李躍兵,康于慶,葉 靖,趙振龍,林春水,秦再生,古妙寧△
(1.南方醫(yī)科大學(xué)附屬南方醫(yī)院麻醉科,廣州510515;2.浙江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第二醫(yī)院麻醉科,杭州310005)
肢體缺血再灌注(limb ischemia-reperfusion,LIR)在臨床外科中較常見,如動脈損傷或栓塞后再通、斷肢再植、肢體創(chuàng)傷及止血帶的長時(shí)間應(yīng)用等;特別是在地震災(zāi)難中,肢體缺血損傷的致死、致殘率非常高,值得關(guān)注。挽救缺血肢體的關(guān)鍵是盡快恢復(fù)血液循環(huán),但大量研究證明,LIR不僅影響局部缺血組織的存活和功能,還可造成全身炎癥反應(yīng)綜合征(SIRS),并可能導(dǎo)致多臟器功能衰竭(MODS),其中肺是最易受損的器官之一,易造成急性肺損傷(acute lung injury,ALI)[1]。近年來人們對LIR所致ALI的機(jī)制研究多集中在損傷與氧化應(yīng)激方面,凋亡、壞死被認(rèn)為是缺血再灌注(ischemia-reperfusion,I/R)組織細(xì)胞的病理結(jié)局[2-5]。但隨著研究的深入,自噬被認(rèn)為能夠被各種損傷及氧化應(yīng)激等誘發(fā)[6-8]。本研究旨在觀察大鼠LIR-ALI肺組織細(xì)胞早期自噬及其相關(guān)蛋白的表達(dá)。
1.1 材料 選取健康雄性SPF級SD大鼠12只,體質(zhì)量220~250g,由南方醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物中心提供[許可證號:SCXK(粵)2011-0015]。所有動物飼養(yǎng)和實(shí)驗(yàn)操作程序符合南方醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物福利倫理委員會相關(guān)規(guī)定,并經(jīng)南方醫(yī)科大學(xué)動物倫理委員會批準(zhǔn)。
1.2 試劑和儀器 Trizol(Invitrogen公司)、第1鏈cDNA的合成試劑盒(TaKaRa公司)、SYBR實(shí)時(shí)熒光定量PCR(RTPCR)試劑盒(TaKaRa公司)、RT-PCR逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen公司產(chǎn)品)、GDS7600(DF-23B)凝膠掃描系統(tǒng)(英國UVP公司)、Stratagene Mx3000PReal time PCR儀(美國Agilent公司)、十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)垂直電泳槽(美國Bio-Rad公司)。
1.3 方法
1.3.1 模型制備 采用大鼠雙下肢缺血3h再灌注4h制備LIR-ALI模型。實(shí)驗(yàn)前大鼠在實(shí)驗(yàn)室適應(yīng)性飼養(yǎng)1d,術(shù)前禁食12h,自由飲水,實(shí)驗(yàn)前2h禁水。隨機(jī)數(shù)字表法分為假手術(shù)(Sham)組及I/R組,每組6只。稱質(zhì)量后大鼠3%戊巴比妥鈉(首劑40mg/kg,維持劑量20mg/kg)腹腔注射麻醉后固定于動物手術(shù)臺上。Sham組僅雙側(cè)股三角處切開皮膚,分離出股動脈,絲線標(biāo)記不結(jié)扎,縫合創(chuàng)口。I/R組分離出股動脈后,于近腹股溝韌帶處用無創(chuàng)微動脈夾夾閉股動脈使雙下肢缺血,縫合創(chuàng)口再以適度松緊的橡皮帶環(huán)繞結(jié)扎雙下肢根部以防側(cè)支循環(huán),以捫不到足背動脈搏動、雙足變暗變涼為缺血成功的標(biāo)志;3h后打開原切口,去除動脈夾恢復(fù)雙下肢血流再灌注4 h,動脈搏動恢復(fù)及雙足逐漸變紅變暖為建立LIR模型成功。
1.3.2 觀察指標(biāo) (1)再灌注4h末即刻剖開胸腔,直視下經(jīng)心尖部穿刺抽取3~4mL全血,4℃、3 000r/min離心10min后取上清液,置于-70℃凍存待測乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH),并放血處死大鼠。(2)取雙肺組織,4℃的冰0.9%NaCl溶液浸泡,肺變白后取下左肺放置于4%的多聚甲醛固定24h以上,石蠟包埋后切片行免疫熒光染色測量,采用盲法由??漆t(yī)師在倒置熒光顯微鏡下閱片,觀察肺組織免疫熒光特異性標(biāo)記抗體的表達(dá),并利用Image J2x軟件進(jìn)行免疫熒光強(qiáng)度分析。(3)利用RT-PCR法檢測各組肺組織Beclin1和自噬相關(guān)基因(autophagy related genes,ATG)5mRNA表達(dá):取右側(cè)肺組織100mg,采用Trizol試劑盒抽提總RNA,逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)合成cDNA,然后采用PCR儀進(jìn)行擴(kuò)增。引物序列如下 GAPDH 正向引物:5′-CCT CGT CTC ATA GAC AAG ATG GT-3′,反向引物:5′-GGG TAG AGT CAT ACT GGA ACA TG-3′;Beclin1正向引物:5′-GGG GCC TAA AGA ATG GAG GG-3′,反向引物:5′-CGT GTC CAG TTT CAG AGG CT-3′;ATG5正向引物:5′-ACT GAA CGA GAA GCA GAG CC-3′,反向引物:5′-TGT TCC AAG GCA GAG CTG AG-3′,引物是由Invitrogen公司合成。PCR反應(yīng)條件:95℃30s,95℃5s,60℃30s,40個(gè)循環(huán),用 Agilent Stratagene RT-PCR儀Mx3000P進(jìn)行RT-PCR實(shí)驗(yàn),測定Beclin1和ATG5mRNA的表達(dá)定量。(4)蛋白免疫印跡法(Western blot)檢測LC3蛋白表達(dá):取下剩余右側(cè)肺組織100mg,-80℃保存,Western blot測量肺組織LC3蛋白含量,并計(jì)算LC3-Ⅱ/GAPDH的蛋白含量比值。目的蛋白采用SDS-PAGE,轉(zhuǎn)膜結(jié)束后,取出PVDF膜和凝膠,將凝膠用靠馬斯亮藍(lán)染色觀察轉(zhuǎn)移效率;將PVDF膜分別放入裝有3mL抗LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ抗體中,洗膜后再放入含有3mL辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG,1%BSA-TBS 1∶5 000稀釋;最后進(jìn)行化學(xué)發(fā)光、顯影及定影,將膠片進(jìn)行掃描或拍照,用凝膠圖像處理系統(tǒng)分析條帶凈光密度值。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),并做方差齊性檢驗(yàn);以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 大鼠血清LDH測定 血清LDH Sham組為(2.35±0.01)U/L,I/R組為(6.66±0.03)U/L,兩組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=119.242,P=0.000);I/R組血清LDH 的活性顯著升高,提示大鼠LIR-ALI模型制備成功。
2.2 肺組織免疫熒光病理變化及特異性標(biāo)記抗體表達(dá) 免疫熒光染色鏡下Sham組可見正常肺組織且結(jié)構(gòu)清晰,而I/R組肺組織結(jié)構(gòu)紊亂且肺泡壁增厚;免疫熒光強(qiáng)度值Sham組為5.54±0.09,I/R組為9.58±0.21,兩組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=17.979,P=0.000);I/R組的肺組織免疫熒光特異性標(biāo)記抗體高表達(dá),見圖1。
圖1 兩組大鼠的肺組織免疫熒光圖(×10)
2.3 肺組織Beclin1和ATG5mRNA相對定量表達(dá) I/R組與Sham組Beclin1和 ATG5mRNA 2-△△CT比值分別為12.72±0.13、18.34±0.08,兩組比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),見表1。
表1 兩組大鼠的肺組織Beclin1和ATG5mRNA相對定量表達(dá)結(jié)果(±s)
表1 兩組大鼠的肺組織Beclin1和ATG5mRNA相對定量表達(dá)結(jié)果(±s)
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續(xù)表1 兩組大鼠的肺組織Beclin1和ATG5mRNA相對定量表達(dá)結(jié)果(±s)
續(xù)表1 兩組大鼠的肺組織Beclin1和ATG5mRNA相對定量表達(dá)結(jié)果(±s)
2-△△CT:I/R組目的基因表達(dá)相對于Sham組的變化倍數(shù);**:P<0.01,與Sham組比較。
組別 ATG5CT GAPDH CT △CT(Avg.ATG5CT-Avg.GAPDH CT) △△CT(Avg.△CT-Avg.△CT mean) 2-△△CT Sham組 28.68±0.06 18.96±0.07 9.72±0.09 0.00±0.09 1.00±0.09 I/R組 24.61±0.05 19.08±0.06 5.53±0.08 -4.20±0.08 18.34±0.08**
2.4 Western blot法檢測LC3蛋白含量及LC3-Ⅱ/GAPDH比值 LC3-Ⅰ蛋白含量凈光密度值Sham組1 699.646±20.761,I/R組6 707.375±42.641,兩組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=105.590,P<0.01);LC3-Ⅱ蛋白含量凈光密度值Sham組5 783.733±53.297,I/R組12 961.459±204.518,兩組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=33.962,P<0.01);GAPDH 蛋白含量凈 光 密 度 值 Sham 組 7 631.270±45.566,I/R 組7 531.818±8.651,兩組比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=2.144,P>0.05);LC3-Ⅱ/GAPDH比值,Sham組0.758±0.007,I/R組1.721±0.027,兩組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=34.130,P<0.01),見圖2、3。
圖2 兩組大鼠的肺組織LC3蛋白Western blot結(jié)果
圖3 兩組大鼠的肺組織LC3蛋白水平
自噬與凋亡的關(guān)系是生命科學(xué)研究的一個(gè)熱點(diǎn),雖然自噬在除肺組織以外的臟器系統(tǒng)中研究取得了較大進(jìn)步,但有關(guān)LIR-ALI與自噬方面的相關(guān)研究甚少[9]。自噬為真核細(xì)胞所特有,是細(xì)胞內(nèi)的物質(zhì)成分利用溶酶體被降解過程的統(tǒng)稱。細(xì)胞對內(nèi)外環(huán)境壓力變化如發(fā)育、衰老、損傷、缺血缺氧等可誘發(fā)自噬,在某些情況下還可導(dǎo)致細(xì)胞死亡。自噬被認(rèn)為是區(qū)別于細(xì)胞凋亡的另一種細(xì)胞程序性死亡形式,前者屬Ⅰ型,后者為Ⅱ型[10]。
有研究認(rèn)為,常溫下肌肉骨骼肌是肢體最易缺血的組織,僅可耐受缺血4h[11]。肢體I/R可引起氧化應(yīng)激導(dǎo)致肺血管細(xì)胞損傷,而自噬可能是該類損傷的一種可誘導(dǎo)的適應(yīng)性反應(yīng)。自噬的發(fā)生需要眾多關(guān)鍵ATG的參與,其中ATG12和ATG5結(jié)合形成自噬體前體,他們的高表達(dá)促進(jìn)自噬的激活[12]。本研究中,大鼠雙下肢缺血3h再灌注4h引起了肺組織免疫熒光染色特異性標(biāo)記抗體的高表達(dá),而用半定量RTPCR法測定Beclin1和ATG5mRNA相對表達(dá)量亦增高,促進(jìn)了自噬的激活。
目前測量自噬的作用途徑大致分為3類:顯微鏡檢查、靜態(tài)生化測量(如 Western blot)、動態(tài)生化測量。其中,免疫熒光染色法能更好地檢測各個(gè)時(shí)期的自噬小體,而自噬最多的檢測方法是利用 Western blot檢測LC3[13]。
LC3-Ⅰ/Ⅱ和Beclin1是兩個(gè)重要的自噬相關(guān)分子,被廣泛地用來研究自噬的發(fā)生、發(fā)展。LC3是自噬體的標(biāo)志性蛋白,當(dāng)自噬被誘導(dǎo),細(xì)胞質(zhì)中的LC3前體通過蛋白水解轉(zhuǎn)化成LC3-Ⅰ,再進(jìn)一步轉(zhuǎn)化成磷脂酰乙醇胺結(jié)合的LC3-Ⅱ,LC3-Ⅱ被認(rèn)為是自噬性細(xì)胞死亡的特異性分子標(biāo)志物[13]。特別是LC3-Ⅱ含量的多少與自噬泡數(shù)量的多少呈正比,因此可以根據(jù)LC3的水平來推測自噬作用的大小。在肺血管細(xì)胞中,炎性標(biāo)志物高表達(dá)引發(fā)自噬,LC3-Ⅰ轉(zhuǎn)化增加并聚集,自噬量進(jìn)一步增加,從而引起肺支氣管上皮細(xì)胞死亡及組織損傷[14]。本研究中大鼠 LIR-ALI模型 LC3-Ⅰ、LC3-Ⅱ、LC3-Ⅱ/GAPDH均增高,說明LIR-ALI導(dǎo)致肺組織自噬上調(diào)。
綜上所述,LIR-ALI可誘導(dǎo)自噬發(fā)生并促其相關(guān)蛋白高表達(dá),本研究為進(jìn)一步明確LIR-ALI與自噬的發(fā)病機(jī)制奠定了基礎(chǔ)。筆者將利用該抑制劑和激活劑進(jìn)一步研究LIR-ALI的作用機(jī)制及臨床藥物/技術(shù)對其干預(yù)效果。
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