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    GM-CSF 與生長抑素共表達(dá)基因疫苗的構(gòu)建和鑒定

    2014-12-14 02:51:06魏金鋼韓曉萍劉英俊蘭芳菲梁愛心吳紅翔舒鄧群
    關(guān)鍵詞:共表達(dá)凝膠電泳瓊脂糖

    魏金鋼,韓曉萍,劉英俊,蘭芳菲,梁愛心,吳紅翔,舒鄧群*

    (1.江西農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,江西 南昌 330045;2.華中農(nóng)業(yè)大學(xué) 動物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖北 武漢 430070)

    生長速度、產(chǎn)肉率和飼料利用率等是衡量肉用動物生產(chǎn)性能的主要指標(biāo),動物的生長既可以從營養(yǎng)方面調(diào)控,也可以通過動物生長軸的調(diào)控進(jìn)行調(diào)節(jié)。動物生長軸是由動物體內(nèi)下丘腦-垂體-靶器官及其相關(guān)的激素和受體所組成的具有自動調(diào)節(jié)的神經(jīng)內(nèi)分泌系統(tǒng),下丘腦分泌生長激素釋放因子(growth hormone-releasing factor,GRF)和生長抑素(somatostatin,SS),GRF 促進(jìn)垂體加強生長激素(growth hormone,GH)的分泌,從而促進(jìn)動物的生長;生長抑素則抑制垂體分泌生長激素,從而抑制動物的生長。粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因子(granulocyte-macrophage colony-stimulating factor,GM-CSF)是一個具有多項潛能的造血生長因子,不僅能刺激造血祖細(xì)胞增殖、分化和成熟,而且還能活化中性粒細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、DC 及其它單核細(xì)胞,常用作DNA 疫苗的免疫佐劑,以提高DNA 疫苗的免疫效果[1]。舒鄧群等以豬的真核表達(dá)質(zhì)粒pGM-CSF 為模板,構(gòu)建GM-CSF 與SS 融合表達(dá)質(zhì)粒(pGM-CSF/SS),免疫小鼠后,可增強小鼠脾臟淋巴細(xì)胞的增殖能力,提高生長抑素抗體的P/N 值[2],提高肌肉組織中GHR 和IGF-I mRNA 的表達(dá)[3]。本研究利用動物的生長軸的原理,采用生物工程的方法,應(yīng)用共表達(dá)載體pIRES 將GM-CSF 基因和SS 基因分別克隆到載體的多克隆位點A 和B,構(gòu)建共表達(dá)基因疫苗,旨在同時表達(dá)GM-CSF 和SS 兩種蛋白,研究基因佐劑GM-CSF 對生長抑素的免疫增強作用,為提高動物的生產(chǎn)性能提供理論基礎(chǔ)。

    圖1 pIRES 質(zhì)粒結(jié)構(gòu)Fig.1 Structure of pIRES plasmid

    1 材料與方法

    1.1 質(zhì)粒和菌種

    質(zhì)粒pIRES 由暨南大學(xué)醫(yī)學(xué)院血液病研究所李揚秋老師惠贈,質(zhì)粒結(jié)構(gòu)見圖1。質(zhì)粒pVGS/2SS-asd 由華中農(nóng)業(yè)大學(xué)楊利國教授惠贈[4],該質(zhì)粒包括GM-CSF 片段和含有乙肝表面抗原的2SS 片段,E.coli DH5α受體菌購于天根生物有限公司。

    圖2 pIRES-GM-CSF/2SS 質(zhì)粒的構(gòu)建圖Fig.2 Schematic illustration for construction of pIRES-GM-CSF/2SS

    1.2 酶和試劑

    Taq DNA 聚合酶;DNA 分子量標(biāo)準(zhǔn)DL5000 和DL10000;pEASYTM-T1 Simple T載體;T4DNA 連接酶均購自北京全式金有限公司;PCR 產(chǎn)物純化試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒由北京原平皓公司生產(chǎn);限制性內(nèi)切酶Xba Ⅰ、Nhe I、EcoR Ⅰ、Not I、Sal I 購 于Toyobo 公司;其它試劑均為國產(chǎn)分析純。GM-CSF 與SS 共表達(dá)質(zhì)粒構(gòu)建的技術(shù)路線見圖2。

    1.3 引物的設(shè)計與合成

    采用Primer 5.0 軟件設(shè)計引物,分別根據(jù)豬的GM-CSF 序列[5]和2SS 片段(含有乙肝表面抗原S 基因)序列設(shè)計擴增GM-CSF 和2SS 片段的引物[6](表1),設(shè)計引物由上海生物工程有限公司合成。

    表1 目的基因引物參數(shù)Tab.1 Parameter of oligo-nucleotide primer pairs for the target genes

    1.4 pIRES 質(zhì)粒的提取與酶切

    將pIRES 質(zhì)粒轉(zhuǎn)入感受態(tài)大腸桿菌E.coli DH5α中,鋪板與擴大培養(yǎng)后挑取單菌落進(jìn)行培養(yǎng),采用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒pIRES,然后進(jìn)行酶切,酶切體系為:10×M buffer 1.0 μL、XbaⅠ0.2 μL、EcoR I 0.2 μL、pIRES 質(zhì)粒2 μL、ddH2O 至總體積10 μL,37 ℃,反應(yīng)2~3 h,酶切后,用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測酶切結(jié)果。

    1.5 pIRES-GM-CSF 質(zhì)粒的構(gòu)建

    1.5.1 GM-CSF 基因的擴增 按試劑盒說明書抽提和純化pVGS/2SS-asd 質(zhì)粒。以pVGS/2SS-asd質(zhì)粒為模板,按照如下PCR 反應(yīng)體系進(jìn)行GM-CSF 基因的擴增:5×Buffer 2 μL、d NTP 0.4 μL、Taq DNA 聚合酶0.4 μL、引物p1、p2 各0.5 μL、pVGS/2SS-asd 質(zhì)粒1.5 μL、ddH2O 至合計20 μL。按以下條件進(jìn)行PCR 反應(yīng):94 ℃變性6 min,然后,94 ℃變性1 min、51 ℃退火1 min、72 ℃延伸1 min,35 個循環(huán)后72 ℃續(xù)延10 min、16 ℃降溫5 min。PCR 產(chǎn)物1.0%瓊脂糖電泳檢測,膠回收,純化和定量,備用。

    1.5.2 GM-CSF 基因與T 載體相連 按照如下連接體系將GM-CSF 基因與T 載體進(jìn)行相連:PCR 的產(chǎn)物GM-CSF 4 μL、T-載體1 μL,35 ℃反應(yīng)15 min,將反應(yīng)產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)DH5α中,培養(yǎng)后,采用質(zhì)粒提取試劑盒提取質(zhì)粒TGM-CSF 質(zhì)粒。然后按以下酶切體系進(jìn)行酶切鑒定:T-GMCSF 質(zhì)粒2 μL、Nhe I 0.1 μL、EcoR I 0.3 μL、10×M Buffer 1 μL、加ddH2O 至總體積10 μL,鑒定正確的質(zhì)粒送往北京奧科生物技術(shù)有限公司測序,備用。

    1.5.3 pIRES-GM-CSF 質(zhì)粒的構(gòu)建 純化后的pIRES 質(zhì)粒和TGM-CSF 質(zhì)粒分別用Nhe I 和EcoR I 雙酶切,酶切體系分別為:pIRES 質(zhì)粒12 μL、Nhe I 0.4 μL、EcoR I 0.8 μL、10×M Buffer2 μL、加dd H2O 至總體積20 μL;TGM-CSF 12 μL、Nhe I 0.2 μL、EcoR I 0.2 μL、10×M Buffer 2 μL、加ddH2O 至總體積20 μL,37 ℃,反應(yīng)2~3 h,酶切后,用1.0%瓊脂糖凝膠電泳,分別分離回收pIRES 大片段和GM-CSF 片段,備用。

    然后,將回收、純化的pIRES 大片段和GM-CSF 片段按如下體系進(jìn)行連接反應(yīng):pIRES 載體線性片段1 μL、GM-CSF 線性片段4 μL、5×T4Ligase Buffer 2 μL、T4DNA Ligase 1 μL、dd H2O 2 μL、共計10 μL,23 ℃水浴,連接20 min。

    1.5.4 陽性重組質(zhì)粒(pIRES-GM-CSF)的篩選和鑒定 將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)E.coli DH5α細(xì)菌,固體培養(yǎng)基鋪板培養(yǎng),挑取陽性克隆,LB 培養(yǎng),提取質(zhì)粒DNA,進(jìn)行酶切鑒定,酶切體系為:陽性克隆2 μL、Nhe I 0.1 μL、EcoR I 0.3 μL、10×M Buffer 1 μL、ddH2O 至總體積10 μL,37 ℃,反應(yīng)2~3 h,1.0%瓊脂糖電泳檢測,電泳條帶與目的條帶大小相符,鑒定正確的質(zhì)粒送往北京奧科生物技術(shù)有限公司測序,獲得的陽性克隆命名為pIRES-GM-CSF。

    1.6 pIRES-GM-CSF/2SS 質(zhì)粒的構(gòu)建

    1.6.1 2SS 基因的擴增 以pVGS/2SS-asd 質(zhì)粒為模板,按照如下PCR 反應(yīng)體系進(jìn)行SS 基因的擴增:5×Buffer 2 μL、d NTP 0.4 μL、Taq DNA 聚合酶0.4 μL、引物p3、p4 各0.5 μL、pVGS/2SS-asd 模板1.5 μL、ddH2O 至總體積20 μL,按以下條件進(jìn)行PCR 反應(yīng):94 ℃變性6 min,然后94 ℃變性1 min、54.9 ℃退火1 min、72 ℃延伸1 min,35 個循環(huán)后,72 ℃續(xù)延10 min、16 ℃降溫5 min,PCR 產(chǎn)物1.0%瓊脂糖電泳檢測,膠回收,純化和定量,備用。

    1.6.2 T2SS 質(zhì)粒的構(gòu)建 將2SS 的PCR 產(chǎn)物與T 載體相連,連接體系:PCR 的產(chǎn)物2SS 4 μL、T 載體1 μL、35 ℃反應(yīng)15 min,反應(yīng)結(jié)束后放于冰上。然后將陽性質(zhì)粒轉(zhuǎn)入DH5α,進(jìn)行培養(yǎng)擴增,提取T2SS質(zhì)粒進(jìn)行酶切鑒定,酶切體系為T2SS 2 μL、Not I 0.2 μL、Sal I 0.2 μL、10×H Buffer 1 μL、dd H2O 至總體積共計10 μL,酶切產(chǎn)物進(jìn)行1.0%瓊脂糖電泳檢測,同時,將鑒定正確的質(zhì)粒送往北京奧科生物技術(shù)有限公司測序,測序正確的質(zhì)粒進(jìn)行保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.6.3 pIRES-GM-CSF/2SS 質(zhì)粒的構(gòu)建 純化后的pIRES-GM-CSF 質(zhì)粒和T2SS 質(zhì)粒分別采用NotI 和SalI 雙酶切pIRES-GM-CSF 質(zhì)粒酶切體系為:pIRES-GM-CSF 質(zhì)粒12 μL、Not I 1 μL、Sal I 1 μL、10×H Buffer 2 μL、dd H2O 至總體積20 μL;T2SS 質(zhì)粒酶切體系為:T2SS 11.2 μL、Not I 0.8 μL、Sal I 1 μL、10×H Buffer 2 μL、dd H2O 至總體積20 μL。分別在37℃,反應(yīng)2~3 h,回收、純化的pIRES-GM-CSF 大片段和2SS 片段,1.0%瓊脂糖電泳檢測,酶切產(chǎn)物保存?zhèn)溆谩?/p>

    將回收、純化的pIRES-GM-CSF 大片段和2SS 片段按如下體系進(jìn)行連接反應(yīng):pIRES-GM-CSF片段1 μL、2SS 線性片段5 μL、5×T4Ligase Buffer2 μL、T4DNA Ligase 1 μL、dd H2O 至總體積10 μL,23℃水浴,連接20 min。連接產(chǎn)物備用。將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)E.coli DH5α細(xì)菌,固體培養(yǎng)基鋪板培養(yǎng),挑取陽性克隆,LB 培養(yǎng),提取質(zhì)粒DNA。

    1.6.4 pIRES-GM-CSF/2SS 的酶切鑒定和測序 將上述提取的質(zhì)粒按如下體系進(jìn)行酶切鑒定:酶切體系1:陽性克隆2 μL、Nhe I 0.1 μL、EcoR I 0.3 μL、10×M Buffer1 μL、dd H2O 至總體積10 μL;酶切體系2:陽性克隆2 μL、Not I 0.2 μL、Sal I 0.2 μL、10×H Buffer 1 μL、dd H2O 至總體積10 μL,37 ℃,反應(yīng)2~3 h,1.0%瓊脂糖電泳檢測,將鑒定正確的質(zhì)粒送往北京奧科生物技術(shù)有限公司測序,獲得的陽性克隆命名為pIRES-GM-CSF/2SS。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 pIRES 質(zhì)粒提取

    用試劑盒提取目的質(zhì)粒,用TE 溶解后,1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖3 所示。由圖3 可見,在5 000 bp 之后有條6 100 bp 的條帶,與pIRES 質(zhì)粒大小相符,而且,OD260/OD280值均在1.8~2.0 之間,說明DNA 純度較高,可直接用于酶切反應(yīng)。再用Xba I 和EcoR I 酶切pIRES 質(zhì)粒,結(jié)果見圖4。由圖4 可以看出,在500~750 bp 之間有條651 bp 的條帶,與IRES 片段大小相符。

    圖3 pIRES 質(zhì)粒Fig.3 pIRES plasmid

    圖4 pIRES 質(zhì)粒的酶切Fig.4 Digestion of pIRES plasmid

    2.2 GM-CSF 片段的擴增

    采用pVGS/2SS-asd 模板,通過PCR 的方法擴增GM-CSF 的片段,1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測PCR產(chǎn)物,結(jié)果如圖5 所示,由圖5 可見,在250~500 bp之間有條465 bp 條帶,與GM-CSF 片段的大小符合。

    2.3 TGM-CSF 質(zhì)粒的提取

    將T 載體與GM-CSF 片段連接,35 ℃、反應(yīng)15 min,然后轉(zhuǎn)化感受態(tài)的大腸桿菌,提取質(zhì)粒鑒定,1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖6 所示。由圖6可見,在3 000~5 000 bp 之間有條4 299 bp 的條帶,與TGM-CSF 質(zhì)粒的大小相符。

    2.4 TGM-CSF 質(zhì)粒的雙酶切鑒定

    用EcoR I 和Nhe I 對TGM-CSF 質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切,37 ℃酶切3 h,1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖7 所示。由圖7 可見,3 829 bp 的條帶為T 載體,與T 載體的大小相符;另外,在圖還可看到條465 bp 的條帶,與GM-CSF 片段的大小相符。

    圖5 GM-CSF 的PCR 片段Fig.5 GM-CSF fragment by PCR

    圖6 TGM-CSF 質(zhì)粒Fig.6 TGM-CSF plasmid

    圖7 TGMCSF 質(zhì)粒酶切Fig.7 Digestion of TGM-CSF plasmid

    2.5 pIRES-GM-CSF 質(zhì)粒的鑒定

    將pIRES 質(zhì)粒和TGM-CSF 質(zhì)粒分別用EcoR I和Nhe I 雙酶切,37 ℃酶切3 h,然后回收pIRES 的大片段和GM-CSF 片段,回收的片段后在23 ℃水浴環(huán)境下連接20 min,然后導(dǎo)入大腸桿菌,提取質(zhì)粒用EcoR I 和Nhe I 雙酶切鑒定,37 ℃酶切3 h,酶切結(jié)果用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖8 所示。由圖8 可見,一條6 089 bp 的條帶與pIRES 載體的大小相符,還有一條465 bp 的條帶與GM-CSF 目的片段的大小相符。

    2.6 PCR 擴增SS 目的基因

    以pVGS/2SS-asd 質(zhì)粒為模板擴增SS 基因,擴增結(jié)果1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖9 所示。由圖9 可見,有一條822 bp 的條帶,與預(yù)期的2SS 片段的大小相符。

    圖8 pIRES-GM-CSF 酶切Fig.8 Digestion of pIRES-GM-CSF plasmid

    圖9 擴增的SS 片段Fig.9 PCR fragment of 2SS

    2.7 T2SS 質(zhì)粒的鑒定

    將SS 片段回收后與T 載體連接,35 ℃反應(yīng)15 min,回收后導(dǎo)入大腸桿菌,提取質(zhì)粒。用EcoR I和Nhe I 酶切質(zhì)粒,1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖10 所示。由圖10 可見,有條822 bp 的條帶,與預(yù)期的2SS 片段大小相符。

    2.8 pIRES-GM-CSF/2SS 的鑒定

    分別用Not I 和Sal I、EcoR I 和Nhe I 酶切共表達(dá)基因疫苗pIRES-GM-CSF/2SS,1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖11 所示。從電泳圖中可以看出有條465 bp 的條帶,與目的片段GM-CSF 的大小相符,另有條822 bp 的條帶,與目的片段2SS 的大小相符。

    圖10 T2SS 酶切Fig.10 Digestion of T2SS

    圖11 pIRES-GM-CSF/2SS 酶切Fig.11 Digestion of pIRES-GM-CSF/2SS plasmid

    3 討論

    曹少先等成功構(gòu)建了生長抑素基因疫苗pcS/SS,且在真核細(xì)胞中都得到很好的表達(dá),具有SS 的反應(yīng)原性,用pcS/SS 免疫SD 大鼠,50 μg 的劑量表現(xiàn)出良好的免疫反應(yīng)性,抗體陽性率為60%[6]。但由于種與種之間的免疫遺傳差異,DNA 疫苗對大動物特別是對哺乳動物,免疫原性差[7],免疫效果往往不理想,因而影響DNA 疫苗的實用性。要獲得效力更持久、免疫應(yīng)答更強以及最優(yōu)化的免疫應(yīng)答,需進(jìn)一步改善DNA 疫苗的免疫應(yīng)答。使用重組的細(xì)胞因子蛋白或質(zhì)粒編碼的細(xì)胞因子作為基因佐劑,即采用將抗原基因與細(xì)胞因子質(zhì)粒聯(lián)合注射、融合表達(dá)或共表達(dá)的方式,可增強機體免疫應(yīng)答效率,提高免疫效果。

    GM-CSF 由多種細(xì)胞分泌,能夠刺激和活化專業(yè)的APC,可提高體液免疫和CTL 應(yīng)答,因而是基因免疫中極有應(yīng)用前景的細(xì)胞因子[8]。大量研究表明,編碼GM-CSF 的質(zhì)粒能增強DNA 疫苗的免疫效果[9]。

    目前基因疫苗與基因佐劑表達(dá)的方式有以下3 種:(1)共注射:采用表達(dá)質(zhì)粒分別構(gòu)建基因疫苗和佐劑質(zhì)粒,然后在動物的不同部位分別注射這兩種質(zhì)粒。李琳等同時對小鼠注射pcDNA3/mGM-CSF和pcDNA3/MDC-VP1,發(fā)現(xiàn)GM-CSF 基因?qū)cDNA3/MDC-VP1 有免疫增強的作用,但是其存在操作相對來說比較繁瑣,可能存在局部免疫不均勻[10]。(2)共免疫:采用表達(dá)質(zhì)粒將目的基因與佐劑以融合表達(dá)的形式構(gòu)建融合表達(dá)基因疫苗。舒鄧群等首先成功構(gòu)建了融合表達(dá)基因疫苗pGM-CSF/SS,通過小鼠口服融合表達(dá)疫苗pGM-CSF/SS 的免疫方式,觀察其對小鼠淋巴細(xì)胞增殖和GH、IGF-Ⅰ分泌的影響,發(fā)現(xiàn)pGM-CSF/SS 的免疫效果優(yōu)于pGM-CSF+pcS/2SS 組[11]。(3)共表達(dá)基因疫苗:在一個共表達(dá)質(zhì)粒的兩個多克隆位點上同時克隆目的基因和佐劑基因,可同時表達(dá)2 個完全獨立的蛋白。李闖等構(gòu)建的TCR Vα1-pIRES-TCR Vβ8 的共表達(dá)載體,轉(zhuǎn)染A549 和Molt4 細(xì)胞后,在mRNA 和蛋白水平檢測到了TCR Vα1 和TCR Vβ8 的表達(dá),為利用特異性TCR 基因修飾T 細(xì)胞的研究提供方法學(xué)依據(jù)[12]。韓雷等構(gòu)建了pIRES-hVEGF121cDNA/hBMP-4 質(zhì)粒,并且在轉(zhuǎn)染COS-7 細(xì)胞,提取總RNA和總蛋白,進(jìn)行RT-PCR 和Western-blot 分別檢測到目的基因和目的蛋白[13]。

    IRES 序列來源于腦心肌炎病毒(ECMV),它具有不依賴于5'帽子結(jié)構(gòu)的翻譯起始,pIRES 載體質(zhì)粒上有兩個多克隆位點MCSA 和MCSB,當(dāng)目的基因被克隆進(jìn)這兩個位點時,該載體能夠同時翻譯出兩種目的蛋白。Camille Allera-Moreau 等用光度計檢測到連接了IRES 的FGF-1 和FGF-2 基因在小鼠肌肉細(xì)胞中的表達(dá)[14]。Liu S 等通過構(gòu)建pIRES-Sj97-Sj14-Sj26 免疫小鼠,通過ELISA 檢測抗體和MTT 法檢測CD4+and CD8+T 細(xì)胞增值,發(fā)現(xiàn)其與對照組相比能夠增強小鼠的免疫力[15]。胡剛等首先構(gòu)建了pIRES-PML-RARα-hIL-2 重組質(zhì)粒,然后轉(zhuǎn)染A549 細(xì)胞,通過點雜交試驗和ELISA 檢測到這兩個基因的表達(dá)[16]。黃梅娟等分別構(gòu)建了pIRES-Jurkat Vβ8、pIRES-Molt4 Vβ2(1)和pIRES-Molt4 Vβ2(2)三種質(zhì)粒,首先通過測序證明質(zhì)粒構(gòu)建的正確性,然后轉(zhuǎn)染K562 細(xì)胞,通過間接免疫熒光法、SDS-PAGE 和Western-blotting 等檢測其能夠表達(dá)相應(yīng)的目的蛋白[17]。

    本研究利用共表達(dá)載體pIRES,分別在核糖體進(jìn)入位點(IRES)的兩個多克隆位點(MCSA 和MCSB)分別克隆GM-CSF 基因和SS 基因,成功構(gòu)建了含GM-CSF 基因和SS 基因的共表達(dá)基因疫苗pIRES-GM-CSF/2SS,為共表達(dá)基因疫苗pIRES-GM-CSF/2SS 的后續(xù)研究奠定了良好的基礎(chǔ)。

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