潘磊 李依 郭瑞等
摘 要:從公共數(shù)據(jù)庫(kù)中下載豇豆葉綠體基因組,對(duì)其進(jìn)行全序列分析,揭示豇豆cpSSR的分布特點(diǎn)和基序特征,進(jìn)一步研究豇豆cpSSR在豆類植物中的通用性。研究結(jié)果表明,豇豆葉綠體基因組上共有52個(gè)微衛(wèi)星,主要分布于LSC區(qū),且以A/T為單堿基重復(fù)基序的微衛(wèi)星為主;從豇豆的52個(gè)葉綠體微衛(wèi)星中篩選出8對(duì)多態(tài)性豇豆cpSSR引物,在豌豆、利馬豆和菜豆中均成功擴(kuò)增,表明這些豇豆cpSSR引物在其豆類近緣種中具有較好的通用性。
關(guān)鍵詞:豇豆;葉綠體基因組;微衛(wèi)星;近緣種;通用性
中圖分類號(hào):S643.4;S336 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):1001-3547(2014)06-0009-07
豇豆(Vigna unguiculata)(2n=2x=22),又名豆角、長(zhǎng)豆角、帶豆等,屬豆科豇豆屬一年生草本植物。豇豆起源于非洲,中國(guó)是其次生起源中心,它在我國(guó)栽培歷史悠久,栽培面積大,南北各地均有分布。當(dāng)前,豇豆的DNA分子標(biāo)記研究在國(guó)內(nèi)外越來(lái)越受到關(guān)注[1]。特別是在豇豆的遺傳多樣性及品種(系)間的遺傳關(guān)系等研究方面,開展了多種分子標(biāo)記技術(shù)的研究,如RFLP[2],AFLP[3],RAPD(Random amplified polymorphic DNA,隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA)[4,5]、ISSR(Inter-simple sequence repeat,簡(jiǎn)單序列重復(fù)區(qū)間)[6]。近年來(lái),借助比較基因組學(xué)的技術(shù)手段,研究者們將豇豆近緣種——普通豇豆SNP(Single nucleotide polymorphism,單核苷酸多態(tài)性)[7]和普通豇豆SSR(Simple sequence repeat,簡(jiǎn)單序列重復(fù))[8,9]等分子標(biāo)記,成功用于長(zhǎng)豇豆基因組的研究。
然而,豇豆核外基因組微衛(wèi)星標(biāo)記的研究,特別是葉綠體微衛(wèi)星(Chloroplast simple sequence repeat,cpSSR)標(biāo)記的發(fā)掘及其應(yīng)用研究尚未見(jiàn)報(bào)道。Powell 等[10]首次提出葉綠體cpSSR標(biāo)記技術(shù)。與核基因組SSR標(biāo)記相比,葉綠體基因組DNA(Chloroplast genome DNA,cpDNA)呈單親遺傳模式、結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單、多拷貝、分子量小等特點(diǎn),此外,cpSSR標(biāo)記還兼有核基因組SSR標(biāo)記的共顯性、 高度變異和多態(tài)性等特點(diǎn),可以用于種質(zhì)資源分 類[11]、親緣關(guān)系鑒定[12]、遺傳多樣性[13,14]、遺傳結(jié) 構(gòu)[15]、系統(tǒng)發(fā)生學(xué)等研究[16,17]。
開發(fā)cpSSR標(biāo)記的傳統(tǒng)策略是構(gòu)建基因組文庫(kù)和測(cè)序,然后設(shè)計(jì)引物進(jìn)行篩選,以獲得cpSSR引物,但是從植物組織中提取高純度cpDNA十分困難,而且費(fèi)時(shí)費(fèi)力。當(dāng)前,采用生物信息學(xué)技術(shù)方法,充分發(fā)掘公共數(shù)據(jù)庫(kù)資源中的葉綠體基因組序列,根據(jù)cpSSR側(cè)翼序列的保守性,設(shè)計(jì)篩選cpSSR引物是一條經(jīng)濟(jì)且便捷的途徑。
雖然豇豆全基因組測(cè)序尚未完成,但是豇豆葉綠體全基因組已經(jīng)測(cè)序完成并公布。本研究通過(guò)下載公共數(shù)據(jù)庫(kù)中的豇豆葉綠體基因組全序列,分析豇豆葉綠體基因組的結(jié)構(gòu)和組分特征,揭示豇豆cpSSR組成與分布特點(diǎn),并檢驗(yàn)豇豆cpSSR引物在豆科物種間的通用性,以便為豇豆cpSSR標(biāo)記在其近緣種的群體分化、遺傳多樣性和系統(tǒng)發(fā)育等研究奠定基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 葉綠體微衛(wèi)星篩選
從GenBank公共數(shù)據(jù)庫(kù)中(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)下載豇豆(V. unguiculata)葉綠體基因組全序列(NC_018051),對(duì)豇豆葉綠體基因組全序列進(jìn)行分析,篩選微衛(wèi)星序列。單堿基微衛(wèi)星采用軟件Tandem Repeats Finder 4.04 查找[18];多堿基微衛(wèi)星采用SSRhunter 1.3軟件進(jìn)行分析[19],搜索條件按設(shè)置為單堿基微衛(wèi)星最小重復(fù)次數(shù)為10、二和三堿基的完全重復(fù)微衛(wèi)星最小重復(fù)次數(shù)分別為5和4、四堿基及四堿基以上的微衛(wèi)星最小重復(fù)次數(shù)均為3。在每個(gè)SSR位點(diǎn)的上下游側(cè)翼序列各為150 bp。
此外,采用DOGMA 軟件(Dual Organellar Genome Annotator)(http://dogma.ccbb.utexas.edu/)對(duì)葉綠體基因組結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析。
1.2 cpSSR引物設(shè)計(jì)
基于所獲得的葉綠體微衛(wèi)星序列,利用在線引物設(shè)計(jì)軟件Primer 3.0(http://frodo.wi.mit.edu/)分析微衛(wèi)星的側(cè)翼序列并進(jìn)行引物設(shè)計(jì)。主要參數(shù)設(shè)置為引物長(zhǎng)度18~22 bp,以20 bp為最佳;引物退火溫度50~60℃,以55℃為最佳,上游和下游的引物退火溫度之差在5℃以內(nèi);GC含量40%~70%,最適為50%;預(yù)期PCR產(chǎn)物長(zhǎng)度為100~400 bp。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
1.3 供試的豆類樣本材料
本研究在對(duì)引物進(jìn)行擴(kuò)增檢測(cè)時(shí),采用了19份豆類種質(zhì)資源,包括10份豇豆材料,5份菜豆材料,3份豌豆材料和1份利馬豆材料(表1)。
1.4 PCR擴(kuò)增和電泳分析
PCR反應(yīng)體系總體積為20 μL,含有1×PCR buffer,20 ng DNA模板,4 nmol dNTP,30 nmol
MgCl2,引物10 pmol,0.5 U Taq DNA聚合酶[天根生化科技(北京)有限公司]。在Mastercycler gradient型PCR儀(德國(guó),Eppendorf公司)上進(jìn)行擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序?yàn)?4℃預(yù)變性5 min;然后進(jìn)行35個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)包括94℃變性30 s,50~60℃退火30 s,72℃延伸40 s;最后72℃延伸5 min。
采用8%變性聚丙烯酰胺凝膠(Acrylamide∶Bis=19∶1)檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物。將PCR產(chǎn)物與上樣緩沖液(98%甲酰胺,10 mmol/L EDTA,0.025%溴酚藍(lán)和 0.025%二甲苯青藍(lán))等體積混合,在95°C變性5 min后,立即冰浴3 min,每次點(diǎn)樣量2.5 μL,恒功率55 W預(yù)電泳40 min,然后恒功率50 W電泳1.5 h。電泳完畢,經(jīng)過(guò)固定、銀染、顯色并用數(shù)碼相機(jī)拍照。
電泳后,統(tǒng)計(jì)每一樣品擴(kuò)增的DNA 條帶數(shù)及其多態(tài)性,在同一電泳遷移位置上,有DNA 擴(kuò)增條帶記為“1”,無(wú)條帶記為“0”。
2 結(jié)果與分析
2.1 豇豆葉綠體基因組cpSSR的分布
豇豆葉綠體基因組全序列分析表明,其基因組大小為152 415 bp,總GC含量為35.2%。豇豆葉綠體基因組的結(jié)構(gòu)包括1個(gè)長(zhǎng)單拷貝序列(Long single copy sequence,LSC)、1個(gè)短單拷貝序列 (Short single copy sequence,SSC)及2個(gè)反向重復(fù)序列(Inverted repeat,IR)。其中,LSC約81 kb分布區(qū)域?yàn)?~81 468 bp,IRa約26 kb分布區(qū)域?yàn)?1 469~107 351 bp,SSC約19 kb分布區(qū)為107 352~126 250 bp,
IRb大約26 kb分布區(qū)域?yàn)?/p>
126 251~152 415 bp。
從豇豆葉綠體基因組上共搜索出52個(gè)微衛(wèi)星(表2),分布頻率為每2 931 bp有1個(gè)cpSSR;微衛(wèi)星核心重復(fù)區(qū)及側(cè)翼序列總長(zhǎng)度為16 213 bp,占基因組全長(zhǎng)的10.63%。豇豆cpSSR的分布范圍較大,從7 245 bp到152 001 bp都有分布,但是其分布并不均勻,主要集中在LSC區(qū),少量的在SSC區(qū) ,而在IR區(qū)沒(méi)有。在LSC區(qū)和SSC區(qū)分布的cpSSR分別為48個(gè)(92.3%)和4個(gè)(7.7%)。
2.2 豇豆葉綠體基因組cpSSR的重復(fù)基序特點(diǎn)
根據(jù)微衛(wèi)星核心重復(fù)基序的結(jié)構(gòu)特點(diǎn)[20],可將微衛(wèi)星可分為3種類型,即完美型、非完美型和復(fù)合型。完美型指的是微衛(wèi)星序列沒(méi)有中斷或附近沒(méi)有其他種類基序的重復(fù)序列;非完美型指的是同種重復(fù)基序被3個(gè)堿基以下的非重復(fù)序列所間隔;復(fù)合型指一種重復(fù)基序與其他種類的重復(fù)基序被3個(gè)以下的非重復(fù)序列所間隔。在所獲得的52個(gè)豇豆cpSSR中,完美型為48個(gè),非完美型為4個(gè),無(wú)復(fù)合型(表3)。這表明,在豇豆葉綠體基因組cpSSR中以完美型和非完美型微衛(wèi)星為主。此外,對(duì)核心區(qū)的重復(fù)次數(shù)分析發(fā)現(xiàn),重復(fù)次數(shù)的變化范圍為4~19次,其中核心重復(fù)次數(shù)為10次的微衛(wèi)星有14個(gè)(26.9%),而核心重復(fù)次數(shù)為11次的微衛(wèi)星有11個(gè)(21.2%),兩者累計(jì)所占比例為48.1%,幾乎占全部微衛(wèi)星數(shù)量的1/2。
依據(jù)重復(fù)基序的堿基數(shù)目差別,在這52個(gè)豇豆cpSSR中,單堿基重復(fù)基序微衛(wèi)星共有33個(gè)(完美型29個(gè)和非完美型4個(gè)),占63.5%,而 A和T是單堿基重復(fù)基序的主要類型,未見(jiàn)C或者G的單堿基基序(表3)。二堿基重復(fù)基序的微衛(wèi)星有14個(gè),占26.9%,以AT和TA為主;三堿基重復(fù)基序有5個(gè),占9.6%,堿基類型包括AAT(2個(gè))、TTA(1個(gè))、TAA(1個(gè))、ATA(1個(gè))。由此可見(jiàn),在豇豆葉綠體微衛(wèi)星中,重復(fù)基序的堿基主要以A和T為主。
2.3 cpSSR引物的設(shè)計(jì)與篩選
利用在線引物設(shè)計(jì)軟件Primer 3.0分析上述52個(gè)豇豆葉綠體微衛(wèi)星序列,從中設(shè)計(jì)并合成10對(duì)cpSSR引物,通過(guò)對(duì)10份豇豆樣品的PCR檢測(cè),發(fā)現(xiàn)其中8對(duì)cpSSR引物具有多態(tài)性(圖1),且PCR產(chǎn)物片段位于100~400 bp(表4)。
檢測(cè)上述8對(duì)多態(tài)性豇豆cpSSR在其近緣種中的可轉(zhuǎn)移性(圖2)。選取豇豆的3個(gè)近緣物種豌豆、利馬豆和菜豆(共9份樣品)進(jìn)行擴(kuò)增,結(jié)果表明,這8對(duì)豇豆cpSSR引物均可以在這三3個(gè)近緣種中成功擴(kuò)增(表4)。
在豌豆中具有多態(tài)性的引物有CPM1、CPM3 和CPM6,均檢測(cè)到2個(gè)等位基因,其余5對(duì)cpSSR引物為單態(tài)性;在菜豆中具有多態(tài)性的引物有CPM1、CPM2、CPM4、CPM5和CPM7,也均檢測(cè)到2對(duì)等位基因,而其余3對(duì)cpSSR引物為單態(tài)性。
3 討論與結(jié)論
葉綠體基因組是單倍體,保守性較強(qiáng),具有細(xì)胞質(zhì)遺傳的特點(diǎn),除少數(shù)植物例外,一般為單親遺傳,不發(fā)生重組[21]。由于在進(jìn)化過(guò)程中,親代到子代的遺傳物質(zhì)傳遞不涉及基因組重組,不會(huì)受到選擇壓力,而且位點(diǎn)發(fā)生的突變也容易保留,不會(huì)受到重組、缺失以及假基因等的干擾[22]。因此,具有葉綠體基因組特征的cpSSR分子標(biāo)記技術(shù)廣泛應(yīng)用于在植物種質(zhì)資源鑒定、群體分化、系統(tǒng)分類和物種進(jìn)化等研究領(lǐng)域[23,24]。
在cpSSR分子標(biāo)記的應(yīng)用上,其瓶頸和難點(diǎn)是引物的設(shè)計(jì)與篩選。與核基因組SSR引物的開發(fā)類似,cpSSR引物開發(fā)的前提是獲取微衛(wèi)星側(cè)翼的序列信息。隨著現(xiàn)代生物技術(shù)和基因組學(xué)的不斷進(jìn)步,當(dāng)前cpSSR分子標(biāo)記的開發(fā)主要有兩種策略,一是直接進(jìn)行葉綠體基因組測(cè)序,再設(shè)計(jì)篩選cpSSR引物;二是基于生物信息學(xué)手段,或者從公共數(shù)據(jù)庫(kù)的葉綠體基因組中發(fā)掘cpSSR引物,或者利用近緣物種的cpSSR進(jìn)行種間的可轉(zhuǎn)移性檢測(cè),以獲取cpSSR引物。對(duì)于前者而言,由于葉綠體基因組DNA的分離和純化難度較大,增加了測(cè)序難度和成本,因此,后者利用公共數(shù)據(jù)庫(kù)資源進(jìn)行葉綠體cpSSR標(biāo)記的開發(fā),更加簡(jiǎn)便和經(jīng)濟(jì)。特別是隨著開展全基因組測(cè)序的植物物種越來(lái)越多,許多植物的葉綠體基因組如擬南芥[25,26]、黃瓜[22]、蝴蝶蘭[27]、柑橘[28,29]、菜豆[30]等的全序列或者部分序列已經(jīng)釋放到公共數(shù)據(jù)庫(kù)中,極大促進(jìn)了cpSSR分子標(biāo)記的開發(fā)和應(yīng)用。
豇豆的葉綠體基因組全序列剛公布不久,這為揭示豇豆葉綠體基因組特征,并開發(fā)豇豆cpSSR分子標(biāo)記奠定了基礎(chǔ)。豇豆葉綠體基因組比較大(約153 kb),而一般植物的葉綠體基因組大小在120~170 kb[7,31]。
本研究通過(guò)對(duì)豇豆葉綠體全基因進(jìn)行微衛(wèi)星分布特征分析,發(fā)現(xiàn)在豇豆葉綠體基因組上分布有52個(gè)cpSSR,其序列總長(zhǎng)約占葉綠體基因組全長(zhǎng)的1/10。這些微衛(wèi)星在豇豆葉綠體基因組上分布不均,分布的密集區(qū)域?yàn)長(zhǎng)SC區(qū),只有少數(shù)幾個(gè)微衛(wèi)星分布在SSC區(qū),而在IR區(qū)無(wú)微衛(wèi)星分布。
這52個(gè)豇豆cpSSR在微衛(wèi)星的序列特征上,以A/T為單堿基重復(fù)基序的微衛(wèi)星為主(63.5%),也包括少量的二堿基重復(fù)基序類型AT/TA和三堿基重復(fù)基序類型AAT/TTA/TAA/ATA;重復(fù)次數(shù)的變化范圍為4次到19 次不等。因此,在豇豆cpSSR中,無(wú)論單堿基、二堿基或者三堿基重復(fù)基序,它們的堿基組成均以A/T為主要類型,未見(jiàn)C/G的堿基基序,而且重復(fù)次數(shù)變異范圍有限。cpSSR的這種堿基組成和重復(fù)特征可能與葉綠體的結(jié)構(gòu)組成特點(diǎn)及其進(jìn)化有關(guān)聯(lián)。
由于葉綠體基因組序列在物種間具有較高的保守性,cpSSR引物可以在不同種屬間進(jìn)行跨種擴(kuò)增,具有通用性。Ishii等[32]研究表明,水稻cpSSR標(biāo)記在禾本科植物中具有較為廣泛的通用性。Diekmann等[33]從多年生黑麥草中發(fā)掘出9個(gè)cpSSR標(biāo)記并檢驗(yàn)其在黑麥草屬物種中的通用性。在園藝作物研究中,梁芳芳等[34]發(fā)現(xiàn)黃瓜cpSSR引物在其近緣種甜瓜、南瓜和西瓜中的通用性較好;Xue等[35]研究了中國(guó)蓮cpSSR在蓮屬中的通用性及多態(tài)性;Jiang等[36]從中國(guó)芒中開發(fā)出了在芒屬植物中具有通用性的cpSSR引物。而在木本植物研究中,韓鍵等[37]研究揭示了果梅cpSSR引物在李屬的桃、李、梅、杏、櫻桃等5個(gè)樹種中均具有通用性。
關(guān)于豆科植物的cpSSR分子標(biāo)記研究鮮見(jiàn)報(bào)道。Angioi等[38]報(bào)道了所開發(fā)的菜豆屬cpSSR標(biāo)記的通用性,并分析了其在豆科的羽扇豆、花生、蒺藜苜蓿、鷹嘴豆、大豆和豌豆中的通用性。當(dāng)前,對(duì)豇豆葉綠體基因組cpSSR分子標(biāo)記的研究尚未見(jiàn)正式報(bào)道。
因此,本研究初步嘗試對(duì)豇豆cpSSR分子標(biāo)記進(jìn)行研究,設(shè)計(jì)篩選了8對(duì)多態(tài)性豇豆cpSSR引物,并在豇豆的近緣種豌豆、利馬豆和菜豆中成功擴(kuò)增,表明了這些cpSSR引物在不同豆類物種之間具有較為廣泛的通用性??傊?,本研究分析了豇豆基因組微衛(wèi)星的序列組成和分布特點(diǎn),并成功開發(fā)出具有種間通用性的豇豆cpSSR引物,這將為豇豆cpSSR分子標(biāo)記應(yīng)用于豆科物種開展群體遺傳學(xué)、系統(tǒng)發(fā)育與進(jìn)化等研究奠定一定的基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn)
[1] 張靜,彭海,陳禪友.分子標(biāo)記在長(zhǎng)豇豆遺傳分析中的應(yīng)用進(jìn)展[J].長(zhǎng)江蔬菜,2010(16):1-5.
[2] Fatokun C A, Danesh D, Young N D. Molecular taxonomic relationships in the genus Vigna based on RFLP analysis[J]. Theoretical and Applied Genetics, 1993, 86: 97-104.
[3] Coulibaly S, Pasquet R S, Papa R, et al. AFLP analysis of the phenetic organization and genetic diversity of Vigna unguiculata L. Walp. reveals extensive gene flow between wild and domesticated types[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2002, 104: 358-366.
[4] 陳禪友,潘磊,胡志輝,等.長(zhǎng)豇豆品種資源的RAPD分析[J].江漢大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2008,36(4):77-83.
[5] Fana S B, Pasquet R S, Gepts P. Genetic diversity in cowpea [Vigna unguiculata (L.) Walp.] as revealed by RAPD markers[J]. Genetic Resources and Crop Evolution, 2004, 51: 539-550.
[6] Chen C Y, Peng H. Differentiation and phylogenetic relationship among different cultibars of asparagus bean (Vigna unguiculata (L.) ssp. sesquipedalis) assessed using ISSR markers[J]. Nordic Journal of Botany, 2010, 28: 251-256.
[7] Shaw J, Lickey E B, Schilling E E, et al. Comparison of whole chloroplast genome sequences to choose noncoding regions for phylogenetic studies in angiosperms: the tortoise and the hare III[J]. American Journal of Botany, 2007, 94 (3): 275-288.
[8] Kongjaimun A, Kaga A, Tomooka N, et al. An SSR-based linkage map of yardlong bean (Vigna unguiculata (L.) Walp. subsp. unguiculata Sesquipedalis Group) and QTL analysis of pod length[J]. Genome, 2012, 55(2): 81-92.
[9] Xu P, Wu X, Wang B, et al. Development and polymorphism of Vigna unguiculata ssp. unguiculata microsatellite markers used for phylogenetic analysis in asparagus bean (Vigna unguiculata ssp. sesquipedialis (L.) Verdc.)[J]. Molecular Breeding, 2010, 25: 675-684.
[10] Powell W, Morgante M, McDevitt R, et al. Polymorphic simple sequence repeat regions in chloroplast genomes: applications to the population genetics of pines[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1995, 99: 7 759-7 763.
[11] 李博,馮慧敏,王靜毅,等.基于cpSSR分子標(biāo)記的香蕉種質(zhì)資源分類[J].果樹學(xué)報(bào),2011,28(6):1 012-1 018.
[12] 趙丹,隋心,孫曉艷,等.基于cpSSR 標(biāo)記的紅松天然群體自由授粉子代的父本分析[J].經(jīng)濟(jì)林研究,2011,29(4):23-27.
[13] 程麗莉,封海東,饒群,等.湖北省十堰地區(qū)野生板栗cpSSR遺傳多樣性研究[J].果樹學(xué)報(bào),2012,29(3):382-386.
[14] 邵丹, 裴贏, 張恒慶.涼水國(guó)家自然保護(hù)區(qū)天然紅松種群遺傳多樣性在時(shí)間尺度上變化的cpSSR分析[J].植物研究,2007,27(4):473-474.
[15] 張?zhí)铮?李作洲, 劉亞令, 等.獼猴桃屬植物的cpSSR遺傳多樣性及其同域分布物種的雜交漸滲與同塑[J].生物多樣性,2007,15(1):1-22.
[16] Bucci G, González-Martínez S C, Le Provost G, et al. Range-wide phylogeography and gene zones in Pinus pinaster Ait. revealed by chloroplast microsatellite markers[J]. Molecular Ecology, 2007, 16(10): 2 137-2 153.
[17] Yu H, Nason J D. Nuclear and chloroplast DNA phylogeography of Ficus hirta: obligate pollination mutualism and constraints on range expansion in response to climate change[J]. New Phytologist, 2013, 197(1): 276-289.
[18] Benson G. Tandem repeats finder: a program to analyze DNA sequences[J]. Nucleic Acids Research, 1999, 27(2): 573-580.
[19] 李強(qiáng),萬(wàn)建民.SSRHunter,一個(gè)本地化的SSR位點(diǎn)搜索軟件的開發(fā)[J].遺傳,2005,27(5):808-810.
[20] Weber J L. Informativeness of human (dC-dA)n, (dG-dT)n polymorphisms[J]. Genomics, 1990, 7(3): 524-530.
[21] Birky C W. Uniparental inheritance of mitochondrial and chloroplast genes: mechanisms and evolution[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1995, 92: 11 331-11 338.
[22] 胡建斌,李建吾,梁芳芳,等.黃瓜葉綠體基因組全序列微衛(wèi)星分布特征與標(biāo)記開發(fā)[J].細(xì)胞生物學(xué)雜志,2009,31(1):69-74.
[23] 李博,劉合霞.葉綠體基因組微衛(wèi)星標(biāo)記(cpSSR)研究進(jìn)展[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2012,40(13):7 638-7 639.
[24] Provan J, Powell W, Hollingsworth P M. Chloroplast microsatellites: new tools for studies in plant ecology and evolution[J]. Trends in Ecology and Evolution, 2001, 16: 142-147.
[25] 王化坤,喬玉山,婁曉鳴,等.擬南芥葉綠體DNA全序列微衛(wèi)星分布規(guī)律的分析[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2006,22(10):845-850.
[26] 張揚(yáng)勇,方智遠(yuǎn),王慶彪,等.擬南芥葉綠體SSR引物在甘藍(lán)上的應(yīng)用[J].園藝學(xué)報(bào),2011,38(3):549-555.
[27] 張君毅.蝴蝶蘭葉綠體DNA微衛(wèi)星分析與標(biāo)記開發(fā)[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2011,23(12):31-33.
[28] Bausher M G, Singh N D, Lee S B, et al. The complete chloroplast genome sequence of Citrus sinensis (L.) Osbeck var 'Ridge Pineapple': organization and phylogenetic relationships to other angiosperms[J]. BMC Plant Biology, 2006, 6: 21.
[29] 龔桂芝,洪棋斌,彭祝春,等.枳屬種質(zhì)遺傳多樣性及其與近緣屬植物親緣關(guān)系的SSR和cpSSR分析[J].園藝學(xué)報(bào),2008,35(12):1 742-1 750.
[30] Desiderio F, Bitocchi E, Bellucci E, et al. Chloroplast microsatellite diversity in Phaseolus vulgaris[J]. Frontiers in Plant Science, 2012(3): 312.
[31] Clegg M T, Gaut B S, Learn G H, et al. Rates and patterns of chloroplast DNA evolution[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1994, 91(15): 6 795-6 801.
[32] Ishii T, McCouch S R. Microsatellites and microsynteny in the chloroplast genomes of Oryza and eight other Gramineae species[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2000, 100: 1 257-1 266.
[33] Diekmann K, Hodkinson T R, Barth S. New chloroplast microsatellite markers suitable for assessing genetic diversity of Lolium perenne and other related grass species[J]. Annals of Botany, 2012, 110(6): 1 327-1 339.
[34] 梁芳芳,李瓊,胡建斌,等.黃瓜cpSSR引物的多態(tài)性與通用性[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2010,22(3):1-4.
[35] Xue J, Wang S, Zhou S L. Polymorphic chloroplast microsatellite loci in Nelumbo (Nelumbonaceae)[J]. American Journal of Botany, 2012, 99(6): 240-244.
[36] Jiang J X, Wang Z H, Tang B R, et al. Development of novel chloroplast microsatellite markers for Miscanthus species (Poaceae)[J]. American Journal of Botany, 2012, 99(6): 230-233.
[37] 韓鍵,王化坤,練春蘭,等.果梅nSSR、cpSSR引物在李屬果樹上的通用性分析[J].果樹學(xué)報(bào),2009,26(6):830-835.
[38] Angioi S A, Desiderio F, Rau D, et al. Development and use of chloroplast microsatellites in Phaseolus spp. and other legumes[J]. Plant Biology, 2009, 11(4): 598-612.
[29] 龔桂芝,洪棋斌,彭祝春,等.枳屬種質(zhì)遺傳多樣性及其與近緣屬植物親緣關(guān)系的SSR和cpSSR分析[J].園藝學(xué)報(bào),2008,35(12):1 742-1 750.
[30] Desiderio F, Bitocchi E, Bellucci E, et al. Chloroplast microsatellite diversity in Phaseolus vulgaris[J]. Frontiers in Plant Science, 2012(3): 312.
[31] Clegg M T, Gaut B S, Learn G H, et al. Rates and patterns of chloroplast DNA evolution[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1994, 91(15): 6 795-6 801.
[32] Ishii T, McCouch S R. Microsatellites and microsynteny in the chloroplast genomes of Oryza and eight other Gramineae species[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2000, 100: 1 257-1 266.
[33] Diekmann K, Hodkinson T R, Barth S. New chloroplast microsatellite markers suitable for assessing genetic diversity of Lolium perenne and other related grass species[J]. Annals of Botany, 2012, 110(6): 1 327-1 339.
[34] 梁芳芳,李瓊,胡建斌,等.黃瓜cpSSR引物的多態(tài)性與通用性[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2010,22(3):1-4.
[35] Xue J, Wang S, Zhou S L. Polymorphic chloroplast microsatellite loci in Nelumbo (Nelumbonaceae)[J]. American Journal of Botany, 2012, 99(6): 240-244.
[36] Jiang J X, Wang Z H, Tang B R, et al. Development of novel chloroplast microsatellite markers for Miscanthus species (Poaceae)[J]. American Journal of Botany, 2012, 99(6): 230-233.
[37] 韓鍵,王化坤,練春蘭,等.果梅nSSR、cpSSR引物在李屬果樹上的通用性分析[J].果樹學(xué)報(bào),2009,26(6):830-835.
[38] Angioi S A, Desiderio F, Rau D, et al. Development and use of chloroplast microsatellites in Phaseolus spp. and other legumes[J]. Plant Biology, 2009, 11(4): 598-612.
[29] 龔桂芝,洪棋斌,彭祝春,等.枳屬種質(zhì)遺傳多樣性及其與近緣屬植物親緣關(guān)系的SSR和cpSSR分析[J].園藝學(xué)報(bào),2008,35(12):1 742-1 750.
[30] Desiderio F, Bitocchi E, Bellucci E, et al. Chloroplast microsatellite diversity in Phaseolus vulgaris[J]. Frontiers in Plant Science, 2012(3): 312.
[31] Clegg M T, Gaut B S, Learn G H, et al. Rates and patterns of chloroplast DNA evolution[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 1994, 91(15): 6 795-6 801.
[32] Ishii T, McCouch S R. Microsatellites and microsynteny in the chloroplast genomes of Oryza and eight other Gramineae species[J]. Theoretical and Applied Genetics, 2000, 100: 1 257-1 266.
[33] Diekmann K, Hodkinson T R, Barth S. New chloroplast microsatellite markers suitable for assessing genetic diversity of Lolium perenne and other related grass species[J]. Annals of Botany, 2012, 110(6): 1 327-1 339.
[34] 梁芳芳,李瓊,胡建斌,等.黃瓜cpSSR引物的多態(tài)性與通用性[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2010,22(3):1-4.
[35] Xue J, Wang S, Zhou S L. Polymorphic chloroplast microsatellite loci in Nelumbo (Nelumbonaceae)[J]. American Journal of Botany, 2012, 99(6): 240-244.
[36] Jiang J X, Wang Z H, Tang B R, et al. Development of novel chloroplast microsatellite markers for Miscanthus species (Poaceae)[J]. American Journal of Botany, 2012, 99(6): 230-233.
[37] 韓鍵,王化坤,練春蘭,等.果梅nSSR、cpSSR引物在李屬果樹上的通用性分析[J].果樹學(xué)報(bào),2009,26(6):830-835.
[38] Angioi S A, Desiderio F, Rau D, et al. Development and use of chloroplast microsatellites in Phaseolus spp. and other legumes[J]. Plant Biology, 2009, 11(4): 598-612.