賈琳斐,郭 姣,李清宇,范巧寧,張偉剛,彭 晶,段玉峰
(陜西師范大學(xué)食品工程與營(yíng)養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,陜西西安710119)
響應(yīng)曲面法優(yōu)化海紅果水溶性多糖提取工藝及抗氧化活性的研究
賈琳斐,郭 姣,李清宇,范巧寧,張偉剛,彭 晶,段玉峰*
(陜西師范大學(xué)食品工程與營(yíng)養(yǎng)科學(xué)學(xué)院,陜西西安710119)
采用響應(yīng)曲面法優(yōu)化海紅果水溶性多糖(MPB)提取工藝的條件。在單因素實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)上依據(jù)回歸分析確定最佳工藝條件為:提取溫度86℃,提取時(shí)間4h,料液比1∶28g/mL,MPB的實(shí)際提取率可達(dá)8.33%。用MPB對(duì)羥基自由基(·OH)、超氧陰離子自由基(O2-·)、DPPH自由基進(jìn)行清除能力和還原力的測(cè)定,研究MPB的抗氧化能力。結(jié)果表明,MPB對(duì)·OH、O2-·、DPPH均有一定的清除能力,對(duì)DPPH的清除作用尤為明顯,當(dāng)質(zhì)量濃度達(dá)到1mg/mL時(shí),清除率達(dá)到87.12%,接近VC的94.47%,且MPB清除DPPH的IC50值為1.181mg/mL。
海紅果,多糖,響應(yīng)面分析,抗氧化活性
海紅果(Malus prunifolia(wild)Borkh)是薔薇科蘋果屬楸子的果實(shí)[1],學(xué)名西府海棠,又名海紅子、海棠果、子母海棠、小果海棠[2],主要分布于我國(guó)的晉、陜、蒙三省交界處[3]。海紅果營(yíng)養(yǎng)豐富,經(jīng)常食用可健胃消食、增強(qiáng)食欲[4],軟化血管,成分分析研究表明,海紅果中含有人體必需的氨基酸、維生素及各種微量元素,素有“鈣王”之稱[5],某些地區(qū)以海紅果代替山楂入藥,具有醒腦提神、去膩除腥的功效。
目前海紅果的研究主要集中在果制品、保健食品等領(lǐng)域,應(yīng)用在化妝品研發(fā)和藥物治療方面少之又少[6]。經(jīng)研究,植物多糖具有增強(qiáng)免疫[7]、降血糖、降血脂、抗病毒、抗腫瘤、抗衰老[8-9]的作用。海紅果中含有大量的多糖[10],多糖的提取方法有水提法、酶提法、微波提取法、超聲波輔助提取法等[11],本研究以海紅果為原料,應(yīng)用響應(yīng)曲面法優(yōu)化熱水浸提法提取海紅果中多糖的最佳工藝條件,以期為海紅果多糖的開發(fā)和綜合研究提供理論依據(jù)[12]。大部分多糖具有抗氧化作用[13],目前對(duì)海紅果多糖抗氧化活性的研究尚未見相關(guān)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)對(duì)海紅果多糖粗提物進(jìn)行了抗氧化活性研究,以期為進(jìn)一步研究海紅果多糖的性質(zhì)及功能奠定基礎(chǔ)。
1.1 材料與儀器
海紅果 購(gòu)于山西保德縣;95%乙醇、苯酚、濃硫酸、葡萄糖 均為分析純;1,1-二苯基-2-苦苯肼自由基(DPPH)、抗壞血酸(VC)、鐵氰化鉀([K3Fe(CN)6])、三羥基甲基氨基甲烷(Tris)、鄰苯三酚(焦性沒食子酸)、水楊酸 均為國(guó)產(chǎn)分析純?cè)噭?/p>
紫外分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海亞榮生化儀器廠;ALPHA 1-4型真空冷凍干燥機(jī) 德國(guó)CHRIST公司。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 海紅果多糖提取工藝 海紅果→粉碎→烘干(50℃)→取其粉末(加95%乙醇溶解)→水浴加熱(80℃,4h)→濾渣→烘干(50℃)→取粉末溶解(加蒸餾水)→水浴加熱→濾液→減壓濃縮至原溶液體積的1/3→醇沉(三倍體積95%乙醇,靜置12h)→取沉淀溶解(加蒸餾水)→脫蛋白(加入1/3體積氯仿∶正丁醇為3∶1)→攪拌→離心(30min,3000r/min)→上清液→透析48h→冷凍干燥→得海紅果粗多糖。
1.2.2 單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
1.2.2.1 時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響 準(zhǔn)確稱50g海紅果粉末分別置于500mL的圓底燒瓶中,按提取溫度為70℃,料液比為1∶20(g/mL),考察不同提取時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響,設(shè)計(jì)提取時(shí)間為2、3、4、5、6h,采用苯酚硫酸法測(cè)其多糖提取率。
1.2.2.2 溫度對(duì)多糖提取率的影響 準(zhǔn)確稱50g海紅果粉末分別置于500mL的圓底燒瓶中,按提取時(shí)間為4h,料液比為1∶20(g/mL),考察不同提取溫度對(duì)多糖得率的影響,設(shè)計(jì)提取溫度為50、60、70、80、90℃,采用苯酚硫酸法測(cè)其多糖提取率。
1.2.2.3 料液比對(duì)多糖提取率的影響 準(zhǔn)確稱50g海紅果粉末分別置于500mL的圓底燒瓶中,按提取時(shí)間為4h,提取溫度為80℃,考察不同提取溫度對(duì)多糖提取率的影響,設(shè)計(jì)料液比為1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30g/mL,采用苯酚硫酸法測(cè)其多糖提取率。
1.2.3 海紅果多糖提取工藝條件優(yōu)化 在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,采用Design Expert 7.1.6統(tǒng)計(jì)分析軟件中Box-Behnken實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理[14],設(shè)計(jì)響應(yīng)曲面分析實(shí)驗(yàn)。各因子編碼值見表1。
表1 響應(yīng)面分析因素與水平Table 1 Factors and levels of RAS test
1.2.4 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 精確稱取葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2mL分別置于干燥的試管中,各以水補(bǔ)至2.0mL,然后加入5%的苯酚溶液1.0mL及濃硫酸5mL,充分搖勻,室溫放置30min后在488nm處測(cè)定各溶液的吸光度,以2.0mL水按同樣步驟作為空白對(duì)照,再以葡萄糖濃度x(μg/mL)為橫坐標(biāo),吸光度y(Abs)為縱坐標(biāo)制作標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)線性回歸方程。
1.2.5 多糖提取率計(jì)算
1.2.5.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 采用苯酚-硫酸法[15]。
1.2.5.2 多糖提取率的測(cè)定 稱取海紅果粗多糖20.0mg,用蒸餾水溶解并轉(zhuǎn)移至500mL容量瓶中,定容至刻度,搖勻之后,吸取2mL按照1.2.4制作標(biāo)準(zhǔn)曲線的操作方式操作后在488nm處測(cè)定吸光度,代入回歸方程計(jì)算多糖含量,根據(jù)公式計(jì)算多糖的提取率:
式中:W1:海紅果粉末的質(zhì)量(g);W2:由W1提取的粗多糖的質(zhì)量(g);W3:從W2中稱取的用于分析測(cè)定的粗多糖的質(zhì)量(g);V:溶解W3定容后的體積(L);C:由回歸方程計(jì)算所得的多糖的濃度(g/L)。
1.2.6 體外抗氧化活性的研究
1.2.6.1 MPB對(duì)羥基自由基(·OH)的清除作用 采用水楊酸法[16],向試管中依次加入2mL 6mmol/L的FeSO4以及2mL不同濃度的多糖溶液,6mmol/L的H2O2溶液2mL,搖勻,靜置10min,再加入6mmol/L的水楊酸溶液2mL,搖勻,靜置30min后與510nm處測(cè)定吸光值,以VC作陽性對(duì)照,·OH的清除率按以下公式計(jì)算:
式中:A0—不加樣品溶液的吸光值;As—加入樣品溶液反應(yīng)后的吸光值;Ax—不加水楊酸溶液時(shí)MPB的吸光值。
1.2.6.2 MPB對(duì)超氧陰離子自由基(O2-·)的清除作用 采用鄰苯三酚自氧化法[17]。取pH為8.12的Tris-HCL緩沖液6mL,分別加入不同質(zhì)量濃度MPB溶液0.5mL,37℃水浴10min,最后加入預(yù)熱過的7mmol/L鄰苯三酚鹽溶液(PR)1mL,混勻后精確反應(yīng)4min,用0.5mL濃鹽酸終止反應(yīng),測(cè)325nm處吸光度值A(chǔ),即為加入MPB溶液后鄰苯三酚的自氧化速率A樣品。以VC作陽性對(duì)照,O2-·的清除率按以下公式計(jì)算:
式中:A0—鄰苯三酚自氧化速率空白對(duì)照;A—加入樣品溶液反應(yīng)鄰苯三酚自氧化速率。
1.2.6.3 MPB對(duì)DPPH·的清除作用 采用DPPH氧化法[18],反應(yīng)的總體積為4mL,首先加入1mL不同濃度的MPB溶液,再加入3mL 2×10-4mol/L DPPH·溶液(用95%乙醇配制)充分搖勻,室溫靜置35min,以95%乙醇調(diào)零,陰性對(duì)照不加樣,并以VC作為陽性對(duì)照,最后在517nm處測(cè)各自的吸光度。DPPH·的清除率按以下公式計(jì)算:
式中:A—樣品的吸光度;Ai—陰性對(duì)照。
1.2.6.4 還原能力的測(cè)定 MPB的還原力的測(cè)定按文獻(xiàn)[19]進(jìn)行,往配制好的不同濃度的MPB溶液中加入3mL,0.2mol/L的磷酸鹽緩沖液(pH=6.8)和2.5mL 1%的鐵氰化鉀([K3Fe(CN)6])溶液,45℃水浴30min,加入2mL蒸餾水和1mL FeCl3(0.1%),以VC作為陽性對(duì)照,與700nm處測(cè)定吸光值,吸光度值越大,還原能力越強(qiáng)。
2.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線方程
葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)線性回歸方程為y=0.1013x+0.0886,R2=0.9983。
2.2 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析
2.2.1 時(shí)間對(duì)海紅果多糖提取率的影響 如圖1所示,時(shí)間對(duì)海紅果多糖提取率的影響顯著,在2~4h內(nèi)海紅果多糖提取率隨提取時(shí)間的延長(zhǎng)而呈逐漸上升趨勢(shì);當(dāng)時(shí)間超過4h,隨時(shí)間的延長(zhǎng)提取率逐漸下降,這可能是因?yàn)?,加熱時(shí)間過長(zhǎng),多糖易發(fā)生水解,導(dǎo)致提取率下降。綜合考慮,選定提取時(shí)間為3~5h為最佳提取時(shí)間。
圖1 提取時(shí)間對(duì)多糖提取率的影響Fig.1 Effect of extraction time on extraction rate
2.2.2 溫度對(duì)海紅果多糖提取率的影響 由圖2可知,當(dāng)溫度在50~80℃之間時(shí),海紅果多糖提取率隨提取溫度的升高而呈逐漸上升趨勢(shì),當(dāng)溫度超過80℃時(shí),多糖提取率隨溫度的升高而逐漸下降,這可能是由于溫度過高會(huì)影響多糖結(jié)構(gòu)導(dǎo)致其降解,所以,選70~90℃作為最佳提取溫度。
圖2 提取溫度對(duì)多糖提取率的影響Fig.2 Effect of temperatures on extraction rate
2.2.3 料液比對(duì)海紅果多糖提取率的影響 由圖3可看出當(dāng)料液比在1∶10、1∶15、1∶20、1∶25g/mL時(shí),多糖的提取率隨加水量的增加而呈上升趨勢(shì),這是由于水量多有利于多糖的擴(kuò)散傳質(zhì);當(dāng)料液比超過1∶25時(shí),由于水量過多導(dǎo)致蒸發(fā)困難,而底物濃度過低,多糖的提取率呈逐漸下降趨勢(shì),所以,選擇料液比為1∶20~1∶30g/mL為最佳料液比。
2.3 響應(yīng)面優(yōu)化海紅果多糖提取工藝
2.3.1 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果 根據(jù)Box-Benhnken中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,綜合單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取提取時(shí)間、提取溫度、料液比三個(gè)因素,在單因素實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上采用三因素三水平的響應(yīng)面分析方法,研究三因素不同組合對(duì)海紅果提取率的影響。實(shí)驗(yàn)因素和水平及實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。
圖3 料液比對(duì)多糖提取率的影響Fig.3 Effect of ratio of material to water on extraction rate
表2 Box-Benhnken實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及海紅果多糖提取率的響應(yīng)曲面值Table 2 Box-Behnken design matrix and response values for the yield of MPB
通過中心組合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),得到17組實(shí)驗(yàn),其中1、2、8、10、13是中心實(shí)驗(yàn),用來估計(jì)實(shí)驗(yàn)誤差,其余是析因?qū)嶒?yàn)。對(duì)提取溫度、提取時(shí)間、料液比作如下?lián)Q算:A=(T-80)/10,B=(t-4)/1,C=(a-25)/5,以三次實(shí)驗(yàn)所得多糖的平均值為響應(yīng)值(D),得到回歸方程:D=8.00-0.29A-0.18B+0.33C+0.068AB+0.025AC+0.93BC-1.53A2-0.43B2-0.9C2,實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)與實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表3。
由表3可知,模型的校正決定系數(shù)R2adj=0.9713,說明該模型可以解釋97.13%的響應(yīng)值變化,相關(guān)系數(shù)R=0.9975,說明響應(yīng)值(提取率)的變化有99.75%來源于所選變量,即提取溫度、提取時(shí)間和料液比,表明此模型擬合度較好,實(shí)驗(yàn)誤差小。模型變異系數(shù)CV值為4.26,CV值越小說明實(shí)驗(yàn)穩(wěn)定性越好。由表4可知,各因素中一次項(xiàng)A、B、C是顯著的,交叉項(xiàng)BC是極顯著的,二次項(xiàng)A2、C2是極顯著的,B2是顯著的。
表3 模型方差分析Table 3 Variance for regression equation
2.3.2 響應(yīng)曲面分析 根據(jù)回歸方程,作響應(yīng)曲面圖,考察所擬合的響應(yīng)曲面的形狀,分析提取時(shí)間、提取溫度和料液比對(duì)海紅果得率的影響,響應(yīng)曲面如圖4~圖6所示,3組圖直觀地反映了各因素對(duì)響應(yīng)值的影響。
圖4 D=F(A,B)的響應(yīng)面Fig.4 Responsive surface plot D=F(A,B)
由圖4可知,當(dāng)料液比為最佳值(1∶28)時(shí),提取溫度和提取時(shí)間對(duì)多糖提取率的交互作用。隨著溫度的上升、時(shí)間的延長(zhǎng)多糖提取率均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。提取溫度和提取時(shí)間分別在70~90℃和3~5h的范圍內(nèi),多糖提取率可以達(dá)到本次實(shí)驗(yàn)的最大值。
圖5 D=F(A,C)的響應(yīng)面Fig.5 Responsive surface plot D=F(A,C)
由圖5可知,當(dāng)提取時(shí)間為最佳值(4h)時(shí),提取溫度和料液比對(duì)多糖提取率的交互作用。隨溫度的上升,料液比的增大多糖提取率均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。提取溫度在70~90℃范圍,液料比在1∶20~1∶30范圍時(shí)有較高的多糖提取率。
圖6 D=F(B,C)的響應(yīng)Fig.6 Responsive surface plot D=F(B,C)
由圖6可知,當(dāng)提取溫度為最佳值(86℃)時(shí),提取時(shí)間和料液比對(duì)多糖提取率的交互作用。隨著提取時(shí)間的延長(zhǎng)和料液比的增加呈現(xiàn)先升高后降低的趨勢(shì)。提取時(shí)間在3~5h范圍,料液比在1∶20~1∶30范圍時(shí)有較高的多糖提取率。
由軟件可得海紅果多糖的最佳提取條件工藝為:提取溫度85.8℃,提取時(shí)間3.95h,料液比1∶28.08,此時(shí)提取率達(dá)8.36%。為實(shí)際操作方便,將工藝條件修正為:提取溫度86℃,提取時(shí)間為4h,料液比為1∶28g/mL,此時(shí)提取率為8.33%,實(shí)際測(cè)定值與理論預(yù)測(cè)值相差0.03%。
表4 提取回歸分析結(jié)果Table 4 Results of extraction regression analysis
2.4 MPB體外抗氧化活性結(jié)果與分析
2.4.1 MPB對(duì)·OH清除作用 MPB和VC對(duì)·OH的清除效果見圖7。由圖7可知,MPB和VC在0.2~1mg/mL范圍內(nèi)清除·OH有較好的量效關(guān)系,二者均隨濃度的增加清除率增強(qiáng)。MPB對(duì)·OH的清除率由27.69%增至48.41%,低于同質(zhì)量濃度下抗壞血酸的清除率。
圖7 MPB和VC對(duì)·OH清除效果Fig.7 Scavenging effect of MPB and VCon hydroxyl free
2.4.2 MPB對(duì)O2-·清除作用 MPB和VC對(duì)O2-·清除作用見圖8,由此圖可以看出,在0.2~1mg/mL的范圍內(nèi),MPB和VC對(duì)O2-·自由基的清除具有量效關(guān)系。在小于0.4mg/mL的范圍內(nèi),MPB對(duì)O2-·的清除作用不明顯;0.4~1mg/mL時(shí),隨著MPB濃度的增加對(duì)O2-·的清除率逐漸增強(qiáng),由1.98%增至14.66%。
圖8 MPB和VC對(duì)O2-·清除效果Fig.8 Scavenging effect of MPB and VCon superoxide anion free radicals
2.4.3 MPB對(duì)DPPH·清除作用 MPB和VC對(duì)DPPH·清除作用見圖9,由圖9可以看出,MPB對(duì)DPPH自由基具有一定的清除作用。隨著質(zhì)量濃度增大清除率逐漸增加,在0.2~1mg/mL的范圍內(nèi),清除率由49.24%增至87.12%,在1mg/mL濃度時(shí),接近VC的清除率94.47%。對(duì)MPB作回歸曲線,得到方程:Y=0.929x+ 0.3057(R2=0.909),計(jì)算得出MPB清除DPPH的IC50值為0.209mg/mL;同法,得到VC回歸曲線方程:Y=0.4948x+ 0.3711(R2=0.9852),計(jì)算得出,VC的IC50值為0.058mg/mL,小于DPPH的IC50值。
2.4.4 MPB還原能力測(cè)定 MPB和VC的還原力測(cè)定結(jié)果見圖10。由圖10可以看出隨著VC和MPB濃度增加,吸光度值逐漸增加,還原力逐漸增強(qiáng);在0.2~1mg/mL范圍內(nèi),MPB和VC還原力表現(xiàn)出一定的量效關(guān)系。同濃度VC的還原力略大于MPB。
圖9 MPB和VC對(duì)DPPH·清除效果Fig.9 Scavenging effect of MPB and VCon DPPH radical
圖10 MPB和VC的還原能力Fig.10 Reducing power of MPB and VC
本研究通過單因素及響應(yīng)曲面法實(shí)驗(yàn),確定海紅果多糖的提取率的最佳工藝參數(shù)為:提取溫度86℃,提取時(shí)間4h,料液比1∶28g/mL,海紅果多糖的實(shí)際提取率可達(dá)8.33%。體外抗氧化實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,MPB對(duì)、和自由基均有一定的清除活性,且MPB的還原能力較佳,其中MPB對(duì)DPPH·清除活性尤其明顯,IC50可達(dá)1.181mg/mL。
[1]劉軍海,黃寶旭,蔣德超.響應(yīng)面分析法優(yōu)化艾葉多糖提取工藝研究[J].食品科學(xué),2009,30(2):114-118.
[2]郝志鵬,馬麗杰,吳敬,等.海紅果多糖提取工藝及體外抗氧化活性研究[J].食品科學(xué),2012,33(18):88-92.
[3]程正濤,丁慶波,張昊,等.海紅果多酚提取工藝優(yōu)化[J].食品科學(xué),2010,31(24):172-176.
[4]趙亮,劉恩荔,李青山,等.紫外分光光度法測(cè)定海紅果中總黃酮的含量[J].山西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2006,37(2):169-171.
[5]趙福詩,趙麗芹.我國(guó)華北地區(qū)海紅果生產(chǎn)現(xiàn)狀及發(fā)展前景[J].內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)科技,2008(2):94-96.
[6]趙亮.海紅果藥用價(jià)值的初步研究[D].太原:山西醫(yī)科大學(xué),2006.
[7]Yang Yue-hui,Jiang Qing-hua,Ding Ping-tian.Advances in studies on analytical methods of polysaccharides in plant[J]. Chinese Traditional and Herbal Drugs,2011,42(6):1239-1242.
[8]Jin Di,Liang Ying,Sun Gong-bing,et al.Research progresses on extracting techniques of plant polysaccharide[J].Journal of Heilongjiang Bayi Agricultural University,2011,23(5):76-79.
[9]Ge Y,Duan Y F,F(xiàn)ang G Z,et al.Study on biological activities of Physalis alkekengi var francheti polysaccharide[J].J Sci Food Agric,2009,89(9):1593-1598.
[10]楊翠玲.海紅果化學(xué)成分的研究[D].太原:山西醫(yī)科大學(xué),2007.
[11]伊艷,高文宏,于淑娟.多糖提取技術(shù)的研究進(jìn)展[J].食品工業(yè)科技,2007,28(2):248-249.
[12]王晶.基于響應(yīng)曲面法的多響應(yīng)文穩(wěn)健性參數(shù)優(yōu)化方法研究[D].天津:天津大學(xué),2009.
[13]劉杰超,焦中高,周紅平,等.水果活性多糖的研究現(xiàn)狀與展望[J].食品科學(xué),2008,29(10):675-679.
[14]張惟杰.糖復(fù)合物生化研究技術(shù)[M].浙江:浙江大學(xué)出版社,2003:10-12.
[15]董艷紅,李姝婧,鄭惠華,等.響應(yīng)曲面優(yōu)化超聲波提取靈芝多糖工藝研究[J].食品科學(xué),2009,30(16):98-101.
[16]吳蘭芳,景永帥,張振東,等.吊燈花提取物體外抗氧化活性評(píng)價(jià)[J].食品工業(yè)科技,2010,31(11):78-80.
[17]何釗,馮穎,孫龍,等.黃粉蟲多糖響應(yīng)面法提取及抗氧化活性[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2011,30(5):641-647.
[18]聶少平,謝明勇,羅珍.用清除有機(jī)自由基DPPH法評(píng)價(jià)茶葉多糖的抗氧化活性[J].食品科學(xué),2006,27(3):34-36.
[19]Isabel C F R Ferreira,Maria-Joao R P Queiroz,Miguel Vilas -Boas,et al.Evaluation of the antioxidant properties of diarylamines in the benzo[b]thiophene series by free radical scavenging activity and reducing power[J].Bioorganic&Medicinal Chemistry Letters,2006,1384-1387.
表5 L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 5 The design and results of orthogonality experiment
從徐州地區(qū)的24份天然發(fā)酵泡菜和50份天然發(fā)酵酸菜中初篩出174株產(chǎn)酸菌株;復(fù)篩后選出6株發(fā)酵乳pH低于3.6的菌株,進(jìn)行耐酸性實(shí)驗(yàn),發(fā)現(xiàn)菌株HLAB0143能在pH2.5的條件下生長(zhǎng),具有良好的耐酸能力,紙層析顯示其發(fā)酵液主要為乳酸。采用形態(tài)學(xué)、生理生化實(shí)驗(yàn)和16s rDNA測(cè)序分析,確認(rèn)該菌株為干酪乳桿菌。通過正交實(shí)驗(yàn),確定了該菌株的最佳生長(zhǎng)條件,即溫度為37℃、接種量為1%(v/v)、初始pH控制為5。該菌株耐受低pH的主要機(jī)制為具有谷氨酸脫羧酶系活性,可轉(zhuǎn)化谷氨酸為γ-氨基丁酸。生長(zhǎng)特性和耐酸機(jī)制的定性研究為該菌株的后續(xù)研究和開發(fā)應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn)
[1]趙婧,李慧,張玉玉,等.高產(chǎn)酸乳酸菌的篩選、鑒定和生長(zhǎng)特性研究[J].食品工業(yè)科技,2013,23(3):173-176.
[2]張大為,張潔,丁成華.嬰兒腸道內(nèi)嗜酸乳桿菌L2的篩選及菌株代謝產(chǎn)物的初步研究分析[J].食品科學(xué),2008,29(4):221-226.
[3]馬德功,王成忠,崔文文,等.發(fā)酵香腸乳酸菌發(fā)酵劑篩選標(biāo)準(zhǔn)[J].肉類研究,2007,21(12):36-38.
[4]茍興華,王艷文,李翔,等.耐酸乳酸菌的篩選及初步鑒定[J].成都大學(xué)學(xué)報(bào),2010,29(2):95-97.
[5]鄭睿行,馬力,曾劍超,等.嗜酸乳桿菌發(fā)酵乳飲料生產(chǎn)工藝和穩(wěn)定性的研究[J].農(nóng)產(chǎn)品加工,2008(1):41-42.
[6]金蘇.發(fā)酵菌種和益生菌在乳酸菌相關(guān)產(chǎn)品中的健康新應(yīng)用[C].乳酸菌與健康國(guó)際研討文集,2005:73.
[7]Rajiv I,Dave,Nagendra P.Viability of Yoghurt and Probiotic Bacteria in Yoghurts Made from Commercial Starter Cultures[J]. International Dairy Journal,1997(5):31-41.
[8]Kalantzopoulos G.Fermented Products with Probiotic Qualities [J].Anaerobe,1997,10:185-190.
[9]Cathy J,Saloff C.Health benefits of fermented milks and probiotics:an overview[J].Danone World Newsletter,1997(15):1-10.
[10]Fumiyasu I.Probiotics from Present to Future[J].The 2nd International symposium on Lactic Acid Bacteria and Health,2006(5):30-31.
[11]金龍,王志耕,薛秀恒,等.優(yōu)良發(fā)酵劑的篩選鑒定及菌株生長(zhǎng)條件優(yōu)化的研究[J].包裝與食品機(jī)械,2010(2):21-26.
[12]茍興華,王艷文,李翔,等.耐酸乳酸菌的篩選及初步鑒定[J].成都大學(xué)學(xué)報(bào),2010,29(2):95-97.
[13]東秀珠,蔡妙英,等.常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)[M].北京:科學(xué)出版社,2001:364-366.
[14]霍貴成.乳酸菌的研究與應(yīng)用[M].北京,中國(guó)輕工業(yè)出版社,2007:54-56.
Study on optimization of water-soluble polysaccharides extraction from Malus prunifolia(wild)Borkh using response surface methodology and its antioxidant activities in vitro
JIA Lin-fei,GUO Jiao,LI Qing-yu,F(xiàn)AN Qiao-ning,ZHANG Wei-gang,PENG Jing,DUAN Yu-feng*
(College of Food Engineering and Nutritional Science,Shaanxi Normal University,Xi’an 710119,China)
Box-Behnken design was used to optimize the extraction conditions of water-soluble polysaccharides from Malus prunifolia(wild)Borkh.The experimental data were fitted to a second-order polynomial equation using multiple regression analysis and also examined using the appropriate statistical methods.The optimum extraction conditions were:optimized extraction time 4h,extraction temperature 86℃,and ratio of water to raw material 1∶28g/mL,the predicted yield of polysaccharides extracted was 8.33%.The antioxidant activity of the extraction was evaluated by scavenging hydroxyl radical(·OH),superox ide an ion free radical(O2-·),1-diphenyl-2-picrylhydrazy(DPPH·)and reducing power.The in vitro antioxidant results showed that the inhibition effects of MPB on·OH,O2-·,DPPH significant,MPB showed significant inhibitory effects on DPPH with IC50values of 1.181mg/mL,when the concentration of polysaccharides up to 1mg/mL,the scavenging capacity reached 87.12%,close to 94.47%by VC.
Malus prunifolia(wild)Borkh;polysaccharides;response surface methodology;antioxidation
TS201.2
B
1002-0306(2014)10-0252-06
10.13386/j.issn1002-0306.2014.10.048
2013-08-28 *通訊聯(lián)系人
賈琳斐(1987-),女,碩士研究生,研究方向:食品功能成分開發(fā)及利用。
陜西省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2003B08,2006B16)。