王金霞 劉玉倩 常麗新 王羽
1河北師范大學(xué)體育學(xué)院(石家莊 050024)2河北理工大學(xué)化工與生物技術(shù)學(xué)院
機(jī)體鐵貯備不足直接影響運(yùn)動(dòng)機(jī)體的O2運(yùn)輸和能量代謝,誘發(fā)運(yùn)動(dòng)性疲勞,導(dǎo)致運(yùn)動(dòng)耐力下降[1]。由于運(yùn)動(dòng)常伴有紅血球溶解、血尿、出汗、胃腸道出血等現(xiàn)象,長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)極易誘發(fā)運(yùn)動(dòng)員(尤其是女運(yùn)動(dòng)員)機(jī)體鐵缺乏癥(iron deficiency,ID)[2-4]。有報(bào)道,從事不同運(yùn)動(dòng)項(xiàng)目的女運(yùn)動(dòng)員ID的發(fā)病率為25%~36%,賽季期間發(fā)病率高達(dá)70%[5,6]。 鐵缺乏癥如得不到有效治療,會(huì)導(dǎo)致缺鐵性貧血(iron deficiency anaemia,IDA)[7]。鐵調(diào)素(hepcidin)是一種富含半胱氨酸的肝臟抗菌多肽,對(duì)機(jī)體鐵穩(wěn)態(tài)起著關(guān)鍵性的負(fù)調(diào)控作用[8]。研究表明,骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenetic proteins,BMP)-SMADs是介導(dǎo)hepcidin表達(dá)的主要信號(hào)通路,SMAD4是通路中關(guān)鍵的信號(hào)傳導(dǎo)因子,可影響hepcidin轉(zhuǎn)錄[9,10]。 山菠菜提取物——山菠菜多糖(Atriplex hortensis polysaccharide,AHP)具有補(bǔ)血止血的功效,對(duì)ID有較好的輔助治療效果,但其治療機(jī)制尚不明了。本研究采用長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)大鼠模型,觀察補(bǔ)充山菠菜多糖能否作為hepcidin抑制劑對(duì)大鼠肝SMAD4起調(diào)控作用,從而改善運(yùn)動(dòng)鐵缺乏癥大鼠的機(jī)體鐵狀態(tài),進(jìn)一步探討山菠菜多糖改善運(yùn)動(dòng)鐵缺乏癥的分子機(jī)制。
4周齡雄性Wistar大鼠24只,體重(130±10)g,購自河北醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物飼養(yǎng)中心,動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(冀)2008-1-003。所有動(dòng)物均無訓(xùn)練史。每日自然光照射,自由進(jìn)食飲水,室溫22~25℃,濕度50%±5%,分籠喂養(yǎng)。隨機(jī)分為3組:對(duì)照組(control group,CG組)、運(yùn)動(dòng)組(exercise group,EG組)和運(yùn)動(dòng)+多糖組(exercise+polysaccharide,EP組)。EG組和EP組大鼠進(jìn)行5周跑臺(tái)訓(xùn)練,速度25 m/min,坡度為0。每周訓(xùn)練6天,周日休息。前2周為運(yùn)動(dòng)性適應(yīng)階段,每天訓(xùn)練1次,后3周每天訓(xùn)練2次,實(shí)驗(yàn)第1天大鼠訓(xùn)練1 min,以后以每次2 min的速度遞增,最后一天訓(xùn)練95 min。
將清洗干凈的山菠菜葉子烘干后粉碎,索氏提取器脫脂4~6 h,60℃烘干備用。稱取脫脂后的山菠菜于錐形瓶中,以液料比為28∶1(ml/g)加入pH為4.6的蒸餾水,低火微波提取4.5 min,過濾,大孔樹脂進(jìn)行動(dòng)態(tài)吸附解析濾液,可分離純化粗多糖溶液,濃縮,醇沉,過濾,烘干沉淀,得粗多糖。以上提純工作由河北理工大學(xué)化工與生物技術(shù)學(xué)院協(xié)助完成。將山菠菜提取物置于-20℃冰箱保存,提取物多糖含量約為43%。使用前按照100 mg/kg的劑量將提取物配成懸濁液。為防止藥品過期沉淀,每天配置1次。于實(shí)驗(yàn)第3周開始對(duì)EP組大鼠每天下午6:00灌胃1次,每次2 ml,CG組和EG組給予同等劑量的生理鹽水。
于5周末運(yùn)動(dòng)后24 h取材。所有大鼠均采用1%的戊巴比妥鈉進(jìn)行腹腔麻醉,打開胸腔,心尖取血。將血液放入加有促凝劑的促凝管中離心以備血清鐵測(cè)定。用DEPC配置的生理鹽水于大鼠升主動(dòng)脈迅速灌流,迅速剪取大鼠腎臟和肝臟,裝入EP管,投入液氮以備促紅細(xì)胞生成素 (erthopoietin,EPO)、SMAD4和hepcidin mRNA蛋白測(cè)定。
1.4.1 cDNA合成
取肝臟、腎臟樣品組織各約100 mg,加入1 ml Trizol Reagent(Invitrogen,USA),在玻璃勻漿器中進(jìn)行冰上勻漿,在磨碎組織中加入200 μl氯仿,震蕩離心后提取上清液,加入異丙醇析出RNA沉淀,用75%的乙醇溶劑清洗兩遍沉淀后的RNA,晾干后加入滅活的DEPC水測(cè)定RNA濃度。將提取的RNA放入反轉(zhuǎn)錄反應(yīng)體系,放入PCR儀中進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄 (70℃ 10 min,42℃ 1 h、75℃ 15 min),合成cDNA。引物序列參照Thorsten Bramey等的研究[11,12]設(shè)計(jì),見表1。
表1 RT-PCR引物序列
1.4.2 cDNA擴(kuò)增
反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物在冰上配制PCR反應(yīng)液,PCR儀器中進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng)。 95℃ 4 min,94℃ 45 s,56℃ 45 s,72℃1 min(34個(gè)循環(huán))。1.2%瓊脂糖凝膠電泳,用凝膠成像系統(tǒng)(Fujifilm Las-4000)分析與β-actin吸光值的比值。
血清鐵 (Serum iron,SI)、 血清未飽和結(jié)合鐵(serum unsaturated iron binding capacity,UIBC)和血清總鐵結(jié)合力 (serum total iron binding capacity,TIBC)試劑盒由南京建成生物科技公司提供,檢測(cè)方法嚴(yán)格按照說明書的步驟進(jìn)行操作。
所有數(shù)據(jù)全部采用SPSS18.0進(jìn)行單因素方差分析(One-Way ANOVA),所得結(jié)果用表示,顯著性水平為P<0.05,非常顯著性水平為P<0.01。
圖1 RT-PCR檢測(cè)各組大鼠EPO、SMAD4和hepcidin mRNA表達(dá)
圖1顯示,運(yùn)動(dòng)組EPO表達(dá)(0.93±0.20)顯著低于對(duì)照組(1.41±0.35)(P<0.05),肝SMAD4 mRNA(0.94±0.01)和hepcidin mRNA表達(dá)(1.04±0.04)顯著高于對(duì)照組(SMAD4:0.75±0.10,hepcidin:0.80±0.10)(P<0.01)。 運(yùn)動(dòng)+多糖組EPO表達(dá)(2.35±0.50)顯著高于對(duì)照組和運(yùn)動(dòng)組 (P<0.01),肝SMAD4 mRNA(0.65±0.10)和hepcidin mRNA表達(dá)(0.66±0.12)顯著低于對(duì)照組和運(yùn)動(dòng)組(P<0.05,P<0.01)。
表2顯示,運(yùn)動(dòng)組大鼠血清鐵、未飽和鐵結(jié)合力和血清總鐵結(jié)合力顯著低于對(duì)照組 (P<0.01);運(yùn)動(dòng)+多糖組大鼠血清鐵、未飽和結(jié)合鐵和血清總鐵結(jié)合力顯著低于對(duì)照組(P<0.05)而顯著高于運(yùn)動(dòng)組(P<0.05)。
表2 各組大鼠血清鐵狀態(tài)比較
鐵調(diào)素(hepcidin)是機(jī)體鐵狀態(tài)的重要負(fù)調(diào)節(jié)因子,SMAD4是介導(dǎo)hepcidin調(diào)控通路中的關(guān)鍵上游信號(hào)因子。1995年Sekelsky等在黑腹果蠅體內(nèi)發(fā)現(xiàn)sma(mothers against dpp)的同源蛋白mad參與轉(zhuǎn)化生長因子-β(transfor growth beta,TGF-β)的信號(hào)傳導(dǎo),后陸續(xù)在爪蟾等體內(nèi)發(fā)現(xiàn)sma,之后mad和sma被統(tǒng)一命名為Smad蛋白家族[13]。 Smad1-9負(fù)責(zé)將TGF-β/Smads信號(hào)從細(xì)胞膜傳導(dǎo)至細(xì)胞核并參與TGF-β靶基因的調(diào)節(jié)。SMAD4是Smads蛋白家族的關(guān)鍵蛋白,由552個(gè)氨基酸殘基編碼而成,含有11個(gè)外顯子和10個(gè)內(nèi)含子。SMAD4與其他Smad不同,擁有獨(dú)立的SMAD4活性區(qū),幾乎可以與所有活化受體調(diào)節(jié)型smads蛋白結(jié)合,形成低聚體復(fù)合物并參與信號(hào)傳導(dǎo)[14]。有研究證實(shí),小鼠敲除肝臟SMAD4基因后,hepcidin表達(dá)降低,并表現(xiàn)出嚴(yán)重的肝鐵沉積[15];骨形態(tài)發(fā)生蛋白(Bone morphgenetic proteins,BMPS)屬于TGF-β超家族成員[16]。研究證實(shí),BMP-SMADs是調(diào)控肝臟hepcidin表達(dá)的主要信號(hào)通路,BMP2、BMP4、BMP6和BMP9均被證實(shí)能調(diào)控hepcidin轉(zhuǎn)錄[17-20]。本實(shí)驗(yàn)室前期研究表明,長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后,BMP6 mRNA表達(dá)增加BMP6上調(diào)hepcidin表達(dá),機(jī)體鐵穩(wěn)態(tài)遭到破壞[21]。 BMP6對(duì)BMP-SMADs通路信號(hào)的級(jí)聯(lián)反應(yīng)起著關(guān)鍵性作用,BMP6與BMP II型受體BMPR-II先行結(jié)合,誘導(dǎo)BMP I型受體BMPR-I磷酸化,并與其形成復(fù)合物,這些復(fù)合物轉(zhuǎn)而促使SMADs(Smads1/5/8)進(jìn)一步磷酸化,受體調(diào)節(jié)的SMADs(Smad1/5/8)與SMAD4形成異源復(fù)合物轉(zhuǎn)位至細(xì)胞核,影響hepcidin轉(zhuǎn)錄[22]。體內(nèi)試驗(yàn)證實(shí),BMP6 mRNA表達(dá)同時(shí)受鐵的調(diào)控,鐵能夠誘導(dǎo)BMP6 mRNA表達(dá)和smad5磷酸化[23-25]。Hepcidin主要通過抑制小腸鐵吸收、巨噬細(xì)胞鐵釋放和肝鐵動(dòng)員負(fù)調(diào)控機(jī)體鐵穩(wěn)態(tài)。當(dāng)前,hepcidin已成為衡量運(yùn)動(dòng)員運(yùn)動(dòng)后尿液鐵狀態(tài)和血清鐵狀態(tài)的敏感生物指標(biāo)之一[26,27]。
本實(shí)驗(yàn)中,長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后,大鼠SMAD4和hepcidin mRNA表達(dá)量與對(duì)照組相比顯著增加,機(jī)體鐵狀態(tài)明顯下降;補(bǔ)充多糖后,運(yùn)動(dòng)+多糖組SMAD4和hepcidin mRNA表達(dá)量與運(yùn)動(dòng)組相比顯著下降,機(jī)體鐵狀態(tài)明顯升高。結(jié)果表明長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)過程中,hepcidin表達(dá)上調(diào),機(jī)體鐵輸出量增加,誘發(fā)機(jī)體鐵缺乏;補(bǔ)充山菠菜多糖能夠抑制SMAD4表達(dá),從而下調(diào)hepcidin水平,改善機(jī)體缺鐵狀態(tài)。
EPO是主要由腎臟分泌的激素樣物質(zhì),后發(fā)現(xiàn)肝臟也可分泌。EPO可上調(diào)骨髓幼紅細(xì)胞中轉(zhuǎn)鐵蛋白受體(TfR1)表達(dá),增強(qiáng)細(xì)胞攝鐵能力,促進(jìn)紅細(xì)胞中Hb合成,降低血清轉(zhuǎn)鐵蛋白飽和度,被廣泛應(yīng)用于貧血的臨床治療。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后大鼠腎臟EPO表達(dá)、血清鐵含量較對(duì)照組顯著降低,hepcidin表達(dá)量顯著增加;補(bǔ)充山菠菜多糖后大鼠腎臟EPO表達(dá)量、血清鐵含量與對(duì)照組和運(yùn)動(dòng)組比較顯著增加,hepcidin表達(dá)量顯著降低。這表明長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)抑制EPO表達(dá),使紅細(xì)胞生成量減少,機(jī)體運(yùn)氧能力降低;補(bǔ)充山菠菜多糖后,大鼠腎臟EPO表達(dá)量增加,hepcidin表達(dá)受到抑制,機(jī)體鐵水平升高,機(jī)體鐵缺乏得以改善。
Hepcidin作為維持機(jī)體鐵穩(wěn)態(tài)的核心分子,主要通過抑制小腸鐵吸收、網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)鐵釋放和肝鐵動(dòng)員負(fù)調(diào)控機(jī)體鐵穩(wěn)態(tài)。Hepcidin與膜鐵轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白-1(ferroportin-1,F(xiàn)PN-1)相互作用,引起FPN-1內(nèi)化和降解,降低細(xì)胞向外釋放鐵的能力,進(jìn)而影響機(jī)體鐵代謝。本研究結(jié)果顯示,長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)后大鼠機(jī)體hepcidin表達(dá)量與對(duì)照組比較顯著升高,機(jī)體鐵狀態(tài)顯著下降。Hepcidin水平升高誘發(fā)機(jī)體鐵缺乏,低表達(dá)則會(huì)造成鐵過載,引發(fā)遺傳性血色素沉著等多種慢性疾病[28]。本研究結(jié)果表明,長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)引起hepcidin高表達(dá),高水平hepcidin會(huì)降低網(wǎng)狀內(nèi)皮細(xì)胞向血清中釋放鐵的能力,同時(shí)小腸鐵吸收及機(jī)體鐵轉(zhuǎn)運(yùn)受到抑制,導(dǎo)致機(jī)體鐵水平下降,進(jìn)而引起機(jī)體鐵缺乏,影響機(jī)體鐵代謝。補(bǔ)充多糖后,肝臟hepcidin合成量降低,F(xiàn)PN-1重新在小腸上皮細(xì)胞和網(wǎng)狀內(nèi)皮細(xì)胞表面表達(dá),巨噬細(xì)胞向血清中釋放鐵的能力及小腸細(xì)胞的攝鐵能力均得以增強(qiáng),血清中鐵含量增加,保證了機(jī)體鐵的正常需求。
補(bǔ)充山菠菜多糖能刺激長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)大鼠腎臟EPO分泌,抑制大鼠肝臟SMAD4和hepcidin mRNA表達(dá),改善長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)大鼠機(jī)體鐵缺乏癥。但其中EPO通過何途徑影響SMAD4表達(dá)仍需研究。
[1]Auersperger I,Skof B,Leskosek B,et al.Exercise-induced changes in iron status and Hepcidin response in Female runners.PLoS One,2013,8(3):1-8.
[2]Latunde-Dada GO.Iron metabolism in athletes—achieving a gold standard.Eur J Haematol,2013,90(1):10-15.
[3]DeRuisseau KC,Cheuvront SN,Haymes EM,et al.Sweat iron and zinc losses during prolonged exercise.Int J Sport Nutr Exerc Metab,2002,12(4):428-437.
[4]Zoller H,Vogel W.Iron supplementation in athletes–first do no harm.Nutrition,2004,20(7-8):615-619.
[5]Di Santolo M,Stel G,Banfi G,et al.Anemia and iron status in young fertile non-professional female athletes.Eur J Appl Physiol,2008,102(6):703-709.
[6]Malczewska J,Raczynaki G,Stupnicki R.Iron status in female endurance athletes and in non-athletes.Int J Sport Nutr Exerc Metab,2000,10(3):260-276.
[7]Reinke S,Taylor WR,Duda GN,et al.Absolute and functional iron deficiency in professional athletes during training and recovery.Int J Cardiol,2012,156(2):186-191.
[8]Milward E,Johnstone D,Trinder D,et al.The nexus of iron and inflammation in hepcidin regulation:SMADs,STATs,and ECSIT.Hepatology,2007,45(1):253-256.
[9]Wu X,Yung LM,Cheng WH,et al.Hepcidin regulation by BMP signaling in macrophages is lipopolysaccharide dependent.PLoS One,2012,7(9):1-8.
[10]Hua Huang,Marco Constante,Antonio Layoun,et al.Contribution of STAT3 and SMAD4 pathways to the regulation of hepcidin by opposing stimuli.Blood,2009,113 (15):3593-3599.
[11]Thorsten Bramey,Patricia Freitag,et al.Joachim Fandrey,No evidence for protective erythropoietin alpha signalling in rat hepatocytes.BMC Gastroenterol,2009,9(26):1-12.
[12]Li Y,Xu Q,Zhang Z,et al.The impact of TGF-β1 on the mRNA expression of TβR I,TβR II,Smad4 and the invasiveness of the JEG-3 placental choriocarcinoma cell line.Oncol Lett,2012,4(6):1344-1348.
[13]蘇麗婷,夏時(shí)海.Smad蛋白在轉(zhuǎn)化生長因子-β信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路中的作用與機(jī)制.醫(yī)學(xué)分子生物學(xué)雜志,2008,5(4):352-355.
[14]閆繼東.Smad4在腫瘤中的研究進(jìn)展.中外醫(yī)療,2010,19(3):186-187.
[15]Ganz T.Hepcidin and iron regulation,10 years later.Blood,2011,117(17):4425-4433.
[16]Gerjevic LN,Liu N,Lu S,et al.Alcohol Activates TGFBeta but Inhibits BMP Receptor-Mediated Smad Signaling and Smad4 Binding to Hepcidin Promoter in the Liver.Int J Hepatol,2012,Epub 2011 Oct 23.
[17]Lin L,Valore EV,Nemeth E,et al.Iron transferrin regulates hepcidin synthesis in primary hepatocyte culture through hemojuvelin and BMP2/4.Blood,2007,110(6):2182-2189.
[18]Truksa J,Peng H,Lee P,et al.Bone morphogenetic proteins 2,4,and 9 stimulate murine hepcidin 1 expression independently of Hfe,transferrin receptor 2 (Tfr2),and IL-6.Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(27):10289-10293.
[19]Babitt JL,Huang FW,Xia Y,et al.Modulation of bone morphogenetic protein signaling in vivo regulates systemic iron balance.J Clin Invest,2007,117(7):1933-1939.
[20]Babitt JL,Huang FW,Wrighting DM,et al.Bone morphogenetic protein signaling by hemojuvelin regulates hepcidin expression.Nature Genetics,2006,38(5):531-539.
[21]孫娟,王海濤,劉玉倩,等.長時(shí)間大強(qiáng)度運(yùn)動(dòng)對(duì)大鼠骨骼肌BMP6 mRNA表達(dá)及鐵貯存的影響.中國運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2012,31(5):409-413.
[22]Le’on Kautz,Delphine Meynard,Ce’ line Besson-Fournier,et al.BMP/Smad signaling is not enhanced in Hfe-deficient mice despite increased Bmp6 expression.Blood,2009,114(12):2515-2520.
[23]Kautz L,Meynard D,Monnier A,et al.Iron regulates phosphorylation of Smad1/5/8 and gene expression of Bmp6,Smad7,Id1,and Atoh8 in the mouse liver.Blood,2008,112(4):1503-1509.
[24]Arndt S,Maegdefrau U,Dorn C,et al.Iron-induced expression of bone morphogenic protein 6 in intestinal cells is the main regulator of hepatic hepcidin expression in vivo.Gastroenterology,2010,138(1):372-382.
[25]Kautz L,Besson-Fournier C,Meynard D,et al.Iron overload induces BMP6 expression in the liver but not in the duodenum.Haematologica,2011,96(2):199-203.
[26]van Santen S,van Dongen-Lases EC,de Vegt F,et al.Hepcidin and hemoglobin content parameters in the diagnosis of iron deficiency in rheumatoid arthritis patients with anemia.Arthritis Rheum,2011,63(12):3672-3680.
[27]Peeling P,Dawson B,Goodman C,et al.Effects of exercise on hepcidin response and iron metabolism during recovery.Int J Sport Nutr Exerc Metab,2009,19(6):583-597.
[28]Milward E,Johnstone D,Trinder D,et al.The nexus of iron and inflammation in hepcidin regulation: SMADs,STATs,and ECSIT.Hepatology,2007,45(1):253-256.