張開平 ,惠 明 ,田 青
(1.河南工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院,河南 鄭州 450001;2.百色學(xué)院 化學(xué)與生命科學(xué)系,廣西 百色 533000)
脂肪酶(EC3.1.1.3)又稱三?;视退饷?,是一類能在油水界面或水不溶性系統(tǒng)中催化脂類物質(zhì)水解、酯化、醇解、酯交換等化學(xué)反應(yīng)的生物催化劑[1],具有化學(xué)選擇性、立體選擇性和底物專一性等特點,是當(dāng)代酶工業(yè)最受矚目的酶種之一[2-3].近年來,人們對脂肪酶耐熱、耐酸等酶學(xué)特性提出了新的要求,且已成為國內(nèi)外一個新的研究熱點[4-5].酸性脂肪酶廣泛地應(yīng)用于食品風(fēng)味改進(jìn)、油脂水解與改性、皮革脫脂、藥物修飾、生物柴油等工業(yè)領(lǐng)域,但許多工業(yè)用脂肪酶在生產(chǎn)中由于耐熱或耐酸性較差而失活,或酶作用的最適溫度和pH值不在生產(chǎn)工藝要求范圍內(nèi)而受限制[6-7].因此,尋找和分離能高效產(chǎn)耐高溫酸性脂肪酶菌株具有一定的科研與生產(chǎn)應(yīng)用價值,目前,在國內(nèi)外有關(guān)克雷伯氏菌產(chǎn)耐高溫酸性脂肪酶的報道較少,克雷伯氏菌B-36(Klebsiella sp.B-36)脂肪酶的發(fā)現(xiàn)豐富了脂肪酶的種類,為脂肪酶耐熱、耐酸特性的研究提供了新的材料.作者從鄭州煉油廠富含油污的土樣中分離鑒定了一株產(chǎn)耐高溫酸性脂肪酶菌株Klebsiella sp.B-36,探討該菌株產(chǎn)酶條件和影響因素,為酸性脂肪酶的進(jìn)一步開發(fā)利用奠定基礎(chǔ).
Klebsiella sp.B-36由實驗室保藏.
種子培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨 5.0,MgSO4·7H2O 1.0,K2HPO41.0,(NH4)2SO45.0,葡萄糖 10.0,橄欖油 10.0 mL,pH 6.0;發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨 5.0,酵母膏 20.0,蔗糖 20.0,MgSO4·7H2O 1.0,(NH4)2SO42.0,K2HPO41.0,橄欖油 10.0 mL,pH 6.0.
挑取一環(huán)菌種接到種子培養(yǎng)基中,在40℃,160 r/min搖瓶培養(yǎng)24 h后,接入二級種子液中,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,然后再轉(zhuǎn)接到發(fā)酵培養(yǎng)基中培養(yǎng)60 h.
1.3.1 酶活力測定
按 GB/T 23535—2009測定.將發(fā)酵液于 4℃,12 000 r/min離心20 min,收集上清液測酶活.酶活定義(U):1 mL液體酶,在40℃和pH 7.5條件下,反應(yīng)15 min,每分鐘水解底物產(chǎn)生1μmol可滴定的脂肪酸,即為1個酶活力單位(U),以U/mL表示.
1.3.2 試驗設(shè)計
以酶活力為指標(biāo),研究產(chǎn)酶條件初始pH值、溫度、裝液量以及接種量對菌株產(chǎn)酶的影響,每個試驗點重復(fù)3次,試驗數(shù)據(jù)用SAS6.12軟件進(jìn)行方差分析,試驗結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示[8].在單因素試驗的基礎(chǔ)上,以pH值、溫度、裝液量以及接種量為變量,以菌株產(chǎn)酶活力為響應(yīng)值,設(shè)計了4因素3水平共27個試驗點的響應(yīng)面分析試驗[9].
菌體在生長和產(chǎn)酶過程中,培養(yǎng)基的pH是變動的,因此研究培養(yǎng)基的初始pH對菌株產(chǎn)酶的影響至關(guān)重要.將初始pH值分別調(diào)至3.0~9.0,間隔1個pH單位,40℃,160 r/min條件下培養(yǎng) 60 h后,發(fā)酵液離心取上清液測脂肪酶活力,結(jié)果見圖1.由圖1可知,在pH低于5.0時,酶活力隨pH上升而逐漸升高,在pH大于5.0之后,隨著pH上升,酶活力反而下降,因此,選擇培養(yǎng)基初始pH值為5.0,此時發(fā)酵液酶活力相對較高.經(jīng)SAS軟件方差分析P<0.05,說明pH對酶活力影響顯著.
圖1 培養(yǎng)基初始pH值對Klebsiella sp.B-36產(chǎn)脂肪酶的影響
將菌體分別置于 30~60℃,間隔 5℃,pH 5.0,160 r/min條件下?lián)u瓶培養(yǎng)60 h后測酶活,結(jié)果見圖2.由圖2可知,隨著溫度的上升,Klebsiella sp.B-36產(chǎn)脂肪酶活力逐漸升高,當(dāng)溫度升高至45℃時酶活力達(dá)到最大,為17.67 U/mL,之后隨著溫度升高,酶活開始下降,因此,選擇培養(yǎng)溫度為45℃.經(jīng)SAS軟件方差分析P<0.05,說明溫度對酶活力影響顯著.
接種量對菌體的發(fā)酵周期以及產(chǎn)酶能力具有重要影響.接種量過大,菌體增長過快以及帶入過多種子代謝物,進(jìn)而使菌體老化,菌體活力降低,不利于穩(wěn)定產(chǎn)酶.若接種量過小,菌體增長緩慢,發(fā)酵周期延長,菌體活力下降.因此,合適的接種量,既可以縮短發(fā)酵周期,又可以獲得較高的產(chǎn)酶水平.接種量分別為 0.5%、1.0%、1.5%、2.0%、2.5%、3.0%,pH 5.0,裝液量 60 mL,45 ℃,160 r/min條件下?lián)u瓶培養(yǎng)60 h后測酶活,結(jié)果見圖3.由圖3可知,酶活力隨著接種量的增加而逐漸升高,隨后又逐漸下降,當(dāng)接種量為2%時酶活力最高,為17.89 U/mL,因此,選擇接種量為 2%.經(jīng)SAS軟件方差分析P<0.05,說明接種量對酶活力影響顯著.
圖2 溫度對Klebsiella sp.B-36產(chǎn)脂肪酶的影響
圖3 接種量對Klebsiella sp.B-36產(chǎn)脂肪酶的影響
搖瓶和轉(zhuǎn)速一定時,裝液量是控制發(fā)酵液溶氧量的主要因素.在250 mL三角瓶中分別裝20.0、30.0、40.0、50.0、60.0、70.0、80.0 mL 發(fā)酵培養(yǎng)基,pH 5.0,45℃,160 r/min培養(yǎng)60 h后測酶活,結(jié)果見圖4.由圖4可知,當(dāng)裝液量低于60 mL時酶活隨著裝液量的增大而升高;當(dāng)裝液量增加到60 mL時,酶活達(dá)到最高;之后隨著裝液量的增加,酶活逐漸降低.因此,選擇60 mL的裝液量進(jìn)行搖瓶發(fā)酵.經(jīng)SAS軟件方差分析P<0.05,說明裝液量對酶活力影響顯著.
圖4 裝液量對Klebsiella sp.B-36產(chǎn)脂肪酶的影響
根據(jù)單因素試驗條件,以pH值(A)、溫度(B)、裝液量(C)以及接種量(D)為變量,菌株酶活力為響應(yīng)值(Y),用Design-Expert 7.0 Trial軟件通過中心組合法尋求最優(yōu)發(fā)酵工藝參數(shù)[10-11],試驗設(shè)計及結(jié)果見表1,方差分析見表2,根據(jù)回歸方程作出不同因子的響應(yīng)面分析見圖5.
試驗數(shù)據(jù)用Design-Expert 7.0 Trial軟件進(jìn)行二次回歸擬合后,得到回歸方程為:
Y=-199.455 83+23.030 83A+1.938 17B+2.087 25C+54.521 67D-0.004AB-0.111 75AC+0.065AD+0.000 35BC-0.015BD-0.005 5CD-1.677 92A2-0.020 517B2-0.012 917C2-12.706 67D2.
表1 響應(yīng)面試驗設(shè)計和結(jié)果
表2 方差分析
圖5 響應(yīng)面的立體分析
由表2可以看出,模型的P值在α=0.000 1水平上顯著.同時模型中自變量一次項A,B,D,二次項 AC,A2,B2,C2,D2顯著(α=0.05). 模型失擬項不顯著,則模型選擇得合適.因此可用該回歸方程代替試驗真實點對試驗結(jié)果進(jìn)行分析.同時,由軟件分析得到模型的校正決定系數(shù)R2為0.957 3,大于0.90,說明該模型最多只有約4.27%的變化不能用此模型來解釋.試驗偏差系數(shù)(CV)為2.16%,其值較低,能由該模型解釋,進(jìn)一步說明模型擬合度較好[12].
對回歸方程進(jìn)行分析,得出最佳發(fā)酵條件為:pH 4.9,溫度46.5℃,裝液量60 mL,接種量2.1%,酶活力為21.8 U/mL.采用最優(yōu)發(fā)酵條件進(jìn)行產(chǎn)酶試驗,重復(fù) 3 次,酶活力為(21.7±0.1)U/mL,與模型預(yù)測值接近,說明該模型可靠.
以自行篩選鑒定的一株耐高溫酸性脂肪酶產(chǎn)生菌Klebsiella sp.B-36為研究對象,采用單因素試驗和Box-Benhnken響應(yīng)面分析法對其產(chǎn)酶條件進(jìn)行了優(yōu)化,得到了優(yōu)化發(fā)酵條件為:初始pH值4.9,溫度46.5℃,250 mL三角瓶裝液量60 mL,接種量2.1%(V/V),在最優(yōu)發(fā)酵條件下,發(fā)酵產(chǎn)酸性脂肪酶活力達(dá)到21.8 U/mL,具有潛在的生產(chǎn)應(yīng)用價值.
[1] Arifin A R,Kim S J,Yim J H,et al.Isolation and biochemical characterization of bacillus pumilus lipases from the antarctic[J].Journal of Microbiology and Biotechnology,2013,23(5):661-667.
[2] Akanbi T,Adcock J L,Barrow C J,et al.Selective concentration of EPA and DHA using thermomyces lanuginosus lipase is due to fatty acid selectivity and not region selectivity[J].Food Chemistry,2013,138(1):615-620.
[3] Davis B G,Boyer V.Biocatalysis and enzymes in organic synthesis[J].Journal of Natural Products,2001,18:618-640.
[4] Johri S,Bhat A,Sayed S,et al.Novel thermostable lipase from Bacillus circulans IIIB153:comparison with the mesostable homologue at sequence and structure level[J].World of Journal Microbiology and Biotechnology,2012,28(1):193-203.
[5] Grosso C,F(xiàn)erreira-Dias S,Pires-Cabral P,et al.Modeling and optimization of ethyl butyrate production catalysed by Rhizopus oryzae lipase[J].Journal of Food Engineering,2012,115(4):475-480.
[6] Vaseghi Z,Najafpour G D,Mohseni S,et al.Production of active lipase by Rhizopus oryzae from sugarcane bagasse:solid state fermentation in a tray bioreactor[J].International Journal of Food Science and Technology,2013,48(2):283-289.
[7] Tanaka D,Yoneda S,Yamashiro Y,et al.Characterization of a new cold-adapted lipase from Pseudomonas sp.TK-3[J].Applied Biochemistry and Biotechnology,2012,168(2):327-338.
[8] 宋萍,戚小靈,胡燚,等.響應(yīng)面法優(yōu)化枯草芽孢桿菌產(chǎn)脂肪酶的合成培養(yǎng)基[J].中國生物工程雜志,2010,30(8):100-105.
[9] Ebrahimpour A,Abd R R,Ean C D,et al.A modeling study by response surface methodology and artificial neural network on culture parameters optimization for thermostable lipase production from a newly isolated thermophilic Geobacillus sp.strain ARM[J].BMC Biotechnology,2008,96(8):1472-1486.
[10] Ramani K,Saranya P,Jain S C,et al.Lipase from marine strain using cooked sunflower oil waste:production optimization and application for hydrolysis and thermodynamic studies[J].Bioprocess and Biosystems Engineering,2013,36(3):301-315.
[11]桂妍雯,陶文卿,王瑞明,等.克雷伯氏菌發(fā)酵條件的響應(yīng)面設(shè)計[J].中國釀造,2012,31(3):132-135.
[12] Wang Q F,Zhang C Y,Hou Y H,et al.Optimization of cold-Active lipase production from psychrophilic bacterium Moritella sp.2-5-10-1 by statistical experimental methods[J].Bioscience Biotechnology and Biochemistry,2013,77(1):17-21.