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    產(chǎn)β—甘露聚糖酶菌株育種及培養(yǎng)基優(yōu)化

    2013-12-31 00:00:00陳曉旺朱炎趙玉萍
    湖北農(nóng)業(yè)科學 2013年16期

    摘要:利用實驗室篩選保藏最高酶活為10.7 U/mL的白腐真菌作為出發(fā)菌株,進行紫外誘變育種及培養(yǎng)基優(yōu)化,以期提高菌株產(chǎn)β-甘露聚糖酶能力。結(jié)果表明,紫外誘變條件為孢子懸液濃度106~107個/mL,誘變時間10 min,此條件下的孢子致死率達78%,獲得了13株正向突變株,經(jīng)6代遺傳穩(wěn)定性試驗證明UV-2突變株酶活最高,遺傳穩(wěn)定性最強,比出發(fā)菌株酶活提高了2.075倍。通過單因素試驗確定了該突變株的最佳碳源、氮源分別為魔芋粉和硝酸銨,對酶活影響較大的無機鹽為磷酸二氫鉀。通過正交試驗,確定了最佳產(chǎn)酶培養(yǎng)基為魔芋粉4.0 g/L、NH4NO3 5.0 g/L、KH2PO4 5.0 g/L、NaCl 1.0 g/L、MgSO4·7H2O 1.0 g/L,在此條件下測得甘露聚糖酶最大酶活為46.17 U/mL,比優(yōu)化前提高了40.3%。

    關(guān)鍵詞:β-甘露聚糖酶;白腐真菌;誘變;正交試驗;培養(yǎng)基優(yōu)化

    中圖分類號:Q933;Q93-335 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2013)16-3820-04

    在世界能源日益短缺的形勢下,植物纖維作為可再生有機資源越來越受到重視,其主要成分為纖維素、木質(zhì)素和半纖維素。半纖維素約占植物干重的35%,含量是僅次于纖維素的雜聚物生物資源,其中最具代表性的兩種半纖維素是木聚糖和甘露聚糖[1]。β-甘露聚糖酶(EC 3.2.1.78)可降解甘露聚糖、葡萄甘露聚糖、半乳甘露聚糖和半乳葡萄甘露聚糖的β-1,4-D-吡喃甘露糖主鏈[2]。微生物來源的β-甘露聚糖酶具有活力高、成本低、來源穩(wěn)定、提取方便等明顯優(yōu)點[3],近年來隨著人們對自然界中半纖維素資源的開發(fā)和對甘露低聚糖保健價值的發(fā)現(xiàn),微生物甘露聚糖酶再次成為研究熱點[4-6]。不同來源的β-甘露聚糖酶對不同底物的作用程度及其水解產(chǎn)物是不相同的[7-9]。甘露聚糖酶具有廣泛的工業(yè)應(yīng)用價值,可用于飼料、食品、輕工和石油行業(yè)等[4,6-9]。

    試驗利用江蘇省生物質(zhì)轉(zhuǎn)化與過程集成工程實驗室保藏的白腐真菌,采用紫外誘變的方法使出發(fā)菌株酶活提高,并采用正交試驗進行培養(yǎng)基的優(yōu)化以進一步提高酶活,以期為甘露聚糖酶的進一步研究打下基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    菌種:白腐真菌,由江蘇省生物質(zhì)轉(zhuǎn)化與過程集成工程實驗室篩選保藏。

    儀器:LDZX型自動立式電熱壓力蒸汽滅菌器(上海申安醫(yī)療器械廠);BCM-1000超凈工作臺(上海和呈儀器制造有限公司);QYC-211恒溫搖床(上海福瑪實驗設(shè)備有限公司);721型分光光度計(上海棱光技術(shù)有限公司)。

    1.2 培養(yǎng)基及配制方法

    1)固體斜面培養(yǎng)基:PDA培養(yǎng)基。

    2)篩選培養(yǎng)基:魔芋粉5.0 g,NaCl 2.0 g,瓊脂20.0 g,加去離子水至1 000 mL,pH 6.0[10]。

    3)發(fā)酵產(chǎn)酶液體培養(yǎng)基:魔芋粉5.0 g,蛋白胨5.0 g,KH2PO4 1.0 g,NaCl 1.0 g,MgSO4·7H2O 1.0 g,加去離子水至1 000 mL,pH 6.0。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 培養(yǎng)條件 種子培養(yǎng)基和產(chǎn)酶培養(yǎng)基均在250 mL三角瓶中裝液100 mL,搖瓶中加入10顆玻璃珠。搖瓶培養(yǎng)條件均為26 ℃、150 r/min。種子培養(yǎng)時間為24 h,接種量為10%。

    1.3.2 β-甘露聚糖酶酶活測定方法

    1)甘露糖標準曲線的繪制。取0.01 mol甘露糖,用0.05 mol/L的醋酸鈉緩沖液(pH 4.5)溶解定容至100 mL,制成濃度為100 μmol/mL的甘露糖儲備液。分別移取100 μmol/mL的甘露糖儲備液至100 mL容量瓶中,用去離子水配制成濃度分別為1、2、3、4、5、6 μmol/mL的甘露糖溶液。分別在不同試管中各移取1.00 mL上述6種不同濃度的甘露糖溶液及1.00 mL緩沖溶液,再分別添加DNS 2.00 mL,沸水浴5 min,取出冷卻至室溫,加去離子水10.00 mL,在540 nm處測定吸光度[11,12]。

    2)粗酶液的制備。取發(fā)酵液8 000 r/min離心10 min,上清液即為粗酶液。

    3)甘露聚糖酶活力的測定。將魔芋粉溶于pH 6的磷酸鈉緩沖液中配制20 g/L的溶液作為底物,在0.9 mL底物中加入0.1 mL適當稀釋的粗酶液,于50 ℃水浴反應(yīng)10 min[2],加入DNS試劑2.0 mL,沸水浴5 min顯色,立即以流動水冷卻至室溫,加去離子水定容至10.00 mL,以空白液調(diào)零,在540 nm處測定吸光度。每分鐘產(chǎn)生1 μmol還原糖所需酶量定義為1個酶活力單位(U)[11,12]。計算公式如下:

    U=N×G/(L×T)

    式中,N為酶液稀釋倍數(shù),G為酶解液中還原糖含量,L為加酶量,T為酶解時間。

    1.3.3 紫外誘變方法 取培養(yǎng)3 d長滿成熟孢子的斜面,用無菌生理鹽水將孢子洗下,制成孢子懸液,用血球計數(shù)板在顯微鏡下直接計數(shù),將孢子懸液濃度調(diào)至106~107個/mL。取10 mL孢子懸液置于培養(yǎng)皿中,打開磁力攪拌器,用15 W紫外燈于30 cm距離處分別照射2、4、6、8、10、12、14 min后,分別取0.2 mL誘變后的孢子懸液梯度稀釋涂平板,以未照射孢子為對照,26 ℃恒溫暗培養(yǎng)48 h后計單菌落數(shù),繪制致死曲線以確定最適紫外誘變條件。在每個平板上加入一層剛果紅溶液,靜置10 min,將染色液倒掉后測定菌株產(chǎn)生的水解圈大小,選取水解圈與菌落直徑比較大的作為復篩用菌株。將初篩菌株按上述培養(yǎng)條件測定酶活,選擇正向突變菌株[13]。

    1.3.4 正交試驗 選擇影響酶活較大的3個主要因素碳源、氮源和無機鹽,按L9(34)設(shè)計正交試驗優(yōu)化影響產(chǎn)酶的因素條件,正交試驗因素與水平如表1所示。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 紫外誘變結(jié)果

    孢子懸液隨誘變時間致死率變化曲線如圖1所示。由圖1可知,隨著誘變時間延長,致死率增加,當誘變處理時間為10 min時,致死率達到78%,將10 min作為紫外誘變處理的最佳時間。

    2.2 正向突變菌株的篩選結(jié)果

    根據(jù)篩選培養(yǎng)基染色后的水解圈與菌落直徑比,選擇比值較大的菌株進行復篩搖瓶實驗,按上述方法制備粗酶液,測定酶活,獲得正向突變株13株,其中酶活最大的為UV-2,對其進行連續(xù)6代傳代,檢驗其遺傳穩(wěn)定性。由試驗結(jié)果(表2)可知,經(jīng)6代遺傳穩(wěn)定性試驗證明UV-2正向突變株穩(wěn)定性較好,與出發(fā)菌株最高酶活10.7 U/mL相比,酶活提高了2.075倍。

    2.3 培養(yǎng)基成分對酶活的影響

    2.3.1 碳源的影響 碳源是培養(yǎng)基中最為重要的組分,它為菌體的生長和代謝提供物質(zhì)基礎(chǔ),所以不同的碳源會對菌體產(chǎn)酶產(chǎn)生不同的作用效果。采用UV-2菌株進行試驗,選擇葡萄糖、甘露糖、可溶性淀粉、麩皮和魔芋粉作為碳源,其添加量同發(fā)酵產(chǎn)酶液體培養(yǎng)基,其他物質(zhì)及添加量完全同液體培養(yǎng)基, 結(jié)果如圖2所示。由圖2可以看出,以魔芋粉作為碳源時UV-2的酶活最高,達33.5 U/mL。這可能是由于β-甘露聚糖酶是誘導酶,產(chǎn)酶需要甘露糖作為底物來誘導產(chǎn)生,故選擇魔芋粉作為UV-2發(fā)酵產(chǎn)酶液體培養(yǎng)基的碳源。

    2.3.2 氮源的影響 氮源作為發(fā)酵產(chǎn)酶培養(yǎng)基中的一個主要成分,對菌體產(chǎn)酶發(fā)揮著重要作用。采用UV-2菌株進行試驗,以魔芋粉作為碳源,選擇蛋白胨、硝酸銨、酵母膏、豆粕及尿素作為氮源,其添加量同發(fā)酵產(chǎn)酶液體培養(yǎng)基,其他物質(zhì)及添加量完全同液體培養(yǎng)基, 結(jié)果如圖3所示。由圖3可以看出,以硝酸銨作為氮源菌株產(chǎn)酶能力最強,酶活最高,采用尿素時所產(chǎn)酶的活力亦比其他氮源要高。這可能是因為無機氮源比有機氮源更利于菌株產(chǎn)酶,故選擇硝酸銨作為UV-2發(fā)酵產(chǎn)酶液體培養(yǎng)基的氮源。

    2.3.3 無機鹽的影響 采用上述最佳碳源和最佳氮源進行試驗,研究KH2PO4、NaCl和MgSO4·7H2O對產(chǎn)酶的影響,試驗中僅改變一種無機鹽的濃度,其他濃度均同發(fā)酵產(chǎn)酶培養(yǎng)基,結(jié)果如表3所示。由表3可以看出,NaCl和MgSO4·7H2O對產(chǎn)酶影響不大,而KH2PO4對產(chǎn)酶影響較大,因此選擇KH2PO4作為正交試驗因素。

    2.3.4 正交試驗結(jié)果 在優(yōu)化好碳源和氮源種類的基礎(chǔ)上,結(jié)合無機鹽對產(chǎn)酶效果的影響,采用L9(34)進行正交試驗,優(yōu)化UV-2培養(yǎng)條件,結(jié)果如表4所示。從表4可以看出,對酶活影響各因素的大小順序為B>C>A,即因素2硝酸銨的極差最大,說明其對結(jié)果的影響最大;x1,x2,x3反映了因素各水平對試驗結(jié)果的影響,因而最大的x值對應(yīng)了最好的水平,由此可知產(chǎn)酶培養(yǎng)基較適宜配比為A1B2C3,即魔芋粉4.0 g/L、硝酸銨5.0 g/L,磷酸二氫鉀5.0 g/L。在此條件下進行驗證試驗,測得甘露聚糖酶活為46.17 U/mL,比優(yōu)化前提高了40.3%。

    3 結(jié)論

    以江蘇省生物質(zhì)轉(zhuǎn)化與過程集成工程實驗室篩選保藏的白腐真菌為出發(fā)菌株,其最高酶活為10.7 U/mL,采用紫外誘變法提高菌株產(chǎn)β-甘露聚糖酶能力,結(jié)果表明,當孢子懸液濃度為106~107個/mL,紫外誘變時間為10 min時,孢子致死率達78%。在此條件下進行紫外誘變,獲得了13株正向突變株,其中以UV-2菌株的產(chǎn)酶能力最強,經(jīng)6代遺傳穩(wěn)定性試驗得出UV-2突變株遺傳穩(wěn)定性較好,與出發(fā)菌株最高酶活相比,該菌株的酶活提高了2.075倍。通過單因素試驗確定了該突變株的最佳碳源為魔芋粉,最佳氮源為硝酸銨,影響較大的無機鹽為磷酸二氫鉀,在此基礎(chǔ)上進行正交試驗,獲得最佳產(chǎn)酶培養(yǎng)基成分為魔芋粉4.0 g/L,硝酸銨5.0 g/L,磷酸二氫鉀5.0 g/L,NaCl 1.0 g/L,MgSO4·7H2O 1.0 g/L,在此條件下測得甘露聚糖酶最大酶活為46.17 U/mL,比優(yōu)化前提高了40.3%。通過紫外誘變和培養(yǎng)條件優(yōu)化,誘變株產(chǎn)β-甘露聚糖酶能力提高了3.31倍。

    參考文獻:

    [1] PALOHEIMO M, HAKOLA S. Production in Trichoderma reesei of three xylanases from Chaetomium thermophilum: a recombinant thermoxylanase for biobleaching of kraft pulp[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2007,76: 377-386.

    [2] 張 聞,汪立平,汪之和.甘露聚糖酶產(chǎn)生菌F1-5的鑒定及發(fā)酵條件研究[J].食品科學, 2009,30(21):288-293.

    [3] 李劍芳,烏敏辰,夏文水.微生物產(chǎn)β-甘露聚糖酶的研究進展[J].江蘇食品與發(fā)酵,2004(3):4-9.

    [4] 楊 洋,菅紅磊,徐永霞,等.皂莢多糖膠酶解制備低聚糖[J].食品科學,2011,32(18):138-141.

    [5] 武玉永,譚秀華,馬立新.新型甘露聚糖酶基因的克隆及在畢赤酵母中的表達[J].藥物生物技術(shù),2012,19(1):22-26.

    [6] 姚 雪,羅學剛,韓本超.魔芋葡甘聚糖酶解過程及各種不同分子量葡甘露低聚糖制備條件的研究[J].食品工業(yè)科技,2011, 32(9):93-96.

    [7] 傅 亮,何紫姣,李存芝,等.酶法制備瓜爾膠半乳甘露低聚糖的研究[J].食品與機械, 2010,26(5):122-124.

    [8] 赫榮喬. 利用毛殼霉固體發(fā)酵木聚糖酶[J]. 微生物學通報,2009,37(8):1268.

    [9] 楊培周,姜紹通,羅水忠.枯草芽孢桿菌05表達β-甘露聚糖酶酶學性質(zhì)的初步研究[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè),2010,36(1):5-7.

    [10] DOWNIE B, HILHORST H W M, BEWLEY J D. A new assay for quantifying endo-β-D-mannanase activity using congored dye [J]. Phyto Chemistry,1994,36(4):829-835.

    [11] KAPOOR M, KUHAD R C. Improved polygalacturonase production from Bacillus sp. MG-cp-2 under submerged and solid stat fermentation [J]. Process Biochemistry,2002,34:317-322.

    [12] TAPIE N, MALHIAC C, HUCHER N, et al. Determination of galactose and mannose residues in natural galactomannas using a fast and efficient high-performance liquid chromatogrphy/UV detection[J]. Journal of Chromatography A, 2008,1181(1-2):45-50.

    [13] 張衛(wèi)兵,梁 琪,喬海軍,等.紫外線和硫酸二乙酯誘變高產(chǎn)凝乳酶地衣芽孢桿菌的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2012(5):174-177.

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