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    miR-34c對(duì)I I型子宮內(nèi)膜癌HEC-1-B細(xì)胞生長(zhǎng)和凋亡的影響

    2014-03-23 07:58:49李甫鑰薛紀(jì)森黃亦波陳慧君鄭飛云
    關(guān)鍵詞:癌基因試劑克隆

    李甫鑰,薛紀(jì)森,黃亦波,陳慧君,鄭飛云

    (溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院 婦科,浙江 溫州 325015)

    ·論 著·

    miR-34c對(duì)I I型子宮內(nèi)膜癌HEC-1-B細(xì)胞生長(zhǎng)和凋亡的影響

    李甫鑰,薛紀(jì)森,黃亦波,陳慧君,鄭飛云

    (溫州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院 婦科,浙江 溫州 325015)

    目的:研究miR-34c對(duì)Ⅱ型子宮內(nèi)膜癌HEC-1-B細(xì)胞的生長(zhǎng)及凋亡的影響。方法:用hsa-miR-34c mimics轉(zhuǎn)染HEC-1-B細(xì)胞。流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)定細(xì)胞轉(zhuǎn)染率,實(shí)時(shí)熒光定量PCR驗(yàn)證轉(zhuǎn)染后miR-34c的表達(dá)。CCK-8檢測(cè)細(xì)胞增殖能力的改變。細(xì)胞克隆形成實(shí)驗(yàn)觀察miR-34c對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的長(zhǎng)期抑制。流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)細(xì)胞凋亡。結(jié)果:細(xì)胞轉(zhuǎn)染率為81.16%。相對(duì)于對(duì)照組,轉(zhuǎn)染后實(shí)驗(yàn)組miR-34c表達(dá)明顯增加,細(xì)胞增殖、克隆形成能力減弱,凋亡增加(P<0.05)。結(jié)論:miR-34c能明顯抑制Ⅱ型子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞的增殖,促進(jìn)細(xì)胞凋亡,是Ⅱ型子宮內(nèi)膜癌的潛在抑癌基因。

    miR-34c;Ⅱ型子宮內(nèi)膜腫瘤;細(xì)胞;增殖;凋亡

    子宮內(nèi)膜癌是女性生殖系統(tǒng)最常見(jiàn)的惡性腫瘤之一,其發(fā)病率和病死率正逐年上升[1-2]。手術(shù)是目前子宮內(nèi)膜癌的主要治療方法。根據(jù)組織學(xué)特征、生物學(xué)表現(xiàn)及臨床預(yù)后等,子宮內(nèi)膜癌分為I型和I I型兩種類型[3]。I型子宮內(nèi)膜癌為雌激素受體陽(yáng)性的高分化子宮內(nèi)膜樣腺癌,占子宮內(nèi)膜癌的80%左右,一般預(yù)后較好;I I型為雌激素受體陰性的子宮內(nèi)膜癌,較少見(jiàn),主要包括漿液性腺癌、透明細(xì)胞癌及其他低分化癌[4],分化較差,預(yù)后不良。因此,尋找新的治療方法對(duì)于改善I I型子宮內(nèi)膜癌的預(yù)后具有重大意義。微RNA(miRNA)是一種長(zhǎng)約18~24個(gè)核苷酸的非編碼小RNA,通過(guò)對(duì)mRNA剪切或翻譯抑制來(lái)調(diào)節(jié)基因表達(dá)[5]。最近研究發(fā)現(xiàn)miRNA可作為癌基因或抑癌基因參與多種癌的發(fā)生和發(fā)展(包括胃癌、肺癌、肝癌、卵巢癌、宮頸癌、淋巴瘤等)[6]。miRNA為腫瘤的治療提供了新的思路,并可能在分子水平對(duì)未來(lái)腫瘤治療產(chǎn)生巨大的影響。我們以前的研究[7]通過(guò)基因芯片技術(shù)對(duì)子宮內(nèi)膜癌miRNA表達(dá)譜進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn)相對(duì)于正常子宮內(nèi)膜,miR-34c在I I型子宮內(nèi)膜癌中呈明顯低表達(dá),提示miR-34c可能是I I型子宮內(nèi)膜癌的抑癌基因之一。本研究通過(guò)上調(diào)I I型子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞的miR-34c表達(dá)并對(duì)其生物學(xué)功能的改變進(jìn)行檢測(cè),從而進(jìn)一步了解miR-34c在I I型子宮內(nèi)膜癌發(fā)生發(fā)展中的作用。

    1 材料和方法

    1.1 主要試劑與儀器hsa-miR-34c mimics(5’-AGGCAGUGUAGUUAGCUGAUUGC-3’)、miRNA mimics陰性對(duì)照(5’-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3’)及FAM標(biāo)記的hsa-miR-34c mimics(上海吉瑪公司),hsa-miR-34c上游引物(5’-AGGCAGTGTAGTTAGCTGATTGC-3’)及U6上游引物(5’-CGCAAGGATGACACGCAAATTC-3’)(Invitrogen公司),胎牛血清、低糖DMEM培養(yǎng)液(Gibco公司),lipofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑、CCK-8試劑(碧云天生物技術(shù)研究所),Trizol試劑、miRNA反轉(zhuǎn)錄及實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒(Invitrogen公司),SYBR GREEN(TOYOBO公司);ELX800酶標(biāo)儀(美國(guó)BIO-TEK公司),Applied Biosysystems 7500型實(shí)時(shí)定量PCR儀(美國(guó)ABI公司),F(xiàn)ACSCalibur流式細(xì)胞儀(美國(guó)B-D公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 細(xì)胞系的選擇及培養(yǎng):HEC-1-B細(xì)胞系為雌激素受體ERα及ERβ均陰性的細(xì)胞系[8],根據(jù)I I型子宮內(nèi)膜癌雌激素受體陰性的分類標(biāo)準(zhǔn),我們選擇HEC-1-B細(xì)胞(購(gòu)自中科院上海細(xì)胞庫(kù))作為I I型子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞系。

    HEC-1-B細(xì)胞用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液,置于37 ℃含5% CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。細(xì)胞呈貼壁生長(zhǎng),待細(xì)胞生長(zhǎng)至培養(yǎng)瓶面積的90%以上時(shí)用胰酶消化,收集細(xì)胞,離心、重懸后,按1:3傳代。

    1.2.2 細(xì)胞的轉(zhuǎn)染及轉(zhuǎn)染率檢測(cè):轉(zhuǎn)染前24 h按約2×105個(gè)/孔的量將細(xì)胞接種于6孔板(96孔板接種2 500個(gè)/孔),24 h后細(xì)胞覆蓋約30%~50%的孔底面積時(shí),按照l(shuí)ipofectamine 2000試劑說(shuō)明書(shū)操作分別轉(zhuǎn)染hsa-miR-34c mimics和NC。實(shí)驗(yàn)分三組:實(shí)驗(yàn)組(轉(zhuǎn)染hsa-miR-34c mimics)、NC組(轉(zhuǎn)染miRNA mimics陰性對(duì)照)、空白組(不轉(zhuǎn)染)。轉(zhuǎn)染后置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。

    轉(zhuǎn)染FAM標(biāo)記的hsa-miR-34c mimics(記為FAM組),24 h后用熒光顯微鏡觀察細(xì)胞內(nèi)的熒光,拍照。將獲取的細(xì)胞用PBS洗滌、離心、重懸后,避光。用流式細(xì)胞儀檢測(cè)帶熒光的細(xì)胞量,通過(guò)與空白組的比較得出細(xì)胞的轉(zhuǎn)染率。

    1.2.3 RNA提取及實(shí)時(shí)熒光定量PCR測(cè)定miR-34c的表達(dá):用6孔板鋪板、轉(zhuǎn)染后48 h,用Trizol試劑提取總RNA(其中包含miRNA),用核酸蛋白分析儀測(cè)定RNA純度,保證A260/A280在1.8~2.0范圍內(nèi)。根據(jù)miRNA反轉(zhuǎn)錄及實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑盒說(shuō)明,對(duì)提取的RNA中的miRNA加多聚A尾,然后進(jìn)一步反轉(zhuǎn)錄為cDNA。完成反轉(zhuǎn)錄后,以U6作為內(nèi)參進(jìn)行下一步的實(shí)時(shí)定量熒光PCR,反應(yīng)為10 μ L體系:5μ L的SYBR-Green試劑、1μ L濃度為1μmol/ L的特異性miR-34c或U6上游引物、1 μL濃度為1 μmol/L的下游通用引物(試劑盒內(nèi)提供)、1μL之前合成的cDNA模板(1:10稀釋后),2μ L的DEPC水。將反應(yīng)體系置于實(shí)時(shí)定量PCR儀內(nèi)進(jìn)行反應(yīng)。反應(yīng)條件:95 ℃變性3 min后,擴(kuò)增40個(gè)循環(huán)(每個(gè)循環(huán)95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min)。反應(yīng)完成后,根據(jù)各組的miR-34c及內(nèi)參U6的CT值用2-△△Ct法計(jì)算每組miR-34c的相對(duì)表達(dá)量。

    1.2.4 CCK-8測(cè)細(xì)胞增殖:轉(zhuǎn)染前24 h,以2 500個(gè)細(xì)胞/孔的濃度鋪96孔板,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔。24 h后轉(zhuǎn)染(方法同前述),轉(zhuǎn)染后置于培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。培養(yǎng)96 h后用不含血清的DMEM培養(yǎng)液換液,每個(gè)孔各加10 μ L的CCK-8試劑,置于培養(yǎng)箱1 h后用酶標(biāo)儀測(cè)定每個(gè)孔450 nm波長(zhǎng)的吸光度,通過(guò)比較實(shí)驗(yàn)組與NC組及空白組的吸光度來(lái)反映有活性的細(xì)胞數(shù)量的差別。

    1.2.5 細(xì)胞克隆形成實(shí)驗(yàn):為進(jìn)一步觀察miR-34c對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)的長(zhǎng)期抑制作用,我們對(duì)轉(zhuǎn)染后細(xì)胞的克隆形成能力進(jìn)行研究。鋪板、轉(zhuǎn)染后72 h,胰酶消化、收集、離心各組細(xì)胞,棄上清,用含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液重懸。細(xì)胞計(jì)數(shù)后,以800個(gè)細(xì)胞/孔的濃度鋪6孔板,混勻,使細(xì)胞均勻地分布于孔的底部。置于培養(yǎng)箱培養(yǎng),每3~4 d換培養(yǎng)液,約14 d后,細(xì)胞在孔底形成肉眼可見(jiàn)的細(xì)胞團(tuán)塊。用結(jié)晶紫染液對(duì)細(xì)胞團(tuán)染色30 min,PBS洗滌2~3次后,拍照、計(jì)數(shù)。

    1.2.6 流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)細(xì)胞凋亡:鋪6孔板、轉(zhuǎn)染后72 h,胰酶消化、收集、離心各組細(xì)胞,棄上清,PBS洗滌、離心2次,根據(jù)Annexin V/PI細(xì)胞凋亡試劑盒的說(shuō)明,使用100μ L緩沖液重懸細(xì)胞,用5 μ L的Annexin V和1 μ L的PI對(duì)細(xì)胞進(jìn)行染色15 min,再用400μ L緩沖液稀釋。用流式細(xì)胞儀測(cè)定細(xì)胞的凋亡。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理方法采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件。各組數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析,并用LSD-t檢驗(yàn)進(jìn)行兩兩比較。每個(gè)實(shí)驗(yàn)至少重復(fù)3次,結(jié)果以±s表示。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 轉(zhuǎn)染效率細(xì)胞轉(zhuǎn)染FAM標(biāo)記的hsa-miR-34c mimics 24 h后,在熒光顯微鏡下可見(jiàn)明顯的細(xì)胞內(nèi)熒光(見(jiàn)圖1A)。通過(guò)流式細(xì)胞技術(shù)比較實(shí)驗(yàn)組與空白組帶熒光細(xì)胞量(見(jiàn)圖1B),實(shí)驗(yàn)組的轉(zhuǎn)染效率為81.16%。

    圖1 轉(zhuǎn)染后24 h細(xì)胞熒光及轉(zhuǎn)染效率

    2.2 轉(zhuǎn)染后細(xì)胞miR-34c的表達(dá)上調(diào)轉(zhuǎn)染48 h后,通過(guò)實(shí)時(shí)熒光定量PCR測(cè)定miR-34c的相對(duì)表達(dá)量,根據(jù)圖2A和圖2B的融解曲線判斷,miR-34c及U6的引物特異性較好,可認(rèn)為PCR結(jié)果可靠。用2-△△Ct法計(jì)算miR-34c相對(duì)表達(dá)量顯示:實(shí)驗(yàn)組為373.43±74.95,NC組為1.01±0.19,空白組為1.14±0.16。實(shí)驗(yàn)組的miR-34c表達(dá)量明顯高于NC組及空白組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(見(jiàn)圖2C)。

    2.3 轉(zhuǎn)染miR-34c能抑制細(xì)胞的增殖轉(zhuǎn)染96 h后,加入CCK-8后,用酶標(biāo)儀測(cè)得每組的450 nm波長(zhǎng)的吸光度,結(jié)果顯示:實(shí)驗(yàn)組為0.56±0.02,NC組為1.00±0.04,空白組為1.03±0.02。實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞增殖明顯受抑制,抑制率約為44%,與NC組及空白組相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(見(jiàn)圖3)。

    2.4 miR-34c抑制細(xì)胞克隆的形成細(xì)胞生長(zhǎng)14 d后,實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖4A,實(shí)驗(yàn)組的細(xì)胞克隆形成能力明顯下降。統(tǒng)計(jì)細(xì)胞克隆數(shù)(見(jiàn)圖4B),實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞克隆數(shù)明顯少于NC組和空白組(實(shí)驗(yàn)組為48.7 ±2.5,NC組為149.6±4.0,空白組為143.0± 2.6),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

    圖2 實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)miR-34c的表達(dá)情況(2-△△Ct法)

    圖3 轉(zhuǎn)染后96 h細(xì)胞增殖情況(450 nm波長(zhǎng))

    2.5 miR-34c促進(jìn)細(xì)胞凋亡轉(zhuǎn)染72 h后,流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)細(xì)胞的凋亡(見(jiàn)圖5),右下象限為早期凋亡細(xì)胞,右上象限為晚期凋亡細(xì)胞,兩者之和為細(xì)胞總的凋亡。實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞凋亡率高于NC組和空白組(實(shí)驗(yàn)組為11.96±0.90,NC組為5.05±0.43,空白組為5.25±0.83),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

    圖4 細(xì)胞克隆形成實(shí)驗(yàn)

    3 討論

    miRNA為近年來(lái)腫瘤治療的研究熱點(diǎn)。越來(lái)越多的研究顯示其通過(guò)轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)腫瘤相關(guān)蛋白表達(dá),顯著改變多種腫瘤細(xì)胞的增殖、凋亡、細(xì)胞周期及侵襲能力等[6,9],在腫瘤診斷及治療方面有著極大的潛力。

    近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn)miR-34家族成員(包括miR-34a、miR-34b和miR-34c)是p53抑癌基因的靶點(diǎn),通過(guò)與p53的相互作用而起到抑癌作用[10]。研究證實(shí)miR-34家族參與多種腫瘤的形成與發(fā)展,包括肝癌、結(jié)腸癌、卵巢癌、神經(jīng)母細(xì)胞瘤及白血病等[11-12]。目前,關(guān)于miR-34c對(duì)子宮內(nèi)膜癌的生物學(xué)作用的研究甚少,尤其是對(duì)I I型子宮內(nèi)膜癌的作用國(guó)內(nèi)鮮見(jiàn)相關(guān)報(bào)道。

    在分子學(xué)水平理解腫瘤的發(fā)病機(jī)制是成功找到新的治療方法的重要途徑[13]。子宮內(nèi)膜癌I I型較I型少見(jiàn),但是預(yù)后明顯比I型差,病死率高,有學(xué)者認(rèn)為這與I I型子宮內(nèi)膜癌的高侵襲性和高復(fù)發(fā)率相關(guān)[14]。但從分子水平考慮其預(yù)后差是否與miRNA相關(guān)還不清楚,鑒于我們之前研究發(fā)現(xiàn)的miR-34c在I型子宮內(nèi)膜癌中的表達(dá)與正常子宮內(nèi)膜無(wú)明顯差別,而在I I型子宮內(nèi)膜癌中呈明顯低表達(dá)[7],我們認(rèn)為I型和I I型子宮內(nèi)膜癌預(yù)后的差別可能與miR-34c相關(guān)。為進(jìn)一步研究miR-34c的抑癌作用,本研究通過(guò)轉(zhuǎn)染hsa-miR-34c mimics上調(diào)I I型子宮內(nèi)膜癌HEC-1-B細(xì)胞miR-34c的表達(dá)。流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)定轉(zhuǎn)染率達(dá)80%以上。實(shí)時(shí)熒光定量PCR再次驗(yàn)證,結(jié)果顯示實(shí)驗(yàn)組miR-34c表達(dá)明顯上調(diào),與流式細(xì)胞技術(shù)結(jié)果一致,證實(shí)轉(zhuǎn)染成功。用CCK-8試劑測(cè)細(xì)胞增殖能力的改變,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞增殖明顯被抑制。細(xì)胞克隆形成實(shí)驗(yàn)證實(shí)miR-34c對(duì)I I型子宮內(nèi)膜癌有長(zhǎng)期抑制作用。更重要的是,流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)凋亡發(fā)現(xiàn)miR-34c也能促進(jìn)細(xì)胞凋亡。通過(guò)實(shí)驗(yàn)的觀察,我們發(fā)現(xiàn)細(xì)胞的凋亡能進(jìn)一步抑制細(xì)胞增殖及細(xì)胞克隆形成能力。根據(jù)以上結(jié)果,我們認(rèn)為miR-34c是I I型子宮內(nèi)膜癌的潛在抑癌基因。

    Tanaka等[15]對(duì)間皮細(xì)胞中miR-34的作用進(jìn)行研究,證明miR-34通過(guò)調(diào)節(jié)MET蛋白表達(dá)抑制細(xì)胞增殖,并調(diào)節(jié)Bcl-2蛋白的表達(dá)促進(jìn)細(xì)胞凋亡。這與我們?cè)贗I型子宮內(nèi)膜癌中觀察到的結(jié)果一致,但miR-34c在I I型子宮內(nèi)膜癌中的作用機(jī)制及其是否也與MET和Bcl-2有關(guān)仍需進(jìn)一步研究證明。

    綜上所述,miR-34c能明顯抑制I I型子宮內(nèi)膜癌細(xì)胞的增殖,促進(jìn)細(xì)胞凋亡,并可能與I I型子宮內(nèi)膜癌的預(yù)后差相關(guān)。miR-34c作為I I型子宮內(nèi)膜癌的潛在抑癌基因,可能為將來(lái)I I型子宮內(nèi)膜癌在分子水平的早期診斷及治療提供新的方法,成為手術(shù)之外更有效的治療方法之一。但目前大部分miRNA的作用機(jī)制尚未研究清楚,miR-34c的作用機(jī)制還有待進(jìn)一步研究。

    圖5 流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)凋亡

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    (本文編輯:吳健敏)

    The influence of miR-34c on growth and apoptosis of type II endometrial carcinoma cell line HEC-1-B

    LI Fuyao, XUE Jisen, HUANG Yibo, CHEN Huijun, ZHENG Feiyun.Department of Gynecology, the First Affiliated Hospital of Wenzhou Medical University, Wenzhou, 325015

    Objective: To investigate the effect miR-34c on the growth and apoptosis of type II endometrial carcinoma cells (HEC-1-B cell line).Methods:Up-regulated the expression of miR-34c by transfecting cells with hsa-miR-34c mimics, the transfection efficiency was detected by flow cytometry and further verified by quantitative real-time PCR (qRT-PCR). Cell proliferation assay by CCK-8 and colony formation assay applied to demonstrate that miR-34c could inhibit the growth of HEC-1-B cells. Cells apoptosis assay was analyzed by flow cytometry.Results:The transfection efficiency was 81.16%. The overexpression of miR-34c (detected by qRT-PCR) could inhibit cell proliferation, colony formation and promote cells apoptosis (P <0.05).Conclusion:MiR-34c can inhibit the growth and promote apoptosis of HEC-1-B cells significantly, and function is a potential tumor suppressor in type II endometrial carcinoma.

    miR-34c; type II endometrial carcinoma; cell; proliferation; apoptosis

    R711

    A

    1000-2138(2014)02-0086-05

    2013-09-25

    浙江省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(Y2 090 69 9)。

    李甫鑰(1989-),男,浙江蒼南人,碩士生。

    鄭飛云,主任醫(yī)師,碩士生導(dǎo)師,Email:zfy5710 @163.com。

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