīng)激反應(yīng),從而阻止肝臟纖維化途徑〔13〕。在酒精誘導(dǎo)的肝脂肪變性模型中,Trx的表達(dá)下降,這與酒精脂肪肝的發(fā)展有關(guān)也與Trx的氧化還原作用有關(guān)〔14〕。另外,Trx也憑借其抗氧化應(yīng)激的特性,在治療非酒精性脂肪性肝炎(NASH)方面發(fā)揮著至關(guān)重要的作用〔15〕。在趨化治療所誘導(dǎo)的肝纖維化過(guò)程中轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子(TGF)-β增加,而Trx可抑制TGF-β的表達(dá)〔16〕。在維生素E和C治療非酒精性脂肪肝的研究中發(fā)現(xiàn),Trx的表達(dá)增加可以抑制肝纖維化〔17〕。因此,Trx能通過(guò)抵抗氧化應(yīng)激來(lái)緩解肝的纖維化進(jìn)程。
2.2Trx與細(xì)胞周期Trx系統(tǒng)能夠調(diào)控細(xì)胞G1/S期,Trx成為癌癥治療的一個(gè)重要的靶點(diǎn)〔18〕,這不僅與其抗凋亡作用有關(guān),也與細(xì)胞的增殖有密切的關(guān)系。Trx能調(diào)控細(xì)胞周期的G0、S以及G2/M期。Trx可以通過(guò)氧化還原性其調(diào)節(jié)與細(xì)胞周期進(jìn)程相關(guān)的蛋白活性。研究發(fā)現(xiàn),在用硫代乙酰胺誘導(dǎo)小鼠肝纖維化模型過(guò)程中,Trx高表達(dá)的轉(zhuǎn)基因小鼠中HSC的活化與增殖程度顯著性低于野生型的小鼠,在野生型肝纖維化小鼠提取的活化的HSC中轉(zhuǎn)染人的Trx重組質(zhì)粒后也發(fā)現(xiàn)其活化增殖程度也出現(xiàn)了明顯的降低〔19〕。因此Trx的這些調(diào)節(jié)作用可能會(huì)對(duì)活化的HSC增殖具有一定的抑制作用。此外,Trx與血小板源性生長(zhǎng)因(PDGF)誘導(dǎo)的HSC激活過(guò)程密切相關(guān)〔20〕。
2.3Trx與細(xì)胞凋亡Trx是核苷酸還原酶的氧供體。同時(shí),Trx通過(guò)抑制凋亡信號(hào)起到調(diào)節(jié)激酶(ASK)-1的作用。最近的研究表明,一種黃酮類化合物L(fēng)W-214能夠通過(guò)下調(diào)MCF-7細(xì)胞中Trx的表達(dá)來(lái)誘發(fā)MCF-7細(xì)胞發(fā)生線粒體途徑的細(xì)胞凋亡〔21〕。β-藤黃素可以通過(guò)靶向降低SMMC-7721細(xì)胞的細(xì)胞質(zhì)中Trx的表達(dá)來(lái)誘導(dǎo)SMMC-7721細(xì)胞發(fā)生凋亡〔22〕。同樣在硫代乙酰胺誘導(dǎo)的小鼠肝纖維模型中,Trx高表達(dá)的基因鼠肝組織中細(xì)胞的凋亡程度以及肝縫隙的形成要明顯低于野生型的小鼠。另外,在使用半乳糖胺和脂多糖誘導(dǎo)小鼠急性肝損傷后,發(fā)現(xiàn)小鼠肝臟組織發(fā)生明顯凋亡和出血性壞死,硫氧還蛋白結(jié)合蛋白(TXNIP)表達(dá)增加,而在氯化血紅素(Hemin)作用后,其肝損傷程度能得到緩解,同時(shí)TXNIP 降低〔23〕。在Trx誘導(dǎo)物治療肝損傷中,Trx也可以通過(guò)抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)凋亡途徑,從而保護(hù)肝臟免于藥物損傷。由此可見(jiàn),在肝纖維化過(guò)程中,對(duì)于肝細(xì)胞的凋亡,Trx也具有潛在的抵抗作用。
2.4Trx與炎癥反應(yīng)最近,Trx的趨化性已經(jīng)越來(lái)越多地引起人們的注意,有研究表明,不論是在體內(nèi)還是在體外,Trx對(duì)單核細(xì)胞、多形核白細(xì)胞以及T淋巴細(xì)胞都有趨化性〔24〕。Trx的這種趨化性與諸多炎癥因子類似,如巨噬細(xì)胞加帽蛋白(MCP-1)、白細(xì)胞介素8(IL-8)等,需要引起注意的是,這些炎癥趨化因子在它們保守的活性位點(diǎn)都有兩個(gè)半胱氨酸殘基-CC-,-CXC-,或者-CX3C-〔25〕。最近的研究發(fā)現(xiàn),在慢性丙型肝炎患者中,其肝臟內(nèi)的IL-8明顯上調(diào),這與丙型肝炎所致的肝纖維化密切相關(guān)〔26〕。在硫代乙酰胺誘導(dǎo)的大鼠肝硬化動(dòng)物模型中發(fā)現(xiàn),巨噬細(xì)胞的遷移與肝纖維化的發(fā)生和發(fā)展有相關(guān)性〔27〕。Trx與肝硬化過(guò)程中的炎癥反應(yīng)密切相關(guān),Trx通過(guò)調(diào)節(jié)氧化還原平衡,可抑制TNF-α信號(hào)途徑,改善肝纖維化〔28〕。Trx對(duì)炎癥反應(yīng)的調(diào)節(jié)作用是毋庸置疑的,尤其是對(duì)白介素以及各種細(xì)胞因子和炎癥趨化因子的調(diào)節(jié)作用,很可能成為肝纖維化的預(yù)防和治療的潛在突破點(diǎn)。
3總結(jié)
綜上所述,肝纖維化的發(fā)生和發(fā)展是一個(gè)相對(duì)復(fù)雜的進(jìn)程,它與肝臟內(nèi)氧化應(yīng)激、炎癥反應(yīng),肝細(xì)胞的凋亡和增殖,HSC的活化都有著密切的聯(lián)系,而Trx作為一種在生物體內(nèi)廣泛存在的氧化還原調(diào)節(jié)蛋白,具有抵抗氧化應(yīng)激、調(diào)節(jié)細(xì)胞周期、調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)錄因子活性、抵抗細(xì)胞凋亡和調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)的作用,在肝纖維化的發(fā)生和發(fā)展過(guò)程中起著重要的調(diào)節(jié)作用,可以作為預(yù)防和治療肝纖維化的一個(gè)重要靶點(diǎn),為肝纖維化的預(yù)防和治療提供新思路。
4參考文獻(xiàn)
1Wallace K,Burt AD,Wright MC.Liver fibrosis〔J〕.Biochem J,2008;411(1):1-18.
2Tomita K,Teratani T,Suzuki T,etal.Free cholesterol accumulation in hepatic stellate cells:mechanism of liver fibrosis aggravation in nonalcoholic steatohepatitis in mice〔J〕.Hepatology,2014;59(1):154-69.
3Ghatak S,Biswas A,Dhali GK,etal.Oxidative stress and hepatic stellate cell activation are key events in arsenic induced liver fibrosis in mice〔J〕.Toxicol Applied Pharmacol,2011;251(1):59-69.
4Su X,Wang Y,Zhou G,etal.Probucol attenuates ethanol-induced liver fibrosis in rats by inhibiting oxidative stress,extracellular matrix protein accumulation and cytokine production〔J〕.Clin Exp Pharmacol Physiol,2014;41(1):73-80.
5Li J,Pan Y,Kan M,etal.Hepatoprotective effects of berberine on liver fibrosis via activation of AMP-activated protein kinase〔J〕.Life Sci,2014;98(1):24-30.
6Sato M,F(xiàn)landers K,Matsubara T,etal.Smad3 deficiency counteracts hepatocyte apoptosis and portal fibrogenesis induced by bile duct ligation〔J〕.J Liver,2014;3(145):2167-74.
7Bility MT,Cheng L,Zhang Z,etal.Hepatitis B virus infection and immunopathogenesis in a humanized mouse model:induction of human-specific liver fibrosis and m2-like macrophages〔J〕.PLoS Pathog,2014;10(3):e1004032.
8Wilson CL,Mann J,Walsh M,etal.Quiescent hepatic stellate cells functionally contribute to the hepatic innate immune response via TLR3〔J〕.PLoS One,2014;9(1):e83391.
9Deng YR,Ma HD,Tsuneyama K,etal.STAT3-mediated attenuation of CCl4-induced mouse liver fibrosis by the protein kinase inhibitor sorafenib〔J〕.J Autoimmun,2013;46:25-34.
10Nakamura H.Thioredoxin and its related molecules:update 2005〔J〕.Antioxidants Redox Sig,2005;7(5-6):823-8.
11Hu J,Yang Z,Wang J,etal.Infusion of Trx-1-overexpressing hucMSC prolongs the survival of acutely irradiated NOD/SCID mice by decreasing excessive inflammatory injury〔J〕.PLoS One,2013;8(11):e78227.
12Xiong B,Xu R,Zhou R,etal.Preventing UV induced cell damage by scavenging reactive oxygen species with enzyme-mimic Au-Pt nanocomposites〔J〕.Talanta,2014;120:262-7.
13Flohe L.The fairytale of the GSSG/GSH redox potential〔J〕.Biochim Biophys Acta,2013;1830(5):3139-42.
14Sengupta R,Holmgren A.Thioredoxin and thioredoxin reductase in relation to reversible S-nitrosylation〔J〕.Antioxidants Redox Signaling,2013;18(3):259-69.
15Shearn C,Smathers R,Backos D,etal.Increased carbonylation of the lipid phosphatase PTEN contributes to Akt2 activation in a murine model of early alcohol-induced steatosis〔J〕.Free Radi Biol Med,2013;65:680-92.
16Ucar F,Sezer S,Erdogan S,etal.The relationship between oxidative stress and nonalcoholic fatty liver disease:its effects on the development of nonalcoholic steatohepatitis〔J〕.Redox Rep,2013;18(4):127-33.
17Kawanaka M,Nishino K,Nakamura J,etal.Treatment of nonalcoholic steatohepatitis with vitamins E and C:a pilot study〔J〕.Hepat Med,2013;5:11-6.
18Penney RB,Roy D.Thioredoxin-mediated redox regulation of resistance to endocrine therapy in breast cancer〔J〕.Biochim Biophys Acta,2013;1836(1):60-79.
19Okuyama H,Nakamura H,Shimahara Y,etal.Overexpression of thioredoxin prevents thioacetamide-induced hepatic fibrosis in mice〔J〕.J Hepatol,2005;42(1):117-23.
20Tsai MK,Lin YL,Huang YT.Differential Inhibitory effects of salvianolic acids on activation of rat hepatic stellate cells by platelet-derived growth factor〔J〕.Planta Med,2011;77(13):1495-503.
21Pan D,Li W,Miao H,etal.LW-214,a newly synthesized flavonoid,induces intrinsic apoptosis pathway by down-regulating Trx-1 in MCF-7 human breast cells〔J〕.Biochem Pharmacol,2014;87(4):598-610.
22Duan D,Zhang B,Yao J,etal.Gambogic acid induces apoptosis in hepatocellular carcinoma SMMC-7721 cells by targeting cytosolic thioredoxin reductase〔J〕.Free Radic Biol Med,2014;69:15-25.
23Kim SJ,Lee SM.NLRP3 inflammasome activation in D-galactosamine and lipopolysaccharide-induced acute liver failure:role of heme oxygenase-1〔J〕.Free Radic Biol Med,2013;65:997-1004.
25Loetscher P,Moser B,Baggiolini M.Chemokines and their receptors in lymphocyte traffic and HIV infection〔J〕.Adv Immunol,2000;74:127-80.
26Langhans B,Kr?mer B,Louis M,etal.Intrahepatic IL-8 producing Foxp3+CD4+regulatory T cells and fibrogenesis in chronic hepatitis C〔J〕.J Hepatol,2013;59(2):229-35.
27Wijesundera KK,Izawa T,Tennakoon AH,etal.M1-and M2-macrophage polarization in rat liver cirrhosis induced by thioacetamide (TAA),focusing on Iba1 and galectin-3〔J〕.Exp Mol Pathol,2014;96(3):382-92.
28Marotta F,Chui D,Jain S,etal.Effect of a fermented nutraceutical on thioredoxin level and TNF-alpha signalling in cirrhotic patients〔J〕.J Biol Regul Homeostatic Agents,2010;25(1):37-45.
〔2014-09-29修回〕
(編輯郭菁)