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      鞘內(nèi)注射IL-18中和抗體對(duì)大鼠嗎啡耐受形成的影響

      2013-12-07 05:37:50舒銀銀謝軍明李永樂(lè)劉清珍李偉彥
      關(guān)鍵詞:中和星形嗎啡

      舒銀銀,謝軍明,李永樂(lè),張 瑤,劉清珍,劉 健,李偉彥

      (1.南方醫(yī)科大學(xué)南京臨床醫(yī)學(xué)院,2.南京軍區(qū)南京總醫(yī)院麻醉科,江蘇 南 京 210002)

      嗎啡是臨床廣泛應(yīng)用的強(qiáng)效鎮(zhèn)痛藥,但長(zhǎng)期應(yīng)用嗎啡后其鎮(zhèn)痛作用逐漸減弱,即產(chǎn)生所謂的嗎啡耐受現(xiàn)象[1]。近年來(lái)多項(xiàng)研究提示膠質(zhì)細(xì)胞活化,尤其是脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞及星形膠質(zhì)細(xì)胞的活化,與嗎啡耐受的發(fā)生密切相關(guān)。白細(xì)胞介素-18(IL-18)是IL-1的類似物,既往研究提示其介導(dǎo)了神經(jīng)病理性疼痛時(shí)小膠質(zhì)細(xì)胞與星形膠質(zhì)細(xì)胞的聯(lián)系[2],據(jù)此我們推測(cè)其亦可能參與了嗎啡耐受的發(fā)生。本實(shí)驗(yàn)采用特異性的IL-18中和抗體,阻斷脊髓IL-18信號(hào)傳導(dǎo),探討其對(duì)大鼠嗎啡耐受形成的影響,并分析可能的作用機(jī)制,為防治嗎啡耐受提供新的思路和科學(xué)的理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與分組 清潔級(jí)♂ SD大鼠,體質(zhì)量150~180 g(南京軍區(qū)南京總醫(yī)院比較醫(yī)學(xué)科提供)。鹽酸嗎啡注射液(沈陽(yáng)第一制藥廠,中國(guó)),PBS緩沖液(上海研拓生物科技有限公司,中國(guó)),對(duì)照IgG(Normal Goat IgG Control,R&D systems,美國(guó)),羊抗大鼠IL-18中和抗體(Anti-rat IL-18 Antibody,R&D systems,美國(guó))。所有大鼠隨機(jī)分為5組,每組8只。Ⅰ組為生理鹽水對(duì)照組 ,Ⅱ組為嗎啡耐受組,Ⅲ組為IgG對(duì)照組,Ⅳ組、Ⅴ組為IL-18中和抗體(0.4、4 μg)處理組。

      1.2 鞘內(nèi)置管模型建立 參照Cui等[3]方法,即大鼠腹腔注射2%戊巴比妥鈉60 mg·kg-1麻醉后,以L5-6間隙為中心作一皮膚縱向切口,分離椎旁肌肉,暴露L5-6椎間隙,以稍鈍針頭穿破黃韌帶及硬脊膜,可見大鼠出現(xiàn)甩尾反射及清亮腦脊液外溢。置入并固定導(dǎo)管,經(jīng)皮下自頸部將其引出。置管5 d后,將2%利多卡因20 μl注入后肢無(wú)明顯運(yùn)動(dòng)障礙的大鼠鞘內(nèi),若后肢麻痹拖地則建模成功,列入實(shí)驗(yàn)組(記作第1天)。建模不成功大鼠予以麻醉處死。

      1.3 給藥方案 參照 Raghavendra等[4]方法建立嗎啡耐受模型,即第3-9天,每日8:00-9:00與16:00-17:00,Ⅱ-Ⅴ組大鼠分別皮下注射嗎啡(10 mg·kg-1)一次,Ⅰ組為皮下注射等量生理鹽水。上午給予嗎啡前30 min,Ⅰ組、Ⅱ組鞘內(nèi)給予PBS緩沖液,Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ組鞘內(nèi)分別給予 IgG 4 μg,IL-18中和抗體 0.4 μg、4 μg。鞘內(nèi)給藥均為 20 μl(IgG,IL-18中和抗體均采用PBS緩沖液溶解稀釋)。

      1.4 行為學(xué)測(cè)試 第 2、10天,參照 Hargreaves等[5]方法,應(yīng)用足底輻射熱痛覺測(cè)試儀(Model 390,IITC Life ScienceInc,美國(guó)),測(cè)定各組大鼠熱刺激縮足反應(yīng)潛伏期PWTL。每只大鼠重復(fù)測(cè)量5次,單次光照時(shí)間不超過(guò)20 s(cutoff time),去掉最大及最小值,取平均值即為大鼠的基礎(chǔ)潛伏期。之后,尾靜脈注射嗎啡(4 mg·kg-1),測(cè)定給予嗎啡后30 min的PWTL,取平均值即為大鼠給藥后潛伏期。計(jì)算30 min的最大可能鎮(zhèn)痛效應(yīng)比值%MPE(percentage of maximal possible antinociceptive effect),%MPE=(給藥后潛伏期-基礎(chǔ)潛伏期)/(cutoff time-基礎(chǔ)潛伏期)×100%。

      1.5 標(biāo)本采集 第10天行為學(xué)測(cè)試結(jié)束后,大鼠腹腔注射2%戊巴比妥鈉80 mg·kg-1。取4只大鼠快速截取脊髓腰膨大于液氮中保存,留待Western blot法檢測(cè)蛋白表達(dá)。另取4只大鼠開胸灌注,留取腰膨大用于免疫熒光染色。

      1.6 Western blot法檢測(cè) ERK與p-ERK 蛋白表達(dá) 取脊髓腰膨大,組織勻漿離心取上清液,蛋白定量煮樣后,灌制10%SDS-PAGE凝膠,每孔上樣量50 μg(10 μl),電泳,轉(zhuǎn)膜,5% 脫脂牛奶室溫封閉 1 h,一抗4℃孵育過(guò)夜,TBST洗5 min×6次,二抗室溫孵育1 h,TBST洗5 min×6次,Super Signal West Pico試劑盒顯色。內(nèi)參為GAPDH(1∶1 000,Cell Signaling Technology,美國(guó))。免疫印跡條帶由UNSCAN-IT gel 6.1軟件分析。

      1.7 免疫組織熒光染色 參照Cui等[6]等方法采用免疫熒光染色法,取腰5脊髓蔗糖溶液梯度脫水,連續(xù)冰凍切片,片厚20 μm。5%BSA封閉1h,GFAP抗體(1∶500,Santa Cruz Biotechnology)4℃孵育過(guò)夜,TBST洗3次,加入異硫氰酸熒光素標(biāo)記的二抗(1∶300,Santa Cruz Biotechnology)室溫避光孵育2 h,漂洗3次。每個(gè)標(biāo)本隨機(jī)抽取5張切片,激光掃描共聚焦顯微鏡下觀察。

      1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 應(yīng)用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用單因素方差分析,其后兩兩組間比較采用Bonferroni檢驗(yàn)。

      Fig 1 Effect of intrathecal anti-rat IL-18 antibody treatment on morphine antinociception(n=8)

      2 結(jié)果

      2.1 MPE值 第2天:各組大鼠給予嗎啡后30 min%MPE差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。第10天:給予嗎啡30 min后,與Ⅰ組相比,其余4組%MPE均明顯降低(P<0.05)。與Ⅱ組相比,Ⅲ組、Ⅳ組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),Ⅴ組%MPE明顯升高(P<0.05)。見Fig 1。

      2.2 脊髓腰膨大ERK與p-ERK蛋白表達(dá)變化

      Western blot結(jié)果顯示,5組大鼠腰段脊髓ERK表達(dá)量差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。與I組相比,其余各組p-ERK表達(dá)量均升高(P<0.05)。與Ⅱ組相比,Ⅲ組、Ⅳ組p-ERK表達(dá)水平無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),Ⅴ組明顯降低(P<0.05)。見Fig 2。

      2.3 脊髓背角星形膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記物GFAP熒光表達(dá)變化 免疫組織熒光染色結(jié)果顯示,Ⅰ組大鼠腰段脊髓背角GFAP表達(dá)量較少。與Ⅰ組相比,Ⅱ組GFAP表達(dá)量明顯增加。與Ⅱ組相比,Ⅲ、Ⅳ組無(wú)明顯差異,Ⅴ組GFAP表達(dá)量明顯降低。見Fig 3。

      Fig 2 Expression of ERK and p-ERK in the spinal cord lumbar enlargement(n=3)

      Fig 3 Expression of GFAP in the dorsal horn of the spinal cord lumbar enlargement

      3 討論

      近年來(lái),越來(lái)越多的研究證實(shí),膠質(zhì)細(xì)胞活化,尤其是脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞與星形膠質(zhì)細(xì)胞的活化,密切參與了嗎啡耐受的發(fā)生[7-10]。與神經(jīng)病理性疼痛研究結(jié)果相似,大量研究提示:抑制小膠質(zhì)細(xì)胞活化僅能預(yù)防嗎啡耐受的發(fā)生,卻不能緩解已存在的嗎啡耐受[3,6,11]。而膠質(zhì)細(xì)胞抑制劑丙戊茶堿則既能預(yù)防嗎啡耐受的發(fā)生,也能緩解已存在的嗎啡耐受[8]。據(jù)此推測(cè)嗎啡耐受可能是由脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞的活化引起的,而星形膠質(zhì)細(xì)胞的持續(xù)活化則對(duì)嗎啡耐受起到了維持作用。

      Miyoshi等[2]研究發(fā)現(xiàn),L5 脊神經(jīng)結(jié)扎后脊髓小膠質(zhì)細(xì)胞表達(dá)IL-18明顯增加,而星形膠質(zhì)細(xì)胞表達(dá)的IL-18受體亦明顯增加;阻斷IL-18或IL-18受體信號(hào),能明顯減輕神經(jīng)損傷誘導(dǎo)的觸覺過(guò)敏,并抑制星形膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物GFAP的表達(dá)。IL-18介導(dǎo)的小膠質(zhì)細(xì)胞與星形膠質(zhì)細(xì)胞的相互作用,對(duì)于神經(jīng)損傷誘導(dǎo)的痛覺過(guò)敏的發(fā)生與維持起著重要作用。Mayer等[12]研究發(fā)現(xiàn),嗎啡耐受和神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生發(fā)展有著相似的分子機(jī)制。結(jié)合神經(jīng)病理性疼痛研究的結(jié)果,我們推測(cè):小膠質(zhì)細(xì)胞活化并釋放的IL-18,作用于星形膠質(zhì)細(xì)胞表面的IL-18受體,導(dǎo)致了星形膠質(zhì)細(xì)胞的活化,嗎啡耐受的維持。

      本實(shí)驗(yàn)我們采用Raghavendra等[4]方法建立慢性嗎啡耐受模型,第10天嗎啡耐受組較生理鹽水對(duì)照組%MAP明顯降低,提示嗎啡耐受已經(jīng)形成,嗎啡的鎮(zhèn)痛效能降低。與嗎啡耐受組相比,IL-18中和抗體4 μg處理組%MAP明顯升高,即嗎啡的鎮(zhèn)痛效能明顯改善,提示4 μg IL-18中和抗體與嗎啡聯(lián)合應(yīng)用,可部分緩解嗎啡耐受的形成。進(jìn)一步的蛋白印跡和免疫熒光染色結(jié)果顯示,與生理鹽水組相比,嗎啡耐受組大鼠腰段脊髓背角星形膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物GFAP的免疫活性以及p-ERK的表達(dá)均明顯增高;而鞘內(nèi)注射4 μg IL-18中和抗體能明顯降低GFAP和p-ERK的表達(dá)量。這提示阻斷脊髓IL-18,可抑制嗎啡誘導(dǎo)的脊髓星形膠質(zhì)細(xì)胞及ERK通路的活化。

      綜上所述,給予IL-18中和抗體阻斷脊髓IL-18信號(hào),可部分抑制嗎啡耐受的形成,該效應(yīng)可能與通過(guò)抑制嗎啡誘導(dǎo)的脊髓背角星形膠質(zhì)細(xì)胞的活化及ERK通路的激活有關(guān)。本研究提示,阻斷脊髓內(nèi)IL-18信號(hào),有望為防治嗎啡耐受提供一條新的途徑。

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