蔣志國 王燕華 鐘秋平 張海德
(海南大學(xué)食品學(xué)院1,???570228)
(海南大學(xué)信息學(xué)院2,???570228)
南瓜屬作物(Cucurbita)為葫蘆科南瓜屬的世界性蔬菜,在中國栽培十分普遍。隨著人民飲食結(jié)構(gòu)的改善和對南瓜營養(yǎng)成分保健價值深入的研究,南瓜越來越受到重視,其栽培面積、單產(chǎn)及總產(chǎn)量迅速增長。近幾年南瓜產(chǎn)業(yè)在海南發(fā)展迅速,2008年種植面積為12萬畝,2009年為15萬畝,2010年達20萬畝,位居海南省蔬菜栽培面積的第4位,已成為海南冬季北運瓜菜的主要種類之一[1]。充分利用海南省豐富的南瓜資源,提高農(nóng)產(chǎn)品附加值,不斷挖掘其新的利用價值和應(yīng)用領(lǐng)域,具有重要的現(xiàn)實意義。
南瓜的諸多營養(yǎng)保健功能早已為人們所熟知,如降血糖血壓、調(diào)血脂,防治動脈硬化等[2-3]。迄今為止,有關(guān)南瓜中活性成分的分離提取,研究者主要關(guān)注的是南瓜中的多糖,但對其中小分子甘油糖脂的分離提取、結(jié)構(gòu)鑒定以及活性研究還未見報道。作為細胞膜的重要組成部分,甘油糖脂具有抗氧化[4-5]、抗病毒[6]、抗炎[7-9]、抗腫瘤[10-13]等多種生物活性。甘油糖脂有效成分的制備分離是進一步研究分子結(jié)構(gòu)、生物活性及構(gòu)效關(guān)系的基礎(chǔ),盡管目前己有多種有效成分的提取分離方法,如高效薄層層析法、柱層析法等,但都不同程度地存在著提取時間長、提取過程繁瑣、分離純化困難等不足[14]。
本研究擬采用高速逆流色譜分離技術(shù)與制備型高效液相相結(jié)合的方法,以南瓜(Cucurbita moschata)為原料,探索出一套完整的天然產(chǎn)物中有效成分甘油糖脂的提取、分離、純化的工藝。進而研究其抗腫瘤活性,闡明其構(gòu)效關(guān)系,以期為進一步開發(fā)利用南瓜資源提供試驗依據(jù),提高農(nóng)產(chǎn)品附加值。
南瓜(Cucurbita moschata):海南儋州。小鼠黑色素瘤B16-F10細胞和人結(jié)腸癌COLO205細胞:中科院上海細胞庫。
DMEM培養(yǎng)基和胰蛋白酶(trypsin):Gibco公司;新生牛血清:杭州四季青生物工程材料有限公司;噻唑藍(3-[4,5-Dimethylthiazol-2-yl]-2,5-diphenylte trazolium bromide,MTT):美國 Sigma公司;D4020型大孔吸附樹脂:天津南開大學(xué)化工廠;乙腈(色譜純):德國Merk公司;其余試劑均為分析純。
HSCCC-D1200高速逆流色譜儀:浙江工商大學(xué)食品與生物工程研究所;K-1800恒流泵:德國Knauer公司;BSZ-100自動部分收集器:上海滬西分析儀器廠;Model 8823A-UV紫外檢測器:北京新技術(shù)應(yīng)用研究所。聚四氟乙烯螺旋管纏繞在5個水平軸上形成螺旋管(5 mm I.D.柱容積1 200 mL),轉(zhuǎn)速0~1 000 r/min;ZQ2000質(zhì)譜檢測器:美國 Waters公司;Unity INOVA300,500高分辨核磁共振波譜儀:美國Varian公司;LC-20A分析型HPLC:日本Shimadzu公司;LC-29103制備型 HPLC:日本 JAI公司;ROTARY VACUUM EVAPORATOR N-1000旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海愛朗儀器有限公司;GF254鋁膜 TLC板:德國Merck公司。Shellab Model 2300型CO2培養(yǎng)箱:Sheldon Manufacturing公司;DG3022A型酶聯(lián)免疫檢測儀:華東電子管廠。
1.3.1 樣品的預(yù)處理
將冷凍干燥南瓜果肉粉15 kg用95%甲醇常溫浸提3次,每次甲醇用量50 L,并不斷攪拌。合并浸提液,減壓濃縮至無醇味后,將浸膏物分散于5 L蒸餾水中,依次用等體積氯仿、乙酸乙酯、正丁醇分別萃取3次,萃取液減壓濃縮后分別得到氯仿浸提物350 g、乙酸乙酯浸提物80 g和正丁醇浸提物100 g。
1.3.2 大孔吸附樹脂柱色譜分離
南瓜氯仿浸提物350 g上樣后,依次用蒸餾水、30%甲醇、60%甲醇、和90%甲醇洗脫,每次3個柱體積,洗脫液旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)、冷凍干燥后得60%甲醇洗脫部分(Fr60)6.4 g,待用。
1.3.3 HSCCC溶劑系統(tǒng)的選擇
將樣品溶解于不同溶劑系統(tǒng)中,劇烈振蕩后靜置分層,測定其分層時間。用毛細管取近似等量的上下兩相溶液于TLC板上。通過觀察斑點色度,比較分配系數(shù)的差異,選擇合適的溶劑系統(tǒng)。展開劑為氯仿-甲醇 -水(65∶35∶10,體積比,下層),顯色劑為10%硫酸甲醇溶液。
1.3.4 溶劑系統(tǒng)的準備
本試驗所用溶劑系統(tǒng)為氯仿-石油醚-甲醇-水(5∶2∶6∶4,體積比),將 4種溶劑按比例配置于分液漏斗中,充分振蕩后靜置分層。
1.3.5 HSCCC分離過程
在60 mL流動相中加入3 g樣品,充分振蕩,使樣品完全溶解,注入三通進樣閥。將固定相以一定的流速充滿色譜柱,然后將柱的首段與三通進樣閥相接。開啟速度控制器,當轉(zhuǎn)速達到800 r/min時,以2 mL/min的流速泵入流動相,并通過三通進樣閥進樣。當流動相從色譜柱流出時用部分收集器收集,并采用TLC點樣檢測分離情況。
1.3.6 分析型高效液相-蒸發(fā)光散射(HPLCELSD)分析
色譜柱:Waters Symmetry Cl8(4.6 mm×150 mm,5 μm);流動相:乙腈∶水(60∶40);流速:1.0 mL/min;柱溫:25℃;SEDEX75蒸發(fā)光檢測器參數(shù):載氣為空氣,漂移管溫度70℃,ELSD的增益值為7,壓力0.35 MPa。
1.3.7 制備型高效液相(Pre-HPLC)分析
制備柱:ODS-BP-30(250 mm×30 mm,15μm);流動相:乙腈:水(55:45);流速:10.0 mL/min;柱溫:25℃;進樣量:3.0 mL;樣品濃度:300 mg/mL。
1.3.8 體外腫瘤細胞增殖抑制試驗[15]
采用MTT法檢測藥物對細胞的抑制作用。取人結(jié)腸癌COLO205細胞和小鼠黑色素瘤B16-F10對數(shù)生長期腫瘤細胞,調(diào)整細胞懸液濃度,每孔100μL細胞懸液接種于96孔細胞培養(yǎng)板中,接種24 h后給藥(100μL/孔),分別設(shè)空白對照組和不同濃度藥物組(62,125,250,500μg/mL),每組設(shè)3個復(fù)孔。繼續(xù)培養(yǎng)72 h后每孔加入 100μL MTT(1 mg/mL,以DMEM培養(yǎng)液溶解),37℃培養(yǎng)2 h,棄去各孔內(nèi)液體后加入150μL酸化異丙醇(含 0.04 mol/L HCl),避光放置30 min,DG3022A型酶聯(lián)免疫檢測儀測定570 nm處吸光度,計算抑制率。
用SPSS17.0軟件將抑制率數(shù)據(jù)和甘油糖脂處理濃度進行l(wèi)ogistic曲線擬合并進行probit轉(zhuǎn)化,計算IC50。
為了檢查溶劑系統(tǒng)的適用性,需要對分配系數(shù)進行測定。本試驗采用薄層色譜法(TLC)進行溶劑系統(tǒng)的選擇,即根據(jù)斑點色度估計樣品組分在兩相溶劑中的分配情況。雖然TLC法的準確度較低,但方便、快速。按照溶劑系統(tǒng)選擇的原則和大量的篩選,得到以下3種溶劑系統(tǒng)。
圖1 糖脂在3種溶劑系統(tǒng)中上下相的薄層色譜圖
由圖1可知,甘油糖脂粗提取物(Fr60)中至少有3種甘油糖脂單體 GCL-I、GCL-II和 GCL-III,即Rf=0.19,Rf=0.33,Rf=0.55。由于不同的甘油糖脂單體所含糖基個數(shù)不同,極性差異較大,因此在溶劑系統(tǒng) A中,GCL-I和 GCL-II主要集中在下相,而GCL-III主要集中在上相,分配系數(shù)很不理想。為了使甘油糖脂組分GCLI和GCL-II在溶劑系統(tǒng)上相中有合適的分配,需在溶劑體系A(chǔ)的基礎(chǔ)上加入一定量的石油醚溶劑,由于石油醚主要進入下相,使得下相極性變?nèi)酰仁挂徊糠指视吞侵M分向上相轉(zhuǎn)移,從而得到合適的分配系數(shù)。最后,選定系統(tǒng)C作為高速逆流色譜分離的溶劑體系,即氯仿-石油醚-甲醇 -水(5∶2∶6∶4)。
由于HSCCC允許粗樣直接上樣分離,有時樣品非常復(fù)雜,其組分所覆蓋的極性范圍很寬(如甘油糖脂組分 GCL-I、GCL-II和 GCL-III),采用梯度或等比例洗脫很難實現(xiàn)一次性分離,因此本試驗采用雙向洗脫模式(dual-mode elution),即第一步采取反向洗脫(上相為固定相,下相為流動相),第二步采取正向洗脫(上相為流動相,下相為固動相)[16]。
第一步采取反相洗脫,以上相為固定相,下相為流動相。試驗條件:氯仿-石油醚-甲醇-水(5∶2∶6∶4),進樣量 3.0 g,流動相流速為 2.0 mL/min,轉(zhuǎn)速800 r/min,收集 6 min/tube(15 mL試管),固定相保留率62%。根據(jù)TLC結(jié)果(圖2)可知,通過第一步反向洗脫后,可將甘油糖脂組分GCL-I和GCL-II完全分離開來。合并30~72管和84-134管,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)和冷凍干燥后分別得GCL-I(300 mg)和GCL-II(600 mg)。
圖2 HSCCC-D1200分離南瓜甘油糖脂的薄層色譜圖
第二步采取正向洗脫,即當GCL-I和GCL-II被分離后,將原來的固定相換作流動相,從相反的方向泵入柱中。根據(jù)TLC結(jié)果(圖3)可知,通過第二步正向洗脫后,可將甘油糖脂組分GCL-III分離開來。合并10~56管,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)和冷凍干燥后得GCL-III(300 mg)。
圖3 HSCCC-D1200分離南瓜甘油糖脂的薄層色譜圖
經(jīng)高效液相-蒸發(fā)光散射(HPLC-ELSD)檢測發(fā)現(xiàn),3種甘油糖脂組分 GCL-I、GCL-II和GCL-III并不是單體,它們都分別含有2種化合物,說明這2種化合物結(jié)構(gòu)極其相似,采用HSCCC很難一步將其分離,還需進一步聯(lián)合制備型HPLC分離。
圖4為組分 GCL-I、GCL-II、GCL-III的制備型HPLC分離圖譜。收集主峰,減壓濃縮至干,最后冷凍干燥,分別得到化合物 1(105 mg)、2(145 mg)、3(250 mg)、4(245 mg)、5(105 mg)和6(120 mg),經(jīng)HPLC-ELSD測定,純度均達到98%以上。
圖4 GCL-I,GCL-II和GCL-III的制備型HPLC色譜圖
應(yīng)用多種波譜學(xué)方法(1H NMR,13C NMR,DEPT 90/135,HSQC,HMBC,HR-ESI-MS等),參照文獻[17],確定6個單體化合物分別為二半乳糖亞麻酰甘油(DGMG,18∶3)、二半乳糖亞油酰甘油(DGMG,18∶2)、三半乳糖亞麻酰甘油(TGMG,18∶3)、三半乳糖亞油酰甘油(TGMG,18∶2),四半乳糖亞麻酰甘油(QGMG,18∶3)和 四半乳糖亞油酰甘油(QGMG,18∶2),如圖5。
圖5 甘油糖脂的結(jié)構(gòu)式
表1 甘油糖脂對人結(jié)腸癌細胞COLO205和小鼠黑色素瘤細胞B16-F10體外增殖抑制效果(IC50)
由表1可以看出,6種甘油糖脂對人結(jié)腸癌細胞COLO205和小鼠黑色素瘤細胞B16-F103均有一定的生長抑制作用。構(gòu)效關(guān)系表明,雙糖三鍵甘油糖脂DGMG(18∶3)對人結(jié)腸癌 COLO205細胞和小鼠黑色素瘤B16-F10細胞的抗腫瘤活性最強(P<0.01),其半數(shù)抑制濃度 IC50分別為0.052 mg/mL和0.046 mg/mL,TGMG(18∶3)次之,而四糖雙鍵甘油糖脂QGMG(18∶2)抗腫瘤活性最弱,說明甘油糖脂結(jié)構(gòu)組成對其活性有很大的影響,即脂酰基飽和度的不同、糖基數(shù)目的不同都會影響到甘油糖脂的抗腫瘤活性。表1數(shù)據(jù)顯示,甘油糖脂抗腫瘤活性隨著分子中半乳糖基數(shù)目的增多,活性減弱,雙糖活性最強,四糖活性較弱;分子中糖基數(shù)目一定,抗腫瘤活性隨著不飽和程度的增加而提高,如含3個不飽和鍵的甘油糖脂 DGMG(18∶3)和 TGMG(18∶3)抗腫瘤活性分別強于含2個不飽和鍵的甘油糖脂DGMG(18∶2)和TGMG(18∶2),這一研究結(jié)果與Hou CC等的研究結(jié)果相一致。Hou CC等[12]從昭和草中分離得到一種含雙亞麻?;母视吞侵琩LGG,結(jié)構(gòu)-活性相關(guān)性研究證明雙亞麻?;视徒Y(jié)構(gòu)部分為重要的活性結(jié)構(gòu)特征,富含dLGG成分的昭和草萃取物較癌癥化療藥劑——順鉑更顯著抑制小鼠皮膚黑色素腫瘤的生長。
本研究采用高速逆流色譜與制備型高效液相相結(jié)合的方法,從南瓜中制備出6種高純度的甘油糖脂單體,該方法制備量大(達到克量級),分離效率高,節(jié)約成本(溶劑系統(tǒng)可反復(fù)使用),是一種極具潛力的制備方法??鼓[瘤作用的試驗研究表明,6種甘油糖脂單體對人結(jié)腸癌細胞COLO205和小鼠黑色素瘤細胞B16-F103均有一定的生長抑制作用,其中雙糖三鍵甘油糖脂 DGMG(18∶3)對人結(jié)腸癌 COLO205細胞和小鼠黑色素瘤B16-F10細胞的抗腫瘤活性最強,其半數(shù)抑制濃度IC50分別為0.052 mg/mL和0.046 mg/mL,TGMG(18∶3)次之,而四糖雙鍵甘油糖脂QGMG(18∶2)抗腫瘤活性最弱。構(gòu)效關(guān)系表明,抗腫瘤能力隨著脂?;伙柡统潭鹊脑黾佣岣?,隨糖基數(shù)目的增加而降低。南瓜中糖苷類化合物作為抗腫瘤藥物具有較好的開發(fā)前景。需要說明的是,盡管提取過程中使用了大量的對人體有害物質(zhì),但將提取物中的有毒的有機溶劑蒸干后,再加入無毒的有機溶劑,比如乙醇,再將乙醇蒸干后,基本上就檢不出有毒的有機溶劑殘留了,因而不會影響該化合物在食品工業(yè)中的應(yīng)用。
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