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    大鼠動(dòng)脈鈣化誘導(dǎo)過(guò)程中炎癥小體復(fù)合物分子的變化

    2014-10-27 09:04:44彭利靜李慧李超民
    生物技術(shù)通訊 2014年3期
    關(guān)鍵詞:中膜小體主動(dòng)脈

    彭利靜,李慧,李超民

    解放軍第451醫(yī)院 心血管內(nèi)科,陜西 西安 710054

    動(dòng)脈鈣化是指鈣鹽沉積在動(dòng)脈壁組織的一種病理改變。人體內(nèi)的鈣主要以羥基磷灰石的形式存在于骨骼和牙齒中,當(dāng)動(dòng)脈鈣化發(fā)生時(shí),鈣會(huì)以磷酸鈣的形式沉積在脈管系統(tǒng),導(dǎo)致動(dòng)脈鈣化的發(fā)生。沉積在脈管系統(tǒng)的磷酸鈣會(huì)減少主動(dòng)脈和支動(dòng)脈的彈回率,從而改變心血管系統(tǒng)的血液流動(dòng)力學(xué),導(dǎo)致高血壓、主動(dòng)脈瓣狹窄、心臟肥厚、心肌和下肢缺血、充血性心力衰竭,因此導(dǎo)致死亡率上升[1-3]。這種鈣化可以發(fā)生在不同部位(心臟瓣膜、動(dòng)脈內(nèi)膜和中膜、毛細(xì)血管等),可呈局部、集中或彌散的鈣化,由此導(dǎo)致的損傷會(huì)引起急性炎癥和鈣代謝的平衡失調(diào)[4]。

    鈣化多發(fā)生于老年人中,隨著生活水平的提高,血管疾病發(fā)生率呈上升趨勢(shì),而發(fā)病年齡呈年青化趨勢(shì),其中血管鈣化較普遍。許多疾病早期都發(fā)生炎癥反應(yīng),炎癥反應(yīng)在鈣化發(fā)生過(guò)程中同樣起著重要的作用。我們以大鼠動(dòng)脈鈣化為模型,研究了鈣化發(fā)生過(guò)程中NALP3炎癥小體復(fù)合物分子的變化情況。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    4周齡SD大鼠,體質(zhì)量150 g左右,訂購(gòu)于軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心;DMEM培養(yǎng)基購(gòu)自Gibco公司;小牛血清購(gòu)自杭州四季青生物工程材料有限公司;卵磷脂購(gòu)自北京化學(xué)試劑公司;豬源膽酸購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán);β-磷酸甘油酯購(gòu)自北京欣經(jīng)科生物技術(shù)有限公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自Promega公司;TRIzol購(gòu)自天根公司;引物由北京奧科公司合成。

    1.2 維生素D3注射液的配制

    溶液A:0.6 g卵磷脂溶于260 μL無(wú)水酒精,制成卵磷脂溶液;25.5 mg VD3溶于卵磷脂溶液,加入0.75 g玉米油,充分振蕩溶解。溶液B:26 mg膽酸溶于7.3 mL生理鹽水。將溶液A溶于溶液B中,在振蕩器上充分振蕩,所得溶液為乳濁注射液。

    1.3 大鼠動(dòng)物模型的建立

    SD大鼠42只分為對(duì)照組和鈣化組,對(duì)照組6只,鈣化組36只。鈣化組按時(shí)間梯度(0.5、1、3、7、14、28 d)分為6組,每組6只。鈣化組給予VD3注射液,劑量為30萬(wàn)U/(kg·d),連續(xù)注射14 d,每天同一時(shí)間皮下注射。在不同時(shí)間點(diǎn)收取鈣化大鼠,取其主動(dòng)脈,放入無(wú)RNAase的離心管中,凍存于-80℃。

    1.4 HE染色

    將制好的石蠟切片在二甲苯Ⅰ、Ⅱ中各脫蠟10 min,蘇木素染色5 min,蒸餾水沖洗2 min,用1%的鹽酸乙醇分化3 s,蒸餾水沖洗2 min,伊紅染色2 min,蒸餾水沖洗5 min,梯度乙醇溶液(50%、70%、80%、95%)脫水,晾干后用中性樹膠封片。

    1.5 RNA提取及半定量PCR

    收取大鼠動(dòng)脈組織,加入1 mL TRIzol裂解,用玻璃棒研磨,用氯仿和異丙醇抽提總RNA,用75%的乙醇洗滌RNA沉淀物,DEPC水溶解RNA,-80℃保存。取 2 μg總 RNA,在含 1.5 μL oligo(dT)、5 μL dNTP混合液、1 μL M-MLV反轉(zhuǎn)錄酶、0.625 μL核糖核酸酶抑制劑、5 μL M-MLV緩沖液的20 μL體系中逆轉(zhuǎn)錄成cDNA。取2 μL逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物作為模板,分別進(jìn)行PCR擴(kuò)增基因。引物為Rat nalp3-上游(5'GACCAGGAGGTTGTTCAGATCTTC3')、Rat nalp3-下 游(5'TCCATTCTGGTAGAGAGGTTGATC 3')、Rat ASC-上游(5'ACCACACCCTTGCACAGCC TATC3')、Rat ASC-下游(5'CACATTGCCATACAG AGCATCCAG3')、Rat Caspase-1-上游(5'GTGAGT GTAGGGACAATAAATGGA3')、Rat Caspase-1- 下游(5'CTAAAGGGCAAAACTTGAGGGAAC3')、Rat β-actin-上游(5'CACCCGCGAGTACAACCTTC3')、β-actin-下游(5'CCCATACCCACCATCACACC3')。PCR反應(yīng)體系為20 μL,擴(kuò)增條件為95℃預(yù)變性5 min、95℃變性45 s、58℃退火30 s、72℃延伸1 min。

    2 結(jié)果

    2.1 大鼠動(dòng)脈鈣化模型的建立

    我們以SD大鼠作為實(shí)驗(yàn)對(duì)象制備動(dòng)物鈣化模型,取其主動(dòng)脈血管制備石蠟切片,HE染色顯示主動(dòng)脈中膜和內(nèi)膜鈣化情況,見(jiàn)圖1。未給予VD3組大鼠主動(dòng)脈中膜和內(nèi)膜完整,給予VD3組大鼠主動(dòng)脈中膜和內(nèi)膜因發(fā)生鈣化而斷裂。

    2.2 NALP3炎癥小體相關(guān)基因在鈣化模型中被激活

    我們進(jìn)一步確定NALP3炎癥小體在體內(nèi)鈣化模型中的情況。4周齡SD大鼠按不同時(shí)間點(diǎn)(0、0.5、1、3、7、14、28 d)皮下注射VD3,對(duì)照組注射除VD3外的溶劑,于不同時(shí)間點(diǎn)處理大鼠。提取大鼠的主動(dòng)脈總RNA,RT-PCR檢測(cè)NALP3炎癥小體基因的表達(dá)差異。結(jié)果如圖2所示,以β-actin為內(nèi)參,在0.5 d時(shí)NALP3炎癥小體基因(NALP3、ASC、Cas?pase-1)轉(zhuǎn)錄水平開(kāi)始上升,并持續(xù)上升至鈣化誘導(dǎo)第7 d,在鈣化后期(14、28 d)轉(zhuǎn)錄水平下降,這表明NALP3炎癥小體在動(dòng)物鈣化早期被激活。

    圖1 大鼠鈣化模型的建立

    圖2 NALP3炎癥小體在體內(nèi)鈣化模型中被激活

    3 討論

    文獻(xiàn)報(bào)道的大鼠動(dòng)脈鈣化模型的制作方法主要有維生素D3加尼古丁法[5]、維生素D3加華法令法[6]和單用維生素D3法[7]。研究表明[8],維生素D3能顯著促進(jìn)動(dòng)脈鈣化的發(fā)生。經(jīng)皮下注射維生素D3后,血鈣濃度顯著升高,并破壞動(dòng)脈管壁的完整性,但具體機(jī)制不明確。本實(shí)驗(yàn)采用單用維生素D3法,皮下注射給予實(shí)驗(yàn)組大鼠大劑量VD3,制作了大鼠動(dòng)脈鈣化模型,經(jīng)病理(HE染色)證實(shí)模型制作成功,可見(jiàn)動(dòng)脈中膜彈力層和內(nèi)膜大量被破壞,由于制片過(guò)程中有部分鈣鹽脫落,造成中層有空白形成。

    炎癥小體是一種胞內(nèi)模式識(shí)別受體復(fù)合物,主要應(yīng)答進(jìn)入胞內(nèi)的病原相關(guān)分子模式(pathogen-as?sociated molecular pattern,PAMP),通過(guò)分泌IL-1β參與宿主先天性免疫反應(yīng)。研究表明,一些晶體結(jié)構(gòu)物和外來(lái)蛋白聚集體可以激活NALP3信號(hào)通路,如尿酸單鈉(monosodium urate,MSU)和引起自發(fā)炎癥痛風(fēng)和關(guān)節(jié)炎的焦磷酸鈣脫水化合物(calcium pyrophosphate dehydrate,CPPD)都能激活NALP3炎癥小體[9]。我們的實(shí)驗(yàn)表明,大鼠動(dòng)脈鈣化誘導(dǎo)過(guò)程中 NALP3、ASC、Caspase-1的轉(zhuǎn)錄水平升高,表明NALP3炎癥小體的相關(guān)基因在鈣化模型中被激活。這些發(fā)現(xiàn)為我們進(jìn)一步研究動(dòng)脈鈣化的機(jī)制及篩選抗動(dòng)脈硬化藥物打下了基礎(chǔ)。

    [1]Kelly R P,Tunin R,Kass D A.Effect of reduced aortic com?pliance on cardiac efficiency and contractile function of in si?tu canine left ventricle[J].Circ Res,1992,71:490-502.

    [2]Ohtsuka S,Kakihana M,Watanabe H,et al.Chronically de?creased aortic distensibilitycausesdeterioration ofcoronary perfusion during increased leftventricularcontraction[J].J Am Coll Cardiol,1994,24:1406-1414.

    [3]Watanabe H,Ohtsuka S,Kakihana M,et al.Decreased aortic compliance aggravates subendocardial is chaemia in dogs with stenosed coronary artery[J].Cardiovasc Res,1992,26:1212-1218.

    [4]Collin-Osdoby P.Regulation of vascular calcification by osteo?clastregulatory factorsRANKL and osteoprotegerin[J].Circ Res,2004,95:1046-1057.

    [5]Niederhoffer N,Bobryshev Y V,Lartaud-Idjouadiene I,et al.Aortic calcification produced by vitaamin D3 plus nicotine[J].J Vasc Res,1997,34:386-398.

    [6]Price P A,Faus S A,Williamson M K.Warfarin-induced ar?tery calcification is accelerated by growth and vitamin D[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2000,20:317-327.

    [7]Thirunavukkarasu K,Miles R R,Halladay D L,et al.Stimula?tion of osteoprotegerin(OPG)gene expression by transforming growth factor-beta(TGF-beta).Mapping of the OPG promoter region that mediates TGF-beta effects[J].J Biol Chem,2001,276:36241-36250.

    [8]吳開(kāi)云,高攝淵,袁融,等.維生素D誘發(fā)大鼠動(dòng)脈粥樣硬化的實(shí)驗(yàn)研究[J].解剖學(xué)報(bào),1996,27(2):133-135.

    [9]Martinon F,Petrilli V,Mayor A,et al.Gout-associated uric acid crystals activate the NALP3 in flammasome[J].Nature,2006,440:237-241.

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