杜 旭,王瑞輝,王孟林,張曉芹,胥 冰,胡 薇
(陜西中醫(yī)學(xué)院,陜西 咸陽(yáng) 712046)
周圍神經(jīng)損傷是指周圍神經(jīng)干或其分支受到外界直接或間接力量作用而發(fā)生的損傷,屬中醫(yī)“痿證”范疇,臨床上已屬于針灸病譜中神經(jīng)系統(tǒng)的第三大疾病[1]。顯微外科修復(fù)手術(shù)、細(xì)胞移植等技術(shù),激素、神經(jīng)生長(zhǎng)因子等藥物的應(yīng)用,均不能使本病的神經(jīng)功能恢復(fù)達(dá)到理想狀態(tài)[2]。而大量研究表明,電針療效顯著,能明顯提高本病患者患肢肌力,促進(jìn)功能恢復(fù),減輕后遺癥[3~7],其機(jī)理尚未完全闡明。周圍神經(jīng)損傷后的修復(fù)再生是一個(gè)極其復(fù)雜的過(guò)程,其關(guān)鍵是軸突的再生修復(fù),而損傷的軸突須賴神經(jīng)生長(zhǎng)導(dǎo)向因子的引導(dǎo),向正確的方向和途徑延伸,才能準(zhǔn)確伸入相應(yīng)靶器官,最終完成再生修復(fù)。本文將觀察其中一種導(dǎo)向因子-Slit1在電針治療下的動(dòng)態(tài)變化,以期為電針治療周圍神經(jīng)損傷提供科學(xué)的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
實(shí)驗(yàn)動(dòng)物采用SD大鼠72只,雌雄各半,每天體質(zhì)量200±20g,由西安交通大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供。按隨機(jī)數(shù)字表法分成正常組、模型組和治療組各24只。
兔抗鼠Slit-1多克隆一抗(Santa Cruz Biotechnology)、SP免疫組化試劑盒(北京博奧森生物技術(shù)有限公司)、RT-PCR試劑盒(大連寶生物工程有限公司)、G6805- C型電針機(jī)(上海華誼醫(yī)用儀器有限公司)。
動(dòng)物用10%水合氯醛(0.3 ml/100 g)腹腔注射麻醉。行右后肢背側(cè)縱切口,無(wú)菌條件下暴露并游離坐骨神經(jīng),于梨狀肌下10 mm處將其銳性橫斷,兩斷端用10~0顯微縫合絲線端對(duì)端縫合外膜3針,保持吻合口無(wú)張力,最后分層縫合肌肉和皮膚。
治療組動(dòng)物造模后第2天,取“環(huán)跳”(后肢髖關(guān)節(jié)后上緣)、“足三里”(膝關(guān)節(jié)后外側(cè),腓骨小頭下約5 mm),0.19 mm×10 mm針灸針進(jìn)針0.5 mm后進(jìn)行電針治療(疏密波,5 Hz,強(qiáng)度以肌肉出現(xiàn)輕微抽動(dòng)為度),每天1次,每次15 min,7 d為1個(gè)療程,共治療3個(gè)療程;模型組不做治療,但與治療組同樣進(jìn)行動(dòng)物抓取;正常組不做任何處理。
分別于第1~3療程結(jié)束后當(dāng)天,將各組中8只大鼠用過(guò)量水合氯醛經(jīng)腹腔注射深度麻醉,開(kāi)胸從左心室插管至升主動(dòng)脈,先快速灌注生理鹽水約100 ml,隨后灌注含4%多聚甲醛的磷酸緩沖液300 ml,持續(xù)30 min。快速切開(kāi),暴露坐骨神經(jīng)損傷區(qū)和相應(yīng)節(jié)段脊柱區(qū),嚴(yán)格無(wú)菌操作下取出坐骨神經(jīng)(縫合處近、遠(yuǎn)端各約1 cm,共約2 cm)和相應(yīng)節(jié)段脊髓(L4-L6段,約2 cm)組織。
將所取組織置于4%多聚甲醛磷酸緩沖液內(nèi)固定24 h,常規(guī)石蠟包埋,連續(xù)縱(坐骨神經(jīng))、橫(脊髓)切片(片厚5 μm)。采用SP法常規(guī)染色。每組8例,每例檢測(cè)3張切片,采用Zeiss ImergerA1顯微鏡和DXM1200F CCD圖像采集系統(tǒng)觀察并照相,光鏡下Slit1陽(yáng)性反應(yīng)物為突出背景的棕黃色顆粒,用圖像分析系統(tǒng) Image-Pro Plus5.1 測(cè)定其積分光密度。
將所取組織用冰凍生理鹽水沖洗后迅速置于液氮中,后轉(zhuǎn)至-80 ℃冰箱保存。登錄http://www.ncbi.nlm.nih.gov獲得Slit1全序列,Primer5設(shè)計(jì)相應(yīng)特異性引物,由北京奧科鼎盛生物科技有限公司合成。slit1上游引物序列:5’- TGTGAAGCACGACTGTGTCA -3’;下游引物序列:5’- TAGCCCTCAGCACAGAGACA -3’,擴(kuò)增長(zhǎng)度312bp。內(nèi)參β-actin上游引物序列:5’- TCAGGTCATCACTATCGGCAAT -3’;下游引物序列:5’- AAAGAAAGGGTGTAAAACGCA-3’,擴(kuò)增長(zhǎng)度432bp。首先用Trizol抽提總mRNA,以逆轉(zhuǎn)錄(RT法)先合成cDNA,然后再進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)條件:94 ℃先變性5 min,然后94 ℃30 s,60 ℃45 s,72 ℃40 s,30個(gè)循環(huán),最后72 ℃10 min。RT-PCR產(chǎn)物電泳后用JS-680C全自動(dòng)凝膠成像系統(tǒng)(上海培清)分析掃描,經(jīng)SensiAnsys凝膠圖像分析軟件對(duì)每個(gè)電泳條帶進(jìn)行光密度值測(cè)定,將測(cè)定的光密度值與相應(yīng)內(nèi)參光密度值比較,所得比值作為Slit1mRNA相對(duì)表達(dá)水平的參數(shù)。
模型組與正常組比較,大鼠損傷坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段(L4-L6)中Slit1蛋白積分光密度在第1療程后達(dá)到高峰之后逐漸降低,但仍高于正常組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),說(shuō)明坐骨神經(jīng)損傷后坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段中Slit1 蛋白表達(dá)增加,高于正常水平。治療組與模型組比較,除第3療程后脊髓相應(yīng)段中的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義外(P<0.05),有同樣的趨勢(shì),說(shuō)明電針治療能明顯增強(qiáng)損傷坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段中Slit1蛋白的表達(dá)(見(jiàn)表1、圖1、圖2)。
模型組與空白組比較,大鼠損傷的坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段(L4-L6)中Slit1 mRNA /β-actin mRNA光密度比值在第1療程后達(dá)到高峰之后逐漸降低,但仍高于空白組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),說(shuō)明坐骨神經(jīng)損傷后坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段(L4-L6)中Slit1mRNA表達(dá)增加,高于正常水平。電針組與模型組比較,有同樣的趨勢(shì),說(shuō)明治療能明顯增強(qiáng)損傷的坐骨神經(jīng)中Slit1mRNA的表達(dá)(見(jiàn)表2、圖3、圖4)。
表1 各組大鼠各時(shí)間點(diǎn)坐骨神經(jīng)和脊髓(L4-L6)Slit1蛋白積分光密度(IOD)比較
注:與正常組比較:▲▲P<0.01;與模型組比較:★P<0.05,★★P<0.01
表2 各組大鼠各時(shí)間點(diǎn)坐骨神經(jīng)和脊髓(L4-L6)Slit1/β-actin mRNA光密度(OD)比值比較
注:與正常組比較:▲▲P<0.01;與模型組比較:★★P<0.01
圖1 各組坐骨神經(jīng)Slit1蛋白的表達(dá)(免疫組化)
圖2 各組脊髓(L4-L6)Slit1蛋白的表達(dá)(免疫組化)
圖3 各組坐骨神經(jīng)Slit1mRNA的表達(dá)(RT-PCR)注:A.第1療程結(jié)束后;B.第2療程結(jié)束后;C.第3療程結(jié)束后;1.正常組;2.模型組;3.治療組
圖4 各組脊髓(L4-L6)Slit1mRNA的表達(dá)(RT-PCR)注:A.第1療程結(jié)束后;B.第2療程結(jié)束后;C第3療程結(jié)束后;1.正常組;2.模型組;3.治療組
自1928年Cajal就提出“神經(jīng)趨向性”(neurotropism)概念直至上世紀(jì)90年代中后期?,F(xiàn)已證實(shí),有4種重要的軸突生長(zhǎng)導(dǎo)向分子家族,即Netrins、Slits、Semaphorins和Ephrins[8],可分為吸引性因子和排斥性因子兩類。它們通過(guò)接觸吸引、接觸排斥和化學(xué)吸引、化學(xué)排斥來(lái)調(diào)節(jié)軸突靶向生長(zhǎng),最終導(dǎo)致軸突內(nèi)細(xì)胞骨架的重排,實(shí)現(xiàn)對(duì)生長(zhǎng)錐延伸的精確引導(dǎo),即軸突引導(dǎo)(axon guidance)[9]。Slits為代表性的排斥性因子,分子量170~190 KD,主要由胚胎脊髓聯(lián)合纖維發(fā)育期中樞中線底板處星形膠質(zhì)細(xì)胞分泌[10]。在哺乳動(dòng)物中,Slit1、Slit2在神經(jīng)系統(tǒng)中表達(dá)廣泛,Slit3則存在于海馬,其受體Roundabou(Robo)在神經(jīng)元軸突上表達(dá)。Slit蛋白具有排斥運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元軸突和促進(jìn)感覺(jué)神經(jīng)纖維分支和延伸的雙重作用,性質(zhì)取決于其本身和受體[11]。Slit可以和表達(dá)于軸突表面即原生質(zhì)胞膜上的Robo結(jié)合,引起一系列信號(hào)傳導(dǎo),最終導(dǎo)致細(xì)胞骨架的重排,引導(dǎo)生長(zhǎng)錐延伸至正確的方向[12~15]。已有學(xué)者認(rèn)為,Slit對(duì)感覺(jué)神經(jīng)元周圍突起的作用比中樞突更為敏感[16]??梢?jiàn),生長(zhǎng)錐的導(dǎo)向就是神經(jīng)再生和發(fā)育最為關(guān)鍵和精細(xì)的環(huán)節(jié)之一,高度敏感的生長(zhǎng)錐是神經(jīng)再生的真正前沿。迄今為止,未見(jiàn)PubMed及國(guó)內(nèi)有電針治療周圍神經(jīng)損傷是否影響Slit表達(dá)的論文發(fā)表。
本證屬于中醫(yī)學(xué)“痿證/病”范疇,病機(jī)主要以氣血不足、營(yíng)衛(wèi)不調(diào)為主,臨床治療以“治痿獨(dú)取陽(yáng)明”為原則。故本實(shí)驗(yàn)選足少陽(yáng)膽經(jīng)的“環(huán)跳”和足陽(yáng)明胃經(jīng)的“足三里”穴,因?yàn)椤碍h(huán)跳”是足少陽(yáng)膽經(jīng)與足太陽(yáng)膀胱經(jīng)的交會(huì)穴,是治療下肢痿痹的要穴;“足三里”是胃經(jīng)合穴、下合穴,也是治療下肢痿痹、半身不遂等經(jīng)絡(luò)痹阻病癥的要穴,即“治痿獨(dú)取陽(yáng)明”。研究表明,針刺治療坐骨神經(jīng)痛使用頻次最高的為環(huán)跳,足三里頻次也極高[17];電針“環(huán)跳”和“委中”能有效減少神經(jīng)病理性痛大鼠脊髓相應(yīng)節(jié)段脊髓興奮性氨基酸遞質(zhì)的釋放,促進(jìn)抑制性氨基酸遞質(zhì)的釋放[18];電針能明顯改善結(jié)扎坐骨神經(jīng)造成慢性壓迫性損傷大鼠的痛敏狀態(tài),顯著降低損傷側(cè)脊髓背角膠質(zhì)纖維酸性蛋白(GFAP)活性和促炎性細(xì)胞因子腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白介素-1β(IL-1β)mRNA的表達(dá)[19]。因此,本實(shí)驗(yàn)選取此兩穴配合使用,以疏調(diào)經(jīng)絡(luò)之氣、活血止痛,促進(jìn)周圍神經(jīng)損傷再生與修復(fù)并探究其可能的機(jī)制。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,SD大鼠坐骨神經(jīng)切斷即刻外膜端對(duì)端縫合后應(yīng)用電針治療,在3個(gè)療程(7 d、14 d、21 d)結(jié)束后,損傷的坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段(L4-L6)中Slit1 蛋白及其mRNA表達(dá),除第3療程后脊髓相應(yīng)段中外,其他差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。說(shuō)明電針治療可能就是通過(guò)增強(qiáng)損傷坐骨神經(jīng)和相應(yīng)脊髓段中Slit1蛋白及其mRNA的表達(dá)來(lái)實(shí)現(xiàn)臨床治療作用。但如何影響Slit1蛋白及其mRNA的表達(dá)則是一個(gè)非常復(fù)雜的問(wèn)題,應(yīng)與其受體Robo有關(guān),可能還牽涉到其他神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子等影響軸突、神經(jīng)修復(fù)再生的眾多因素及復(fù)雜的相互關(guān)系,還缺乏全面、綜合的研究。最新研究表明,大鼠坐骨神經(jīng)橫斷傷(SNT)后Robo1、Robo2mRNA和Robo1在背根神經(jīng)節(jié)中第3天表達(dá)開(kāi)始增強(qiáng),高峰在第7天至第14天之間,第21天后回歸低水平,這提示Robo1 通過(guò)在SNT后的上調(diào)來(lái)調(diào)節(jié)生長(zhǎng)錐遷移,促進(jìn)軸突生長(zhǎng)和神經(jīng)纖維的延伸[20]。這與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果基本一致,而電針對(duì)Robo1、Robo2mRNA是否有影響就值得進(jìn)一步探究。總之,電針能促進(jìn)Slit1蛋白及其mRNA的表達(dá),可能是其促進(jìn)周圍神經(jīng)損傷修復(fù)再生的一個(gè)方面,其具體機(jī)制則需進(jìn)一步的研究,最終將為全面揭示電針治療周圍神經(jīng)損傷提供新的科學(xué)依據(jù)。
[1] 杜元灝.現(xiàn)代針灸病譜[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2009:82.
[2] Shai Luria MD, Thana pong Waitayawinyu MD, James Conniff BA, et al. Glatiramer acetate immune system augmentation for peripheral nerve regeneration in rat crushed sciatic nerve model [J].J bone Joint Surg Am,2010,92:396-403.
[3] 王雪冰,蔣擁軍,陳佳旭,等. 電針配合康復(fù)訓(xùn)練治療上肢周圍神經(jīng)損傷療效觀察[J].上海針灸雜志,2011,30(9):604-606.
[4] 李海燕.電針為主綜合治療周圍神經(jīng)損傷19例[J].山東中醫(yī)雜志,2010,29(2):105.
[5] Gordon T, Chan KM, Sulaiman OA, et al. Accelerating axon growth to overcome limitations in functional recovery after peripheral nerve injury[J]. Neurosurgery,2009,65(4 Suppl):A132-144.
[6] 袁廣宇.電針加康復(fù)治療周圍神經(jīng)損傷臨床觀察[J].上海針灸雜志,2008,27(9):9-10.
[7] 袁廣宇,苗小軍,王培霞.針加康復(fù)治療膝總神經(jīng)損傷86例療效觀察[J].中國(guó)實(shí)用神經(jīng)疾病雜志,2008,21(8):35-36.
[8] Dickson BJ, Senti KA. Axon guidance: growth cones make an unexpected turn[J].CurrBiol,2002,12:218-220.
[9] Li HS,Chen JH, Wu W et al. Vertebrate Slit, a secreted ligand for the transmembrane protein roundabout,is a repellent for olfactory bulb axons[J].Cell,1999,96:807-818.
[10] Brose K, Bland K, Wang KH, et al. Slit proteins bind robo receptors and have an evolution- aryly conserved role in repulsive axon guidance.[J].Cell,1999,96:795-806.
[11] Mambetisaeva ET, Andrews W, et al. Robo family of proteins exhibit differential expression in mouse spinal cord and Robo-Slit interaction is required for midline crossing in vertebrate spinal cord[J].Dev Dyn,2005,233(1):41-51.
[12] Wu W, Wong K, Chen JH, et al. Directional guidance of neuronal migration in the olfactory system by the protein slit[J].Nature,1999,400:331-336.
[13] Wang KH, Brose K, Arnott D, et al. Biochemical purification of a mammalian slit protein as a positive regulator of sensory axon elongation and branching[J].Cell,1999:771-784.
[14] Seita Hagino, Ken Iseki, Tetsuji Mori, et al. Slit and glypican-1 mRNAs are coexpressed in the reactive astrocytes of the injured adult brain[J].Glia,2003,42:130-138.
[15] Keleman K,Rajagopalan S,Cleppien D, et al. Comm sorts Robo to control axon guidance at the Drosophila midline[J]. Cell,2002,110:415-427.
[16] Nguyen-Ba-Chvaret KT,Chedoatl A. Role of Slit Proteins in the vertebrate barin [J]. Physiolog-Paris,2002,96(l-2):91-98.
[17] 趙玲,陳少宗.針灸治療坐骨神經(jīng)痛的取穴處方?jīng)Q策與經(jīng)驗(yàn)統(tǒng)計(jì)[J].針灸臨床雜志,2011,27(10):46-48.
[18] 閆麗萍,吳辛甜,殷忠勇,等.電針對(duì)坐骨神經(jīng)慢性壓迫性損傷大鼠脊髓氨基酸類遞質(zhì)水平的影響[J].針刺研究,2011,36(5):353-357.
[19] 孫濤,崔承斌,羅建剛,等.電針對(duì)神經(jīng)病理性疼痛大鼠脊髓膠質(zhì)纖維酸性蛋白活性及腫瘤壞死因子-α和白介素-1β表達(dá)的影響[J].針刺研究,2010,35(1):12-16.
[20] Zheng L F, Zheng S J, Ma Z J, et al. Up-regulation of Robo1 in dorsal root ganglia after sciatic nerve transection in rats[J]. African Journal of Biotechnology,2012,11(2):483-489.