田嘉瑩 田國忠 熊慶華 李梅秀 盛寶英△
1)佳木斯大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)三科 佳木斯 154000 2)佳木斯大學(xué) 佳木斯 154000 3)佳木斯大學(xué)附屬第一醫(yī)院佳木斯 154000
阿爾茨海默?。ˋ1zheimer’s disease,AD)為老年人群中最常見的中樞退行性腦病。AD的特點為β-淀粉樣多肽(Aβ)聚集形成的老年斑及神經(jīng)元減少[1]。那么如何避免腦內(nèi)Aβ致使神經(jīng)元減少或者誘發(fā)神經(jīng)干細(xì)胞分化為神經(jīng)元并遷移受損部位進(jìn)行修復(fù)就成為現(xiàn)在最為關(guān)注的研究方向之一?,F(xiàn)研究證實Aβ誘導(dǎo)的神經(jīng)元損傷,主要為細(xì)胞凋亡。細(xì)胞凋亡過程中除基因調(diào)控外,可由細(xì)胞內(nèi)的離子穩(wěn)態(tài)尤其是鉀離子的穩(wěn)態(tài)調(diào)控。本實驗將探討鉀通道阻滯劑(tetraethy-1ammonium,TEA)作用于 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡中鉀通道的作用;c-Jun 氨基端激酶(c-Jun N-termina1kinases,JNK)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑在神經(jīng)干細(xì)胞死亡過程中磷酸化的改變及鉀通道與JNK的關(guān)系,從而進(jìn)一步了解AD的發(fā)病機(jī)制。
1.1 實驗動物、主要試劑及主要儀器 雄性 Wistar大鼠<24h,由佳木斯大學(xué)動物中心提供;四乙胺、MTT、SP600125、Hoechst33342(Sigma公司);Aβ1-40(Biosouxee公司);Caspase分析試劑盒(美國Promega公司);二抗(進(jìn)口分裝);Nestin(北京博奧森生物技術(shù)有限公司);DAB試劑盒(北京中山生物技術(shù)有限公司);Actin多克隆抗體(Santa cruz公司);10-200 kDa蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)(Fermentas)。酶標(biāo)計數(shù)儀E1X800(Bio-TEK公司);IBE2003倒置熒光顯微鏡(重慶光學(xué)儀器廠)。
1.2 大鼠海馬區(qū)神經(jīng)干細(xì)胞的分離與傳代培養(yǎng)及鑒定 新生的 Wistar大鼠(<24h),取海馬組織,用 Hank’s液進(jìn)行漂洗,將組織剪成1mm3左右的小塊加入培養(yǎng)液(DMEM/F12 1:1,2%B27,bFGF 20μg/L,表皮生長因子20μg/L)5 mL,制成單細(xì)胞懸液,調(diào)整一定濃度后接種于培養(yǎng)瓶中,將其放入5%CO2培養(yǎng)箱中,每3d換半量培養(yǎng)液一次,每7d傳代一次。取傳代穩(wěn)定的神經(jīng)干細(xì)胞行Nestin細(xì)胞免疫化學(xué)檢測。
1.3 實驗分組 實驗一共分4組:Aβ1-40組:將傳三代后的神經(jīng)干細(xì)胞加入 Aβ1-405μm;Aβ1-40+TEA組:在 Aβ1-405μm孵育前30min加入TEA 5mm;TEA對照組:神經(jīng)干細(xì)胞加入TEA 5mm;空白對照組:加入等量的培養(yǎng)液的神經(jīng)干細(xì)胞培養(yǎng)組。上述各組分別在0h、12h、24h和48h各時間點行細(xì)胞活性及凋亡檢測。
實驗二共分4組:Aβ1-40組:在傳三代后的神經(jīng)干細(xì)胞加入 Aβ1-405μm;Aβ1-40+SP600125組:在 Aβ1-405μm 孵育前30 min加入SP 600125 10μm;SP對照組:神經(jīng)干細(xì)胞加入SP600125 10μm;空白對照組:加入等量的培養(yǎng)液的神經(jīng)干細(xì)胞培養(yǎng)組。上述各組分別在0h、12h、24h和48h各時間點行細(xì)胞活性及凋亡檢測。
1.4 MTT法 將 MTT溶液(5mg/mL)20μL加入細(xì)胞中,放置37℃培養(yǎng)箱,將96孔板內(nèi)的培養(yǎng)基棄去,加入溶解液DMSO 150μL,振蕩10min使其充分溶解結(jié)晶產(chǎn)物。在酶標(biāo)儀上以波長490nm檢測每孔的OD值。每組設(shè)3個孔,實驗重復(fù)3次,細(xì)胞存活率的計算:細(xì)胞存活率=試驗組光吸收值/對照組光吸收值×100%。
1.5 Hoechst33342法 將Hoechst33342加入各組細(xì)胞中,37℃培養(yǎng)箱30min。加入4%多聚甲醛與培養(yǎng)液以1:3混合,固定細(xì)胞10min。固定好后,將細(xì)胞懸液涂在載玻片上加蓋玻片。熒光顯微鏡下在紫外(UV濾光片)激發(fā)下觀察結(jié)果。隨機(jī)選取10個視野統(tǒng)計每個視野中的陽性細(xì)胞數(shù),至少重復(fù)3次,計算細(xì)胞凋亡發(fā)生率。
1.6 比色法 用PBS在細(xì)胞表面漂洗2次,收集到EPPendoff管內(nèi),450×g 4℃離心10min收集細(xì)胞。放于冰上,用冰冷的PBS漂洗一次,然后懸浮在100μL細(xì)胞裂解緩沖液中。以液氮-常溫的方式裂解細(xì)胞,然后在冰上孵育15 min。15000×g 4℃離心20min后收集上清液。用Bradford方法測蛋白的濃度。按試劑盒依次在96孔板內(nèi)依次加樣。加2μL DEVD-pNA 底 物 (10mm)到 96 孔 板 內(nèi)。用parafi1m封口膜將板子封嚴(yán),37℃孵育4h。在405nm測量吸光度,計算Caspase-3特異性活性。
1.7 Western b1ot方法 將細(xì)胞在冰上去除培養(yǎng)液,PBS洗一次,每孔加入含PMSF的細(xì)胞裂解液50μL,冰上孵育30min,刮取細(xì)胞移入EP管中,4℃12 000rpm離心5min,吸取上清液轉(zhuǎn)移入EP管-70℃保存。用細(xì)胞蛋白總濃度測定試劑盒測出每個蛋白標(biāo)本的蛋白質(zhì)濃度,加入1oading buffer。配膠,上樣,電泳,半干轉(zhuǎn)膜,封閉,一抗孵育過夜,PBST洗膜,加二抗,搖床搖1h,PBST洗膜,加發(fā)光液發(fā)光,image J軟件分析。
2.1 神經(jīng)干細(xì)胞培養(yǎng)及Nestin抗原表達(dá) 新生大鼠分離海馬區(qū)的單個神經(jīng)干細(xì)胞3d后呈透亮的圓形,傳代培養(yǎng)至第三代可見培養(yǎng)液中形成較大的神經(jīng)球,神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)記性蛋白Nestin的表達(dá)呈陽性。
2.2 TEA對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞存活率、凋亡率及caspase-3活性的影響
2.2.1 TEA對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞的存活率的影響:Aβ1-40組神經(jīng)干細(xì)胞在不同的時間點,細(xì)胞存活明顯減少(P<0.05),且隨時間延長細(xì)胞存活率下降(P<0.05)。Aβ1-40+TEA組較 Aβ1-40組細(xì)胞存活率明顯增加(P<0.05),而空白對照組和TEA對照組神經(jīng)干細(xì)胞存活率無明顯改變(P>0.05)。
2.2.2 TEA對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡的影響:熒光鏡下與空白對組相比Aβ1-40組神經(jīng)干細(xì)胞48h后出現(xiàn)部分細(xì)胞核呈濃染的碎塊狀,典型的凋亡形態(tài)學(xué)改變,凋亡率(20.3±0.6)%,(P<0.01)。Aβ1-40+TEA 組較 Aβ1-40組細(xì)胞凋亡形態(tài)學(xué)變化少,凋亡發(fā)生率明顯下降(11.6±0.4)%,差異具有顯著性(P<0.01)。
2.2.3 TEA對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞 Caspase-3活性的影響:Aβ1-40+TEA 組在各時間點均可降低 Caspase-3的表達(dá)(P<0.05),特別在24h這種趨勢更為明顯(P<0.01),而空白對照組和TEA對照組在各時間點Caspase-3特異性活性未發(fā)生明顯改變。
2.3 JNK及JNK的選擇性阻斷劑SP600125對 Aβ1-40誘導(dǎo)神經(jīng)干細(xì)胞磷酸化的影響
2.3.1 β1-40誘導(dǎo)神經(jīng)干細(xì)胞的JNK磷酸化的表達(dá):神經(jīng)干細(xì)胞經(jīng)Aβ1-405μm孵育48h,不同時間點JNK的磷酸化均有表達(dá)。JNK磷酸化水平隨著時間的延長也逐漸增加,在24h達(dá)到高峰(P<0.01)。并且JNK的阻斷劑SP600125可顯著阻斷這種激活。
2.3.2 SP600125對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞的存活率影響:Aβ1-40+ SP600125組與 A1-40組相比可明顯減輕神經(jīng)干細(xì)胞凋亡,使神經(jīng)干細(xì)胞的存活率從(72.7±3.2)%、(50.35±2.7)%、(42.7±7.3)%分別增加到(92.6±0.70)%,(76.1±0.73)%、(67.0±0.64)%,P<0.01。
2.3.3 SP600125對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡的情況:Aβ1-40+SP600125組可明顯降低5μm Aβ1-40孵育引起的神經(jīng)干細(xì)胞的凋亡的發(fā)生,SP600125使凋亡發(fā)生率從(0.3±0.6)%降至(9.6±1.3)%(P<0.01)。而SP600125組無明顯變化,說明SP600 125本身不影響細(xì)胞的凋亡。
2.3.4 SP600125對 Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞 Caspase-3活性的變化:在檢查JNK阻斷劑SP600125的作用時,Aβ1-40+SP600125組可顯著減少 Caspase-3的激活,從 Aβ1-40組的(12.46±0.47)pmo1/(h·μg)下降到(5.09±0.40)pmo1/(h·μg)(n=3,P<0.01)。
2.4 TEA對Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞JNK磷酸化表達(dá)的影響 Aβ1-40+TEA組較 Aβ1-40組JNK磷酸化表達(dá)顯著降低(P<0.01)。而空白對照組和TEA組神經(jīng)干細(xì)胞JNK磷酸化表達(dá)無明顯改變(P>0.05)。
AD是與衰老相關(guān),以嚴(yán)重的高級認(rèn)知功能障礙為特征的隱襲性退行性腦病,其發(fā)病機(jī)制至今未明[2-3]。病理學(xué)特點為Aβ聚集成老年斑和神經(jīng)纖維纏結(jié)形成及神經(jīng)元減少[4-5],其中Aβ聚集造成細(xì)胞凋亡是AD發(fā)病的關(guān)鍵因素之一。
在成年哺乳動物正常腦組織中海馬齒狀回的顆粒下層及側(cè)腦室壁的腦室下層存在神經(jīng)干細(xì)胞聚集,這些細(xì)胞增生活躍,特別在缺血缺氧情況下神經(jīng)元損傷及丟失可刺激這些區(qū)域神經(jīng)干細(xì)胞的增殖和分化并對其進(jìn)行補(bǔ)充。研究表明,AD患者補(bǔ)充“救活”機(jī)制卻沒有發(fā)生,表現(xiàn)為神經(jīng)元持續(xù)性的缺失。本實驗研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)Aβ1-40孵育后神經(jīng)干細(xì)胞增殖減速,凋亡增多,且發(fā)育不良,這可能是神經(jīng)干細(xì)胞無法分化成相應(yīng)神經(jīng)元,而導(dǎo)致神經(jīng)元缺失增多的原因。
細(xì)胞凋亡不僅可由基因調(diào)控,也可由細(xì)胞內(nèi)的離子穩(wěn)態(tài)尤其是K+的穩(wěn)態(tài)調(diào)控。研究證實,心肌細(xì)胞凋亡中鉀通道被異常激活,K+外向電流增加。同樣膽堿能干細(xì)胞株SN 56神經(jīng)元與Aβ共培養(yǎng)也得到相同的結(jié)果[6-7]。本實驗研究發(fā)現(xiàn),Aβ1-40與神經(jīng)干細(xì)胞共孵育時,細(xì)胞發(fā)生凋亡。鉀通道阻滯劑TEA可以明顯減輕Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞死亡,使神經(jīng)干細(xì)胞的存活率升高,凋亡的發(fā)生率明顯下降,從而推測在Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡時激活了鉀通道。本研究通過應(yīng)用TEA,在Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡模型中進(jìn)一步檢測了凋亡相關(guān)蛋白的改變與鉀通道之間的關(guān)系。
Caspases是哺乳動物細(xì)胞凋亡的主要相關(guān)蛋白酶家族。凋亡信號起動 Caspase-3的活化[8],活化的 Caspase-3作用于底物蛋白,促進(jìn)底物分解,引起凋亡[9]。因此,通過檢測Caspase-3的活性大小即可了解細(xì)胞凋亡的變化。實驗中我們在 Aβ1-40孵育前加入 TEA 5mm 預(yù)處 理 30min,結(jié)果Caspase-3的活性被明顯抑制了,說明發(fā)生凋亡的過程中,鉀通道的激活上調(diào),先于Caspase-3的激活。TEA有望成為治療AD的藥物作用靶點。但是鉀通道介導(dǎo)凋亡的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路尚不明確。
絲裂原激活蛋白激酶 (MAPK)是細(xì)胞凋亡的一條重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,其中JNK和p38激酶信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路可促進(jìn)細(xì)胞凋亡。本實驗利用Western b1ot方法檢測神經(jīng)干細(xì)胞經(jīng)Aβ1-40孵育后,JNK磷酸化水平,結(jié)果不同時間點JNK的磷酸化均有表達(dá)。JNK磷酸化水平隨著時間的延長也逐漸增加,并且JNK的阻斷劑SP600125可顯著阻斷這種激活。JNK特異性阻斷劑SP600125可抑制Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞相亡,對Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞毒性具有明顯的保護(hù)作用。研究證實,Aβ誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞凋亡中,無論是體內(nèi)還是體外實驗,均有 Caspase-3的激活[10-11]。本研究進(jìn)一步證實Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞凋亡中Caspase-3的活性增加,且SP600125可以抑制Caspase-3的激活。說明JNK通路發(fā)生在Caspasc-3激活的上游。驗證JNK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑在Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞損傷中具有重要的作用。
鉀通道激活和JNK的磷酸化二者之間是否有聯(lián)系?本研究應(yīng)用TEA作用于Aβ1-40誘導(dǎo)的神經(jīng)干細(xì)胞檢測JNK磷酸化水平的變化,結(jié)果JNK磷酸化表達(dá)在各時間點均顯著降低。說明Aβ1-40引起的鉀通道激活和JNK磷酸化兩者之間有一定的相互聯(lián)系,進(jìn)而誘發(fā)了下游凋亡相關(guān)蛋白的改變。通過對AD發(fā)病機(jī)制的研究為神經(jīng)干細(xì)胞凋亡的早期調(diào)控提供有益的補(bǔ)充,為進(jìn)一步開發(fā)治療AD藥物提供新的思路和方法。
[1]張營麗,唐偉 .阿爾茨海默病的影響因素[J].中國實用神經(jīng)疾病雜志,2012,15(10):85-87.
[2]Vi11af1ores OB,Chen YJ,Chen CP,et al.Curcuminoids and resveratrol as anti-A1zheimer agents[J].Taiwanese journa1of obstetrics & gyneco1ogy,2012,51(4):515-25.
[3]Baenekow A,Jahn R,Sehe11er M.Synaptophysin:A substrate for the Protein tyrosine kinase PP60csrc in intact synaptic vesic1es[J].oneogene,1990,5(6):1 019-24.
[4]Bai1ey JA,1ahiri DK.Neuronal differentiation is accompanied by increased levels of SNAP-25protein in feta1rat primary cortical neurons:implications in neuronal plasticity and A1zheimer's disease[J].Anna1sof the New York Academy of Sciences,2006,1 086:54-65.
[5]Vescovi A1,Parati EA,Gritti A,et al.Iso1ation and c1oning of multi-potential stem cells from the embryonic human CNS an estab1ishment of transplantable humanneura1stem cell lines byepigenetic stimu1ation[J].Exp Neurol,1999,156(1):71-83.
[6]Zhu X,Castellani RJ,Takeda A,et al.Differential activation of neuronal ERK,JNK/SAPK and P38in Alzheimer disease:the“two hit”hypothesis[J].Mech Ageing Dev,2001,123:39-46.
[7]Yu SP,F(xiàn)arhangrazi ZS,Ying HS,et al.Enhancement of outward potassium current may participate inβ-amy1oid peptideinduced cortical neuronal death[J].Neurobiol Dis,2007,5:81-88.
[8]Hughes Jr FM,Bortner CD,Purdy GD,et al.Intrace11u1ar K+suppresses the activation of apoptosis in lymphoeytes[J].J Biol Chem,2001,272:30 567-30 576.
[9]Ho TC,Chen S1,Yang YC,et al.Cytosolic phospholipase A2-{alpha}is an ear1y apoptotic activator in PEDF-induced endothelial cel apoptosis[J].American journal of physio1ogy.Cell physiology,2009,296(2):C273-84.
[10]Marin N,Romero B,Bosch-Morell F,et al.Beta-amyloid-induced activation of caspase-3in primary cu1tures of rat neurons[J].Mech Ageing Dev,2000,119(1-2):63-67.
[11]Takuma H,Tomiyama T,Kuida K,et al.Amy1oid beta peptide-induced cerebra1neurona1 1oss is mediated by caspase-3 in viv[J].J Neuropatho1Exp Neuro1,2004,63(3):255-261.