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    劍麻殘渣皂苷元高產(chǎn)率菌株的篩選及特性研究

    2014-10-23 12:01孫昊劉建國朱桂梅李海云郝再彬

    孫昊+劉建國+朱桂梅+李海云+郝再彬

    摘要通過微生物發(fā)酵法將劍麻皂苷轉(zhuǎn)化成皂苷元.采集桂林喀斯特地貌土壤樣品,從能夠降解皂苷糖基的多個菌株中篩選出JM7,對其發(fā)酵條件進行優(yōu)化,得到最適條件:溫度30 ℃、pH為6、發(fā)酵時間5 d、底物質(zhì)量濃度6 g/L,并且對產(chǎn)物皂苷元進行了HPLC檢測和單晶衍射測定.

    關(guān)鍵詞劍麻皂苷;皂苷元;菌株篩選;發(fā)酵優(yōu)化

    中圖分類號Q93;S567文獻標(biāo)識碼A文章編號10002537(2014)04002904

    工業(yè)生產(chǎn)劍麻纖維時剩余的抽絲汁液和殘渣中含有豐富的劍麻皂苷資源,轉(zhuǎn)化提取出的皂苷元可以改善小鼠糖耐量[1];劍麻皂苷元能明顯降低四氧嘧啶糖尿病小鼠的血糖水平,對腎上腺素高血糖大鼠也有降血糖作用[2].劍麻皂苷元(Tigogenin,圖1)是螺甾烷醇的衍生物,是合成甾體激素類藥物的醫(yī)藥中間體和重要原料,廣泛應(yīng)用于腎上腺皮質(zhì)激素、性激素及蛋白同化激素,三大類激素可以制造200多種藥物[34].用甲醇提取劍麻葉汁中的化合物,分離得到5個甾體皂苷 A、B、C、D、E[5],均可用于皂苷元的轉(zhuǎn)化.藥理研究表明,這種皂苷元成分具有較明顯的抗炎、抗菌、止血、抗衰老和降血糖的生物活性[6].

    目前工業(yè)生產(chǎn)劍麻皂苷元采用硫酸加熱回流提取法[7],通過多次醇提酸解皂苷得到皂苷元產(chǎn)品.大量醇和酸對環(huán)境造成很大危害,同時也提高了生產(chǎn)成本.因此,新型的無污染低能耗的劍麻皂苷元生產(chǎn)方法亟待研究與開發(fā),本實驗篩選出產(chǎn)生劍麻皂苷元的高活性發(fā)酵微生物,為工業(yè)化生產(chǎn)開辟了一條新途徑.

    1材料與方法

    1.1材料

    1.1.1菌種與培養(yǎng)基 土壤樣品:實驗室采集桂林喀斯特地貌的土壤樣品200份.篩選培養(yǎng)基:絞股藍(lán)皂苷2 g;瓊脂2 g;硫酸亞鐵0.001 g;硫酸鎂0.05 g;氯化鈉0.05 g;磷酸氫二鉀005 g;硝酸鉀0.1 g;水100 mL,用1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH至7.5,121 ℃滅菌20 min,搖勻后倒平板.

    酸鉀、氫氧化鈉、鹽酸、香草醛、乙酸、高氯酸,以上試劑均為分析純.

    儀器:TU1800S 紫外分光光度計(美國VARIAN公司);BS110S (塞多利斯)電子天平(北京塞多利斯有限公司);LRH150Z振蕩培養(yǎng)箱(廣東省醫(yī)療器械廠);DKS24 型電熱恒溫水浴鍋(上海精宏實驗設(shè)備有限公司);垂直流超凈工作臺(上海智城分析儀器公司);立式壓力蒸汽滅菌器(上海博迅實業(yè)有限公司);島津LC20AB高效液相色譜儀,ELSD檢測器;氮氣(99.9%,廣西桂林海灣恒日化工氣體有限公司);KQ400KDE型高功率數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);SIGMA 3K30離心機(德國希格瑪離心機有限公司).

    1.2實驗方法

    1.2.1制備皂苷標(biāo)準(zhǔn)曲線 比色法[8]:稱量標(biāo)準(zhǔn)品劍麻皂苷5.00 mg,用甲醇溶解并定容至5 mL.分別吸取0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6和0.7 mL置于25 mL具塞試管中,以空白管作對照,在70 ℃下烘干后冷卻至室溫.各管中依次加入5%香草醛冰醋酸溶液0.2 mL,高氯酸0.8 mL,搖勻后置于70 ℃烘箱中加熱15 min,取出后迅速流水冷卻至室溫,再分別加入5 mL冰醋酸,搖勻,于450 nm處測定吸光度.以質(zhì)量為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)制備標(biāo)準(zhǔn)曲線.

    色譜法[912]:Shimpack VPODS C18柱 (250 mm×4.6 mm,5μm),ELSDLTⅡ檢測器,漂移管溫度40 ℃,載氣壓力350 kPa,流動相為甲醇和水(體積比V(甲醇)∶〖KG-2mm〗V(水)=9∶〖KG-2mm〗1),流速1.0 mL/min,進樣量10 μL,時間35 min.稱量劍麻皂苷元標(biāo)準(zhǔn)品,甲醇為溶劑制備1 g/L標(biāo)準(zhǔn)溶液定容于容量瓶.

    1.2.2菌種篩選 初篩:將標(biāo)記好的土壤樣品置于小花盆中,加入劍麻殘渣以及PDA營養(yǎng)液,陰涼避光處放置一個月,期間周期性補充水分和營養(yǎng)液.

    復(fù)篩:取初篩小花盆中的土壤樣品,在篩選培養(yǎng)基上劃線,由于皂苷有很強的抑菌性,一般的微生物種群難以在該培養(yǎng)基上生長,利用這種選擇性即可初步得到可用的菌種群,再對其進行液體發(fā)酵培養(yǎng)測定產(chǎn)物含量,獲得高活性菌種.

    1.2.3發(fā)酵培養(yǎng)方法 制備發(fā)酵液:取干燥劍麻殘渣打碎,加入自來水調(diào)至質(zhì)量濃度為75 g/L,加熱至沸騰2 h,4 500 r/min離心取上清液作為發(fā)酵液.發(fā)酵培養(yǎng):按1%接種量將菌液接種于發(fā)酵培養(yǎng)基(300 mL瓶裝液150 mL),于恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)30 ℃ 下250 r/min震蕩培養(yǎng).

    1.2.4發(fā)酵產(chǎn)物皂苷元檢測 發(fā)酵結(jié)束后瓶中的發(fā)酵液4 500 r/min離心,沉淀即含有皂苷元代謝物,烘干粉碎后用三氯甲烷(20 mL/g沉淀物)超聲震蕩提取60 min,提取液4 500 r/min離心取上清液旋蒸濃縮后烘干得粉末,蒸餾水洗3次,烘干作為待測樣品,進行HPLC檢測.另取一部分待測樣品溶于無水乙醇,常溫下進行結(jié)晶,得到的樣品晶體進行單晶衍射測定樣品結(jié)構(gòu).

    1.2.5發(fā)酵條件優(yōu)化

    2結(jié)果與討論

    2.1檢測方法

    按照1.2.1中所述方法繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),劍麻皂苷質(zhì)量為0.1~0.7 mg,曲線方程為y=1459 8x+0.030 7,R2為0.992 2,相關(guān)性較好,本實驗中對發(fā)酵液中皂苷質(zhì)量的測定均采用此法.

    2.2菌種篩選

    通過對200份土壤樣品的初篩和復(fù)篩,共得到有降解皂苷效果的菌株13株(表1),其中JM4、JM5、JM7和JM12這4種菌株效果比較明顯,最終選擇降解率最高的菌種JM7號作為目的菌種進行后續(xù)實驗.

    2.3發(fā)酵產(chǎn)物測定

    2.4發(fā)酵條件優(yōu)化

    2.4.1最適溫度 溫度對于劍麻皂苷降解率的影響如圖5(A),從圖中可以看出在30 ℃條件下發(fā)酵后劍麻皂苷降解率最高,達(dá)到52.6%,隨著溫度改變降解率降低,故最適溫度為30 ℃.

    2.4.2最適pH 如圖5(B)所示,發(fā)酵液pH為6時發(fā)酵后劍麻皂苷的降解率最高,為53%,pH值改變后降解率顯著下降,故確定發(fā)酵液最適pH為6.

    2.4.3最適發(fā)酵時間 不同發(fā)酵時間后JM7對劍麻皂苷的降解率如圖5(C),由圖可知,降解率隨發(fā)酵時間的增加而逐步增大,發(fā)酵5 d時降解率基本穩(wěn)定在53%,此后繼續(xù)發(fā)酵降解率基本無變化,增加發(fā)酵時間則無意義,故最優(yōu)發(fā)酵時間為5 d.

    2.4.4最適底物濃度 如圖5(D)所示,由于劍麻皂苷本身具有較強的抑菌性,故隨著皂苷質(zhì)量濃度的增大降解率明顯下降,皂苷為2 g/L時降解率最高,但考慮到降解皂苷的總量需要找到底物質(zhì)量濃度盡可能大的一組,通過計算得出底物質(zhì)3結(jié)論

    通過多次篩選得到了一種能夠降解劍麻皂苷生產(chǎn)劍麻皂苷元的高活性微生物,該菌種在偏酸性、低濃度發(fā)酵液中有著良好的降解能力,發(fā)酵5 d后降解率達(dá)到53%,使用HPLC方法和單晶衍射方法檢測其發(fā)酵產(chǎn)物,可以確定其發(fā)酵產(chǎn)物為劍麻皂苷元.對其進行了不同發(fā)酵溫度、發(fā)酵液pH、發(fā)酵時間和底物質(zhì)量濃度下發(fā)酵的初步研究,得到最優(yōu)發(fā)酵條件為:溫度30 ℃,pH 6,發(fā)酵時間5 d,底物質(zhì)量濃度6 g/L,該微生物的發(fā)現(xiàn)為工業(yè)化生產(chǎn)劍麻皂苷元提供了新的方法.

    參考文獻:

    [1]〖ZK(#〗李燕婧,周桂芬,韋善新,等.劍麻皂苷藥理作用的實驗研究[J].時珍國醫(yī)國藥, 2006,17(10):19581959.

    [2]賴克道,李燕婧,李茂.劍麻皂苷降血糖作用的研究[J].廣西科學(xué)院學(xué)報, 2010,26(1):5658.

    [3]吳立軍,婁紅祥,周晶.天然藥物化學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社, 2011.

    [4]計志忠.化學(xué)制藥工藝學(xué)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,1997.

    [5]DING Y, TIAN R H, YANG C R, et al. Two new steroidal saponins from dried femented residues of leafjuices of A gave sisalana form a dong No 1[J].Chem Pham Bull, 1993,41:557560.

    [6]宣偉東,陳海生,譚興起,等.HPLCELSD法測定刺蒺藜中甾體皂苷TTS12含量[J].第二軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報, 2005,26(2):222223.

    [7]周寅,張夢宇,白楊,等.劍麻皂苷的分離純化工藝研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2011,39(8):45404542.

    [8]馬超,丁怡,王偉,等.劍麻總皂苷制備工藝研究[J].中國中藥雜志, 2005,30(5):391393.

    2.4發(fā)酵條件優(yōu)化

    2.4.1最適溫度 溫度對于劍麻皂苷降解率的影響如圖5(A),從圖中可以看出在30 ℃條件下發(fā)酵后劍麻皂苷降解率最高,達(dá)到52.6%,隨著溫度改變降解率降低,故最適溫度為30 ℃.

    2.4.2最適pH 如圖5(B)所示,發(fā)酵液pH為6時發(fā)酵后劍麻皂苷的降解率最高,為53%,pH值改變后降解率顯著下降,故確定發(fā)酵液最適pH為6.

    2.4.3最適發(fā)酵時間 不同發(fā)酵時間后JM7對劍麻皂苷的降解率如圖5(C),由圖可知,降解率隨發(fā)酵時間的增加而逐步增大,發(fā)酵5 d時降解率基本穩(wěn)定在53%,此后繼續(xù)發(fā)酵降解率基本無變化,增加發(fā)酵時間則無意義,故最優(yōu)發(fā)酵時間為5 d.

    2.4.4最適底物濃度 如圖5(D)所示,由于劍麻皂苷本身具有較強的抑菌性,故隨著皂苷質(zhì)量濃度的增大降解率明顯下降,皂苷為2 g/L時降解率最高,但考慮到降解皂苷的總量需要找到底物質(zhì)量濃度盡可能大的一組,通過計算得出底物質(zhì)3結(jié)論

    通過多次篩選得到了一種能夠降解劍麻皂苷生產(chǎn)劍麻皂苷元的高活性微生物,該菌種在偏酸性、低濃度發(fā)酵液中有著良好的降解能力,發(fā)酵5 d后降解率達(dá)到53%,使用HPLC方法和單晶衍射方法檢測其發(fā)酵產(chǎn)物,可以確定其發(fā)酵產(chǎn)物為劍麻皂苷元.對其進行了不同發(fā)酵溫度、發(fā)酵液pH、發(fā)酵時間和底物質(zhì)量濃度下發(fā)酵的初步研究,得到最優(yōu)發(fā)酵條件為:溫度30 ℃,pH 6,發(fā)酵時間5 d,底物質(zhì)量濃度6 g/L,該微生物的發(fā)現(xiàn)為工業(yè)化生產(chǎn)劍麻皂苷元提供了新的方法.

    參考文獻:

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    [4]計志忠.化學(xué)制藥工藝學(xué)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,1997.

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    [6]宣偉東,陳海生,譚興起,等.HPLCELSD法測定刺蒺藜中甾體皂苷TTS12含量[J].第二軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報, 2005,26(2):222223.

    [7]周寅,張夢宇,白楊,等.劍麻皂苷的分離純化工藝研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2011,39(8):45404542.

    [8]馬超,丁怡,王偉,等.劍麻總皂苷制備工藝研究[J].中國中藥雜志, 2005,30(5):391393.

    2.4發(fā)酵條件優(yōu)化

    2.4.1最適溫度 溫度對于劍麻皂苷降解率的影響如圖5(A),從圖中可以看出在30 ℃條件下發(fā)酵后劍麻皂苷降解率最高,達(dá)到52.6%,隨著溫度改變降解率降低,故最適溫度為30 ℃.

    2.4.2最適pH 如圖5(B)所示,發(fā)酵液pH為6時發(fā)酵后劍麻皂苷的降解率最高,為53%,pH值改變后降解率顯著下降,故確定發(fā)酵液最適pH為6.

    2.4.3最適發(fā)酵時間 不同發(fā)酵時間后JM7對劍麻皂苷的降解率如圖5(C),由圖可知,降解率隨發(fā)酵時間的增加而逐步增大,發(fā)酵5 d時降解率基本穩(wěn)定在53%,此后繼續(xù)發(fā)酵降解率基本無變化,增加發(fā)酵時間則無意義,故最優(yōu)發(fā)酵時間為5 d.

    2.4.4最適底物濃度 如圖5(D)所示,由于劍麻皂苷本身具有較強的抑菌性,故隨著皂苷質(zhì)量濃度的增大降解率明顯下降,皂苷為2 g/L時降解率最高,但考慮到降解皂苷的總量需要找到底物質(zhì)量濃度盡可能大的一組,通過計算得出底物質(zhì)3結(jié)論

    通過多次篩選得到了一種能夠降解劍麻皂苷生產(chǎn)劍麻皂苷元的高活性微生物,該菌種在偏酸性、低濃度發(fā)酵液中有著良好的降解能力,發(fā)酵5 d后降解率達(dá)到53%,使用HPLC方法和單晶衍射方法檢測其發(fā)酵產(chǎn)物,可以確定其發(fā)酵產(chǎn)物為劍麻皂苷元.對其進行了不同發(fā)酵溫度、發(fā)酵液pH、發(fā)酵時間和底物質(zhì)量濃度下發(fā)酵的初步研究,得到最優(yōu)發(fā)酵條件為:溫度30 ℃,pH 6,發(fā)酵時間5 d,底物質(zhì)量濃度6 g/L,該微生物的發(fā)現(xiàn)為工業(yè)化生產(chǎn)劍麻皂苷元提供了新的方法.

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    [2]賴克道,李燕婧,李茂.劍麻皂苷降血糖作用的研究[J].廣西科學(xué)院學(xué)報, 2010,26(1):5658.

    [3]吳立軍,婁紅祥,周晶.天然藥物化學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社, 2011.

    [4]計志忠.化學(xué)制藥工藝學(xué)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,1997.

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    [6]宣偉東,陳海生,譚興起,等.HPLCELSD法測定刺蒺藜中甾體皂苷TTS12含量[J].第二軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報, 2005,26(2):222223.

    [7]周寅,張夢宇,白楊,等.劍麻皂苷的分離純化工藝研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2011,39(8):45404542.

    [8]馬超,丁怡,王偉,等.劍麻總皂苷制備工藝研究[J].中國中藥雜志, 2005,30(5):391393.

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