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      運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練抑制了TGFβ通路并緩解了D-半乳糖誘導(dǎo)衰老大鼠的肌肉流失

      2014-07-19 11:52:46王今越王小虹馮維斗
      體育科學(xué) 2014年10期
      關(guān)鍵詞:腓腸肌磷酸化通路

      王今越,王小虹,馮維斗

      運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練抑制了TGFβ通路并緩解了D-半乳糖誘導(dǎo)衰老大鼠的肌肉流失

      王今越1,王小虹2,馮維斗3

      目的:研究TGFβ(經(jīng)典和非經(jīng)典)通路在運(yùn)動(dòng)緩解衰老性肌肉流失(少肌癥)中的作用。方法:24只雄性Wistar大鼠分為3組,C組(青年安靜組)、S組(40d D-半乳糖注射致衰老組)、E組(40d D-半乳糖注射+6 wk跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)的衰老運(yùn)動(dòng)組)。檢測(cè)各組大鼠體重、腓腸肌重量、TGFβ(經(jīng)典與非經(jīng)典)通路因子——TGFβ1、MSTN、Phospho-smad2/3、Phospho-MAPKs(p38、JNK1/2 、ERK1/2) 及通路效應(yīng)因子——p21、Pax7(WB法)、MyoD mRNA、MyoG mRNA(RT-PCR法)。結(jié)果:與C組相比,S組腓腸肌比重(腓腸肌重量/體重)降低,TGFβ1、MSTN、Phospho-smad2/3、Phospho-MAPKs (Phospho-p38、Phospho-JNK1/2、Phospho-ERK1/2)、p21、MyoD mRNA、MyoG mRNA升高,Pax7降低;與S組相比,E組腓腸肌比重升高,TGFβ1、MSTN、Phospho-smad2/3、Phospho-MAPKs (Phospho-JNK1/2、Phospho-ERK1/2)降低,p21、Pax7、MyoD mRNA、MyoG mRNA升高。結(jié)論:運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練抑制了TGFβ經(jīng)典及非經(jīng)典通路并緩解了衰老肌肉的流失,Pax7、p21、MyoD、MyoG可能作為T(mén)GFβ通路的效應(yīng)器介導(dǎo)了該過(guò)程。

      TGFβ通路;少肌癥;D-半乳糖;運(yùn)動(dòng);鼠;動(dòng)物實(shí)驗(yàn)

      衰老性肌肉流失(少肌癥)是一種普遍存在、以肌肉質(zhì)量和力量退行性損失為特征的疾病,它限制人體活動(dòng)能力,間接加重了多種老年常見(jiàn)癥狀(II型糖尿病、動(dòng)脈硬化、骨質(zhì)疏松),損害了老年人的生活質(zhì)量,提高了健康成本和社會(huì)負(fù)擔(dān)。規(guī)律的運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練可改善肌肉的結(jié)構(gòu)和功能,對(duì)于預(yù)防和緩解少肌癥作用明顯。盡管相關(guān)研究很多,然而,少肌癥的運(yùn)動(dòng)性干預(yù)乃至少肌癥發(fā)生本身的分子機(jī)制卻仍不完全明晰。

      TGFβ信號(hào)在調(diào)控肌肉質(zhì)量及功能方面起重要作用,它抑制衛(wèi)星細(xì)胞激活、生肌分化、肌母細(xì)胞融合、肌肉特異性蛋白表達(dá),促進(jìn)膠原蛋白合成、肌母細(xì)胞纖維化、疤痕生成[40]。上升的報(bào)道顯示,TGFβ信號(hào)激活與肌肉損傷、肌肉營(yíng)養(yǎng)不良、胰島素抵抗誘發(fā)的肌肉萎縮和肌肉纖維化均有密切關(guān)聯(lián)[11]。近來(lái),有研究報(bào)道,肌肉TGFβ信號(hào)增強(qiáng)損害了肌肉再生是少肌癥發(fā)生的重要原因[12,41]。此外,活體研究顯示,多種組織(心肌[25]、脾[46]、動(dòng)脈血管[42]、肺[38])的TGFβ信號(hào)對(duì)運(yùn)動(dòng)敏感。TGFβ信號(hào)在少肌癥運(yùn)動(dòng)性干預(yù)中的作用值得關(guān)注。

      機(jī)制上,TGFβ信號(hào)始于TGFβ超家族與細(xì)胞膜表面TYPE I和TYPE II受體的結(jié)合,繼而引起TYPE I受體交互磷酸化,再磷酸化下游效應(yīng)器[10]。經(jīng)典TGFβ信號(hào)(smad依賴(lài)性)中,TYPE I受體交互磷酸化后磷酸化smad2/3,再與smad4結(jié)合,然后轉(zhuǎn)位進(jìn)入胞核,發(fā)揮轉(zhuǎn)錄因子作用[10]。非經(jīng)典TGFβ信號(hào)(smad非依賴(lài)性)主要是MAPKs依賴(lài)性,即TYPEI受體磷酸化后磷酸化MAPKs,MAPKs繼而調(diào)節(jié)下游因子的活動(dòng)[10]。已知的TGFβ超家族成員包括TGFβ、MSTN、活化素、抑制素、繆勒氏管抑制質(zhì)和骨形成蛋白,其中, TGFβ、MSTN對(duì)骨骼肌質(zhì)量和功能調(diào)節(jié)作用尤為重要[43]。

      Pax7、p21、MyoD、MyoG是肌肉發(fā)生進(jìn)程及肌肉質(zhì)量的關(guān)鍵調(diào)控劑[45],亦為T(mén)GFβ信號(hào)的效應(yīng)器——TGFβ經(jīng)典

      及非經(jīng)典信號(hào)均抑制Pax7、p21表達(dá)[3,4,43],前者亦抑制MyoD、MyoG的基因表達(dá)[43]。

      本研究檢測(cè)了衰老(D-半乳糖誘導(dǎo))和運(yùn)動(dòng)對(duì)于TGFβ經(jīng)典與非經(jīng)典信號(hào)關(guān)鍵因子及上述效應(yīng)因子的影響,探究TGFβ信號(hào)相關(guān)的少肌癥發(fā)生和少肌癥的運(yùn)動(dòng)性緩解中的分子事件,為完善運(yùn)動(dòng)性肌肉重塑信號(hào)網(wǎng)絡(luò)及少肌癥的運(yùn)動(dòng)性干預(yù)提供視角和靶點(diǎn)。

      1 材料與方法

      1.1 動(dòng)物分組及運(yùn)動(dòng)方案

      購(gòu)入24只清潔級(jí)雄性10周、230~270 g Wistar大鼠(許可證:SCXK 吉2009-0004)。適應(yīng)性訓(xùn)練3天后隨機(jī)分組:C組6只、S、E組各9只,次日(周一)執(zhí)行表1方案。各組大鼠自由進(jìn)食,國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)嚙齒類(lèi)動(dòng)物常規(guī)飼料喂養(yǎng)。動(dòng)物飼養(yǎng)環(huán)境溫度23℃,濕度40%~60%。

      表 1 本研究動(dòng)物分組方案一覽表

      1.2 取材

      大鼠以斷頸椎方式處死(處死前2 h禁食),稱(chēng)重后取右后腿,用4℃預(yù)冷的生理鹽水清洗,去處血污,濾紙吸干水分,稱(chēng)重后切分成數(shù)段,錫箔紙包裹,做好標(biāo)簽,浸入液氮30 min后放入-80℃超低溫冰箱冷凍待測(cè)。意外死亡或無(wú)法完成運(yùn)動(dòng)方案而淘汰大鼠S組1只、E組2只。

      1.3 主要試劑及試劑盒

      D-半乳糖,Sigma公司;TGFβ1抗體(兔來(lái)源)、MSTN抗體(兔來(lái)源)、Pax7 抗體(小鼠來(lái)源)、p21抗體(小鼠來(lái)源),Santa Cruz公司;Phospho-Smad2 (Ser465/467)/Smad3 (Ser423/425)抗體(兔來(lái)源)、Phospho-p38 MAPK (Thr180/Tyr182)抗體 (兔來(lái)源)、Phospho- ERK (Thr202/Tyr204)抗體(兔來(lái)源)、Phospho- JNK (Thr183/Tyr185)抗體(小鼠來(lái)源)、tubulin抗體(兔來(lái)源),Cell Signal;Trizol總RNA提取試劑 :Tiangen;Biort RT-PCR assasy kit:博日生物公司;抗兔、抗小鼠二抗、Trizol總RNA提取kit,碧云天。

      1.4 方法

      1.4.1 腓腸肌比重

      腓腸肌比重=大鼠右后腿腓腸肌濕重/處死時(shí)的全身濕重×100%。

      1.4.2 蛋白測(cè)定

      1.細(xì)胞蛋白提取:取50~100 mg腓腸肌放入小燒杯中,加入1 ml提前預(yù)冷的勻漿介質(zhì)(210 mM甘露醇,70 mM蔗糖,5 mM Tris-HCl,1 mM EDTA,0.1 mM PMSF,0.5 mM DTT,10 mM NaF)。剪碎肌組織,去除結(jié)締組織、脂肪等。電動(dòng)勻漿,轉(zhuǎn)速1 500~1 800 rpm,使組織勻漿化。勻漿液倒入離心管,1 400 g 4℃離心10 min;吸取上清即蛋白樣品,BCA法定量。

      2.Western Blotting測(cè)定上述蛋白含量。一般步驟略。聚丙烯酰胺凝膠濃度12%;抗體稀釋[TGFβ1 1∶1 200;MSTN 1∶1 000;P-Smad2(Ser465/467)/Smad3 (Ser423/425)1∶900;P-p38 MAPK(Thr180/Tyr182)1∶1 500;P-

      Erk1/2(Thr202/Tyr204)1∶1 200;P-SAPK/JNK(Thr183/Tyr185)1∶1 000;P-p21 1∶900;Pax7 1∶1 200;tubulin 1∶2 000];蛋白表達(dá)值為條帶的灰度值,以?xún)?nèi)參tubulin校正。

      1.4.3 mRNA測(cè)定

      按照Trizol Reagent液說(shuō)明書(shū)提取總RNA,總RNA的質(zhì)量和純度檢測(cè)采用變性瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光檢測(cè)OD260/OD280比值,依據(jù)質(zhì)量和純度選取符合RT-PCR要求的RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)。按照Biort RT-PCR kit說(shuō)明書(shū)進(jìn)行cDNA的逆轉(zhuǎn)錄,總RNA經(jīng)RT反應(yīng)后進(jìn)行PCR擴(kuò)增,采用25 μL體系。PCR循環(huán)條件:1)95℃ 5 min;2)95℃ 30 s;3)(MyoD:60℃;MyoG:62℃)40 s;4)72℃ 1 min;5)回至第2步,25個(gè)循環(huán);6)72℃ 10 min;7)保持在4℃。 PCR產(chǎn)物加樣于2%瓊脂糖凝膠、電泳(上樣量12 μl,6×DNA loading buffer 2 μl,電壓150 v,電泳35 min)。mRNA含量為條帶的OD值,以?xún)?nèi)參GAPDH校正。引物(5′-3′)如下:1)MyoD F:CCCGACGCGTCTCTCTGCTCCTT R:CGCCTGGCGCTGGGTGCA(178 kp);2)MyoG F:GAGCGCGATCTCCCGTCAAGAGG R:CTGGCTTGTGCGAGCCCAGG(688 kp);3)GAPDH F:ACAGCAACAGGGTGGTGGAC R:TTTGAGGGTGCAGCGAACTT(252 kp)

      1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

      則SNK法進(jìn)行事后檢驗(yàn)。統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性水平定為0.05。

      2 結(jié)果

      2.1 體重、腓腸肌比重

      S組大鼠與C組相比較,體重、腓腸肌比重均下降;E組大鼠與S組相比較兩指標(biāo)均升高。此外,E組與C組比較無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,僅在圖表標(biāo)注,在此及下文中不再贅述(圖1)。

      圖 1 本研究(D-半乳糖誘導(dǎo))衰老、運(yùn)動(dòng)對(duì)體重及腓腸肌比重的影響

      2.2 TGFβ通路相關(guān)因子

      與C組相比,S組大鼠TGFβ1、MSTN、Psmad2/3、Pp38、PJNK2/1、PERK1/2、p21、MyoD mRNA、MyoG mRNA升高,Pax7降低;與S組相比,E組TGFβ1、MSTN、Psmad2/3、 PJNK2/1、PERK1/2降低,Pp38不變,p21、Pax7、MyoD mRNA、MyoG mRNA升高(圖2)。

      圖 2 本研究(D-半乳糖誘導(dǎo))衰老、運(yùn)動(dòng)對(duì)TGFβ通路相關(guān)因子的影響示意圖

      3 討論

      3.1 衰老、運(yùn)動(dòng)對(duì)腓腸肌比重的影響

      以往研究顯示,規(guī)律性運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練對(duì)阻止衰老肌肉質(zhì)量流失有明顯效果[16,17,24,26,36,37], 本研究表明,腓腸肌比重(腓腸肌重量/體重)為衰老組下降(vs.青年組,下同),運(yùn)動(dòng)組上升(vs.衰老組,下同)。提示,衰老大鼠的肌肉率下降,而運(yùn)動(dòng)抑制了肌肉流失,結(jié)果符合少肌癥發(fā)生及少肌癥運(yùn)動(dòng)性緩解的研究目的。

      3.2 衰老、運(yùn)動(dòng)對(duì) TGFβ通路因子的影響

      TGF-β是廣泛表達(dá)的、TGFβ家族最典型的成員,以二聚物復(fù)合體形式合成,在某些條件下(如損傷修復(fù)和重塑)裂解激活。在哺乳動(dòng)物成體骨骼肌中,存在TGF-β1、2、3三個(gè)亞型,其中,對(duì)TGF-β1的研究最廣泛[9]。TGF-β在成體肌肉的再生和衰老過(guò)程中抑制衛(wèi)星細(xì)胞增殖、生肌分化、肌母細(xì)胞融合、促進(jìn)纖維化,誘發(fā)肌肉質(zhì)量和功能的缺失[22]。但也有研究報(bào)道,低劑量的TGF-β1能促進(jìn)原代肌母細(xì)胞的增殖[12]。骨骼肌中的TGF-β的主要來(lái)源并非是肌細(xì)胞,而是免疫細(xì)胞(巨噬細(xì)胞、淋巴細(xì)胞),在炎癥反應(yīng)過(guò)程中,TGF-β在炎癥介質(zhì)(白介素、NF-κB等)及ROS的作用下上調(diào)、激活,繼而調(diào)節(jié)組織損傷愈合及組織纖維化[10]。衰老本身就是慢性的炎癥加劇、ROS積累的過(guò)程,而規(guī)律性運(yùn)動(dòng)能夠抑制慢性炎癥及ROS,故運(yùn)動(dòng)對(duì)炎癥和ROS的抑制作用可以解釋本研究顯示的運(yùn)動(dòng)對(duì)衰老誘導(dǎo)TGF-β1升高的抑制。作為肌肉生長(zhǎng)抑素,TGF-β1的改變也能夠解釋衰老肌質(zhì)量流失的運(yùn)動(dòng)性抑制及衰老肌肉流失本身。本結(jié)果與以往動(dòng)物研究顯示的長(zhǎng)期運(yùn)動(dòng)抑制衰老動(dòng)物的心肌[25]、脾[46]、動(dòng)脈血管[42]、肺[38]的TGF-β1的上調(diào)結(jié)果一致,也提示,這些組織中TGF-β1有共同的調(diào)節(jié)機(jī)制,可能都與炎癥及ROS相關(guān)。

      TGF-β家族另一個(gè)代表成員MSTN同樣是典型肌肉抑素,MSTN純合子基因刪除的小鼠肌肉是普通小鼠2~3倍,其肌纖維數(shù)量和體積均上調(diào)[32],肌纖維附著的衛(wèi)星細(xì)胞數(shù)量和活性提高[29]。運(yùn)動(dòng)領(lǐng)域的人體研究顯示,消瘦的老人[18,24]、胰島素抵抗患者[18]、慢性心力衰竭患者[28]肌肉的MSTN[18,28,31]及/或其mRNA[24,28,31]的升高趨勢(shì)在長(zhǎng)期運(yùn)動(dòng)后得到抑制,且消瘦老人肌肉橫截面與力量[24]提高,胰島素抵抗患者[18]與慢性心律衰竭患者[28]的癥狀改善。最近,Dalbo等[13]報(bào)道,力量訓(xùn)練降低了老年人肌肉MSTN mRNA,但對(duì)青年人無(wú)效,該研究認(rèn)為,運(yùn)動(dòng)對(duì)MSTN表達(dá)的抑制僅發(fā)生于MSTN高表達(dá)者(肌肉快速流失的老人或病患),本結(jié)果與以往研究一致——運(yùn)動(dòng)抑制了MSTN的上調(diào),提示,MSTN參與了少肌癥的運(yùn)動(dòng)性抑制。MSTN對(duì)肌肉抑制的機(jī)制與TGF-β基本一致[22],但MSTN是否在衛(wèi)星細(xì)胞增殖和自我更新環(huán)節(jié)起抑制作用還存在相當(dāng)?shù)臓?zhēng)議[22,29],有報(bào)道,MSTN敲除的小鼠衛(wèi)星細(xì)胞數(shù)量和活性未受影響, 而且,MSTN也未能抑制原代成體肌母細(xì)胞的增殖[7]。如果確實(shí)如此,那么,MSTN的肌肉抑素作用可能主要源于肌核特異性基因表達(dá)或者肌母細(xì)胞分化的抑制,對(duì)此尚無(wú)相關(guān)調(diào)查,有待查證。此外,MSTN還能通過(guò)促進(jìn)成纖維細(xì)胞增殖、激活以及誘導(dǎo)促炎癥因子和巨噬細(xì)胞遷移[22],誘發(fā)肌肉纖維化及炎癥級(jí)聯(lián),導(dǎo)致肌細(xì)胞的變性、凋亡、壞死,從而負(fù)面影響肌肉質(zhì)量和功能。

      本研究發(fā)現(xiàn),TGF-β經(jīng)典通路中,TGFβ、MSTN的效應(yīng)器smad2/3的磷酸化表達(dá)上調(diào)也被運(yùn)動(dòng)所抑制。綜上提示,TGFβ經(jīng)典通路(TGFβ1、 MSTN/smad)參與少肌癥運(yùn)動(dòng)性抑制及少肌癥發(fā)生本身。

      MAPK是TGFβ非經(jīng)典通路的最重要的組件,廣泛的參與了骨骼肌各種適應(yīng)性改變。其中,p38、JNK參與細(xì)胞炎癥、凋亡、生長(zhǎng)、分化,而ERK參與了生長(zhǎng)、分化、發(fā)育[10]。MAPK暫時(shí)性激活對(duì)于肌肉發(fā)育、肌肉量保持有積極作用,能夠促進(jìn)肌母細(xì)胞增殖或分化,促進(jìn)肌肉特異性基因表達(dá)[21],但持續(xù)激活對(duì)肌肉呈負(fù)面作用——ERK抑制肌肉特異性基因表達(dá)和肌母細(xì)胞分化[21],p38和JNK均會(huì)通過(guò)激活泛素蛋白酶體通路及促凋亡因子的表達(dá)加速蛋白質(zhì)的分解[27]。本研究顯示,與TGFβ1、MSTN變化一致,衰老組MAPKs激活(Pp38、PJNK、PERK升高),而運(yùn)動(dòng)后MAPKs激活被抑制(PJNK、PERK下調(diào))。提示,TGFβ非經(jīng)典通路(MAPK依賴(lài)性)也參與了少肌癥發(fā)生及其運(yùn)動(dòng)性抑制。本結(jié)果與以往Williamson等(2003)、Dasgupta等(2009)的報(bào)道“衰老動(dòng)物肌肉p38、JNK1/2、ERK1/2磷酸化水平上調(diào)”一致。但也有不同報(bào)道,Rahnert等(2011)報(bào)道,衰老大鼠肱二頭肌ERK磷酸化水平下降,JNK與p38磷酸化水平不變。矛盾的結(jié)果可能與研究選用的大鼠年齡差異有關(guān),多數(shù)研究選用衰老大鼠為22~24月齡,而Rahnert等(2011)的實(shí)驗(yàn)對(duì)象為26月齡大鼠,顯然,Rahnert實(shí)驗(yàn)動(dòng)物衰老程度更高,可能衰老的后期與晚期的MAPK調(diào)控機(jī)制有所不同,對(duì)此有待查證。最近,Olesen等(2013)報(bào)道,衰老小鼠肌肉p38、JNK磷酸化水平并未改變,但該研究所用為16月齡小鼠,顯然,其研究對(duì)象過(guò)于年輕健康,不夠衰老。需要指出,本研究測(cè)試采用是磷酸化蛋白水平(目標(biāo)磷酸化蛋白/常規(guī)內(nèi)參),而上述Williamson等(2003)、Dasgupta等(2009)、Rahnert等(2011)和Olesen等(2013)的測(cè)試均為蛋白磷酸化水平(目標(biāo)磷酸化蛋白/目標(biāo)總蛋白),前者代表磷酸化蛋白含量,后者代表蛋白磷酸化程度,意義和衡量方法雖然有所差異,但均反映MAPK激活的狀況,并在研究中廣泛應(yīng)用[20,27],且MAPKs總蛋白表達(dá)變化遠(yuǎn)不如磷酸化修飾敏感,對(duì)其功能影響很有限[20],故總體上兩個(gè)指標(biāo)波動(dòng)是一致的,本研究以磷酸化蛋白含量與文獻(xiàn)中蛋白磷酸化水平進(jìn)行波動(dòng)趨勢(shì)比較并無(wú)不妥。

      TGFβ、smad、MAPKs的變化(運(yùn)動(dòng)后TGFβ1、 MSTN、P-smad、P-MAPKs下調(diào))表明,運(yùn)動(dòng)對(duì)衰老骨骼肌TGFβ經(jīng)典(TGFβ1、 MSTN/smad)及非經(jīng)典信號(hào)(TGFβ1、 MSTN/MAPKs)均有抑制作用,這可以至少部分解釋少肌癥的運(yùn)動(dòng)性抑制效用。

      3.3 衰老、運(yùn)動(dòng)對(duì)TGFβ信號(hào)下游生肌因子的作用

      成體肌肉發(fā)生經(jīng)歷衛(wèi)星細(xì)胞(增殖、分化)→肌母細(xì)胞(分化)→單核前體肌細(xì)胞(分化、融合)→多核肌纖維的多個(gè)階段,MyoD、MyoG、Pax7、p21則為不同階段重要驅(qū)動(dòng)者和分子標(biāo)志,MyoD在細(xì)胞循環(huán)中的肌母細(xì)胞表達(dá),MyoG在單核前體肌細(xì)胞分化及融入肌纖維過(guò)程中表達(dá),Pax7在衛(wèi)星細(xì)胞激活、增殖過(guò)程中表達(dá),p21則在肌母細(xì)胞退出細(xì)胞循環(huán)過(guò)程表達(dá)[11]。它們均為T(mén)GFβ信號(hào)干預(yù)肌肉質(zhì)量的重要效應(yīng)器——經(jīng)典TGFβ信號(hào)抑制MyoD、MyoG mRNA含量[3,4,11],TGFβ經(jīng)典和非經(jīng)典通路均能抑制p21、Pax7表達(dá)[3,4,11,19]。

      涉及MyoD、MyoG指標(biāo)的研究報(bào)道較多,但結(jié)果很不一致,Alway等(2002)報(bào)道,衰老大鼠肌肉MyoD、MyoG mRNA降低,而Raue等(2006)、Kim等(2005)的自然衰老動(dòng)物及一項(xiàng)D-半乳糖誘導(dǎo)衰老大鼠的研究[1]結(jié)果正好相反。在運(yùn)動(dòng)領(lǐng)域研究中,McKay等(2008)報(bào)道,急性抗阻運(yùn)動(dòng)后,人體股四頭肌MyoD、MyoG mRNA上調(diào),Drummond等(2010)報(bào)道,急性抗阻運(yùn)動(dòng)后,大鼠紅股四頭肌MyoD、MyoG mRNA均上升,而白股四頭肌則未變;Alway等(2002)報(bào)道,14天的肌肉負(fù)重提高成年大鼠MyoD和MyoG mRNA,而對(duì)衰老大鼠(33月齡)無(wú)效;Siu等(2004)報(bào)道,8周耐力跑臺(tái)運(yùn)動(dòng)后,大鼠比目魚(yú)肌的MyoG mRNA、蛋白水平均升高,MyoD mRNA、蛋白則不變。上述研究表明,運(yùn)動(dòng)對(duì)MyoD、MyoG的誘導(dǎo)受肌肉快慢類(lèi)型、衰老程度影響。本研究顯示,衰老組MyoD、MyoG mRNA上調(diào),運(yùn)動(dòng)后則進(jìn)一步上調(diào),提示,衰老進(jìn)程中MyoD、MyoG的作用是抵抗而非促進(jìn)少肌癥的發(fā)生,且運(yùn)動(dòng)能夠進(jìn)一步強(qiáng)化MyoD、MyoG的作用。本研究發(fā)現(xiàn),與MyoD、MyoG變化一致——衰老組p21升高,運(yùn)動(dòng)組進(jìn)一步上升,但Pax7則在衰老組下降,運(yùn)動(dòng)組Pax7同樣上調(diào),提示,衰老肌中,p21拮抗而Pax7促進(jìn)肌肉流失,而運(yùn)動(dòng)后,p21及Pax7的升高明顯均對(duì)肌肉流失起到抑制作用。從上述4個(gè)生肌因子與TGFβ通路的變化而言,顯然,衰老條件下,增強(qiáng)的TGFβ信號(hào)通路不可能解釋Pax7外3個(gè)因子變化(MyoD、MyoG mRNA、p21均升高),三者一定另外有其他主導(dǎo)因素,而運(yùn)動(dòng)誘導(dǎo)下,4個(gè)因子的改變(MyoD、MyoG mRNA、p21、Pax7均升高)至少部分應(yīng)與TGFβ通路的抑制相關(guān)。

      4 總結(jié)

      TGFβ經(jīng)典和非經(jīng)典信號(hào)的增強(qiáng)是誘發(fā)少肌癥因素之一,Pax7可能作為T(mén)GFβ信號(hào)效應(yīng)器介導(dǎo)了該過(guò)程。運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練通過(guò)抑制TGFβ經(jīng)典和非經(jīng)典信號(hào)緩解少肌癥, p21、Pax7、MyoD、MyoG可能在TGFβ信號(hào)誘導(dǎo)下介導(dǎo)了該過(guò)程。條件所限,上述結(jié)論仍需在自然衰老動(dòng)物并通過(guò)信號(hào)阻斷劑、激活劑等手段進(jìn)一步確認(rèn)。

      [1]王今越,王小虹,馮維斗.IRS1,Akt,FOXO1 在少肌癥發(fā)生及其運(yùn)動(dòng)性緩解中的作用[J].成都體育學(xué)院學(xué)報(bào),2012,38(7):86-91.[2]徐智,吳國(guó)明,錢(qián)桂生,等.大鼠衰老模型的初步建立[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2003,25(4):312-315.

      [3]ACHARJEE S,CHUNG T K,GOPINADHAN S,etal.Sharp-1 regulates TGF-beta signaling and skeletal muscle regeneration[J].J Cell Sci,2014,127(3):599-608.

      [4]ACUNA M J,PESSINA P,OLGUIN H,etal.Restoration of muscle strength in dystrophic muscle by angiotensin-1-7 through inhibition of TGF-beta signalling[J].Hum Mol Genet,2014,23(5):1237-1249.

      [5]ALWAY S E,DEGENS H,LOWE D A,etal.Increased myogenic repressor Id mRNA and protein levels in hindlimb muscles of aged rats[J].Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2002,282(2):411-422.

      [6]ALWAY S E,DEGENS H,KRISHNAMURTHY G,etal.Potential role for Id myogenic repressors in apoptosis and attenuation of hypertrophy in muscles of aged rats[J].Am J Physiol Cell Physiol,2002,283(1):66-76.

      [7]AMTHOR H,OTTO A,VULIN A,etal.Muscle hypertrophy driven by myostatin blockade does not require stem/precursor-cell activity[J].Proceedings National Acad Sci,2009,106(18):7479-7484.

      [8]BEDFORD T G,TIPTON C M,WILSON N C,etal.Maximum oxygen consumption of rats and its changes with various experimental procedures[J].J Applied Physiol,1979,47(6):1278-1283.

      [9]BEGGS M L,NAGARAJAN R,TAYLOR-JONES J M,etal.Alterations in the TGFbeta signaling pathway in myogenic progenitors with age[J].Aging Cell,2004,3(6):353-361.

      [10]BURKS T N,AND COHN R D.Role of TGF-beta signaling in inherited and acquired myopathies[J].Skelet Muscle,2011,1(1):19-28.

      [11]BURKS T N,ANDRES-MATEOS E,MARX R,etal.Losartan restores skeletal muscle remodeling and protects against disuse atrophy in sarcopenia[J].Sci Transl Med,2011,3(82):12-37.

      [12]CARLSON M E,CONBOY M J,HSU M,etal.Relative roles of TGF-beta1 and Wnt in the systemic regulation and aging of satellite cell responses[J].Aging Cell,2009,8(6):676-689.

      [13]DALBO V J,ROBERTS M D,HASSELL S,etal.Effects of pre-exercise feeding on serum hormone concentrations and biomarkers of myostatin and ubiquitin proteasome pathway activity[J].Eur J Nutr,2013,52(2):477-487.

      [14]DASGUPTA J,KAR S,VAN REMMEN H,etal.Age-dependent increases in interstitial collagenase and MAP Kinase levels are exacerbated by superoxide dismutase deficiencies[J].Exp Gerontol,2009,44(8):503-510.

      [15]DRUMMOND M J,CONLEE R K,MACK G W,etal.Myogenic regulatory factor response to resistance exercise volume in skeletal muscle[J].Eur J Appl Physiol,2010,108(4):771-778.

      [16]EVANS W J.Effects of exercise on senescent muscle[J].Clin Orthop Relat Res,2002,40(3):211-220.

      [17]EVANS W J,CAMPBELL W W.Sarcopenia and age-related changes in body composition and functional capacity[J].J Nutr,1993,123(2):465-468.

      [18]HITTEL D S,AXELSON M,SARNA N,etal.Myostatin decreases with aerobic exercise and associates with insulin resistance[J].Med Sci Sports Exe,2010,42(11):2023-2029.

      [19]HULMI J J,KOVANEN V,LISKO I,etal.The effects of whey protein on myostatin and cell cycle-related gene expression responses to a single heavy resistance exercise bout in trained older men[J].Eur J Appl Physiol,2008,102(2):205-213.

      [20]ISHII N.Progress of research and development of MAPK pathway inhibitors[J].Nihon Yakurigaku Zasshi,2013,141(1):15-21.

      [21]JONES N C,FEDOROV Y V,ROSENTHAL R S,etal.ERK1/2 is required for myoblast proliferation but is dispensable for muscle gene expression and cell fusion[J].J Cell Physiol 2001,186(1):104-115.

      [22]KEMALADEWI D U,AT HOEN P,TEN DIJKE P,etal.TGF-β signaling in Duchenne muscular dystrophy[J].Future Neurology,2012,7(2):209-224.

      [23]KIM J S,KOSEK D J,PETRELLA J K,etal.Resting and load-induced levels of myogenic gene transcripts differ between older adults with demonstrable sarcopenia and young men and women[J].J Appl Physiol (1985),2005,99(6):2149-2158.

      [24]KONOPKA A R,DOUGLASS M D,KAMINSKY L A,etal.Molecular adaptations to aerobic exercise training in skeletal muscle of older women[J].J Gerontol A Biol Sci Med Sci,2010,65(11):1201-1207.

      [25]KWAK H B,KIM J H,JOSHI K,etal.Exercise training reduces fibrosis and matrix metalloproteinase dysregulation in the aging rat heart[J].FASEB J,2011,25(3):1106-1117.

      [26]LACOUR J R,KOSTKA T,BONNEFOY M.Physical activity to delay the effects of aging on mobility[J].Presse Med,2002,31(25):1185-1192.

      [27]LEMIRE B B,DEBIGARE R,DUBE A,etal.MAPK signaling in the quadriceps of patients with chronic obstructive pulmonary disease[J].J Appl Physiol,2012,113(1):159-166.

      [28]LENK K,ERBS S,HOLLRIEGEL R,etal.Exercise training leads to a reduction of elevated myostatin levels in patients with chronic heart failure[J].Eur J Prev Cardiol,2012,19(3):404-411.

      [29]MCCROSKERY S,THOMAS M,MAXWELL L,etal.Myostatin negatively regulates satellite cell activation and self-renewal[J].J Cell Biol,2003,162(6):1135-1147.

      [30]MCKAY B R,O’REILLY C E,PHILLIPS S M,etal.Co-expression of IGF-1 family members with myogenic regulatory factors following acute damaging muscle-lengthening contractions in humans[J].J Physiol,2008,586(22):5549-5560.

      [31]MCKAY B R,OGBORN D I,BELLAMY L M,etal.Myostatin is associated with age-related human muscle stem cell dysfunction[J].FASEB J,2012,26(6):2509-2521.

      [32]MCPHERRON A C,LAWLER A M,LEE S J.Regulation of skeletal muscle mass in mice by a new TGF-beta superfamily member[J].Nature,1997,387(6628):83-90.

      [33]OLESEN J,RINGHOLM S,NIELSEN M M,etal.Role of PGC-1alpha in exercise training- and resveratrol-induced prevention of age-associated inflammation[J].Exp Gerontol,2013,48(11):1274-1284.

      [34]RAHNERT J A,LUO Q,BALOG E M,etal.Changes in growth-related kinases in head,neck and limb muscles with age[J].Exp Gerontol,2011,46(4):282-291.

      [35]RAUE U,SLIVKA D,JEMIOLO B,etal.Myogenic gene expression at rest and after a bout of resistance exercise in young (18-30 yr) and old (80-89 yr) women[J].J Appl Physiol,2006,101(1):53-59.

      [36]ROBINSON M M,TURNER S M,HELLERSTEIN M K,etal.Long-term synthesis rates of skeletal muscle DNA and protein are higher during aerobic training in older humans than in sedentary young subjects but are not altered by protein supplementation[J].FASEB J,2011,25(9):3240-3249.

      [37]ROGERS M A,EVANS W J.Changes in skeletal muscle with aging:effects of exercise training[J].Exe Sport Sci Rev,1993,21(65):90-102.

      [38]SILVA A C,VIEIRA R P,NISIYAMA M,etal.Exercise inhibits allergic lung inflammation[J].Int J Sports Med,2012,33(5):402-409.

      [39]SIU P M,DONLEY D A,BRYNER R W,etal.Myogenin and oxidative enzyme gene expression levels are elevated in rat soleus muscles after endurance training[J].J Appl Physiol,2004,97(1):277-285.

      [40]SMITH C A,STAUBER F,WATERS C,etal.Transforming growth factor-beta following skeletal muscle strain injury in rats[J].J Appl Physiol,2007,102(2):755-761.

      [41]TRENDELENBURG A U,MEYER A,JACOBI C,etal.TAK-1/p38/nNFkappaB signaling inhibits myoblast differentiation by increasing levels of Activin A[J].Skelet Muscle,2012,2(1):3-12.

      [42]WANG M,ZHAO D,SPINETTI G,etal.Matrix metalloproteinase 2 activation of transforming growth factor-beta1 (TGF-beta1) and TGF-beta1-type II receptor signaling within the aged arterial wall[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2006,26(7):1503-1509.

      [43]WATTS R,MCAINCH A J,DIXON J B,etal.Increased Smad signaling and reduced MRF expression in skeletal muscle from obese subjects[J].Obesity (Silver Spring),2013,21(3):525-528.

      [44]WILLIAMSON D,GALLAGHER P,HARBER M,etal.Mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway activation:effects of age and acute exercise on human skeletal muscle[J].J Physiol,2003,547(3):977-987.

      [45]ZHAO X,YU Q,HUANG L,etal.Patterns of positive selection of the myogenic regulatory factor gene family in vertebrates[J].PLoS One,2014,9(3):928-939.

      [46]ZHOU D,CHREST F J,ADLER W,etal.Increased production of TGF-beta and Il-6 by aged spleen cells[J].Immunol Lett,1993,36(1):7-11

      ExerciseTrainningInhibitingTGFβPathwayandImprovingD-GlactoseInjection-inducedSenescentMuscleLossinRat

      WANG Jin-yue1,WANG Xiao-hong2,F(xiàn)eng Wei-dou3

      Objectvie:To explore the functions of (canonical and uncanonical) TGFβ pathway in exercise-induced improvement of sarcopenia.Method:24 male wistar rats were divided into 3 groups:C group (quiet young group),S group (40day D-Glactose injection-induced senecence),E group (40 days D-Glactose injection-induced senecence+6 weeks exercise trainning on treadmill).To detect body wet weight,gastrocnemius wet weight (by weighment),TGFβ pathway component-TGFβ1,MSTN,Phospho-smad2/3,Phospho-MAPK(p38,JNK1/2 ,ERK1/2),TGFβ pathway effector-p21,Pax7 by WB and MyoD mRNA,MyoG mRNA by RT-PCR in each group.Result:The ratio of gastrocnemius weight to body weight decreased,but TGFβ1,MSTN,Phospho-smad2,3 ,Phospho-p38,Phospho-JNK1,2,Phospho-ERK1,2,p21,MyoD mRNA,MyoG mRNA increased and Pax7 decreased in S group vs C group.The ratio of gastrocnemius weight to body weight increased,but TGFβ1,MSTN,Phospho-smad2,3 ,Phospho-JNK1,2,Phospho-ERK1,2 decreased,Phospho-p38 unchanged ,and p21 ,Pax7,MyoD mRNA,MyoG mRNA increased in E group vs S group.Conclusion:Exericse trainning can improve senescene-induced muscle loss by inhibiting TGFβ canonical and uncanonical pathway with the mediation of Pax7,p21,MyoD and MyoG.

      TGFβ;pathway;sarcopenia;D-Glactose;exercise;rat;animalexperiment

      1000-677X(2014)10-0072-06

      2014-04-13;

      :2014-09-15

      廣東省教育廳科研項(xiàng)目(2012WYM_0126);吉林省科技發(fā)展計(jì)劃(20100593)。

      王今越(1978-),男,滿(mǎn)族,長(zhǎng)春人,副教授,博士,主要研究方向?yàn)檫\(yùn)動(dòng)適應(yīng)和機(jī)能評(píng)定,E-mail:wjytnt@163.com。

      1.佛山大學(xué) 體育學(xué)院,廣東 佛山 528000;2.東北師范大學(xué) 體育學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春 130026;3.吉林省體育科學(xué)研究所,吉林 長(zhǎng)春130022 1.Foshan University,Foshan 528000,China;2.Northeast Normal University,Changchun 130026,China;3.Jinlin Province Sport Rearch institute,Changchun 130022,China.

      G804.2

      :A

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