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      ABRA在不同年齡大鼠腰段脊髓中的表達變化

      2013-01-04 03:05:08劉麗華伍校瓊楊寶林關(guān)瑩露簡曉紅蔡維君
      關(guān)鍵詞:年齡階段腰段陽性細(xì)胞

      劉麗華 伍校瓊 楊寶林 關(guān)瑩露 簡曉紅 朱 武 蔡維君*?剼?

      (1中南大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院組織學(xué)與胚胎學(xué)系,長沙410013;2中南大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院人體解剖學(xué)與神經(jīng)生物學(xué)系,長沙410013;3湖南師范大學(xué)醫(yī)學(xué)院護理系,長沙410013)

      ABRA(Actin binding Rho activator)也稱為STARS(striated muscle activator of Rho signaling)與MS1(Myocyte Stress-1),是近年 Arai等人首先在心臟發(fā)現(xiàn)的一種結(jié)合在肌小節(jié)I帶的43 kD的肌動蛋白結(jié)合蛋白(actin-binding proteins,ABPs),能激活Rho信號,使肌動蛋白單體(G-actin)與肌動蛋白絲(F-actin)結(jié)合增加,從而增強肌動蛋白的多聚化,并對多聚化形式的actin有穩(wěn)定作用[1-4]。其C末端含有兩個獨立的F-actin結(jié)合區(qū)域 (ABD1/ABD2),具有肌動蛋白結(jié)合功能[5]。Kuwahara等研究發(fā)現(xiàn)ABRA參與了心肌肥大與心肌病的病理過程[6],Lamon等發(fā)現(xiàn)在阻力訓(xùn)練引起的骨骼肌肥大中,ABRA表達上調(diào)[7],Troidl等發(fā)現(xiàn)提高側(cè)支血管ABRA的表達能明顯地促進側(cè)支血管的快速生長[4,8]。這些研究表明ABRA參與調(diào)節(jié)actin的功能,增強actin的多聚化,從而對心肌、骨骼肌、平滑肌細(xì)胞的功能具有重要的作用。最近,我們課題組發(fā)現(xiàn)ABRA在神經(jīng)系統(tǒng)中也有表達,提示ABRA在神經(jīng)系統(tǒng)亦具有一定的作用[9]。脊髓神經(jīng)元的分化演變,生長發(fā)育過程受各種理化因子或相關(guān)蛋白的調(diào)節(jié)與控制,如角蛋白、神經(jīng)細(xì)絲蛋白等[10]。作為ABPs新加入的成員之一,ABRA是否對脊髓的生長發(fā)育具有一定作用呢?此前,ABRA在不同年齡大鼠脊髓中表達未見相關(guān)報道。為此,本研究運用Western blot及免疫熒光術(shù)檢測ABRA在不同年齡階段大鼠腰段脊髓的表達變化,為進一步研究其在脊髓中的功能活動提供形態(tài)學(xué)基礎(chǔ)。

      材料和方法

      1.材料

      不同年齡階段正常SD大鼠(中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)院實驗動物中心提供)共計36只,雄雌不限,新生鼠(生后7d)、成年鼠(6m)、老年鼠(20m)各 12只。其中不同年齡階段的各6只用于蛋白質(zhì)提取,其余用于免疫組織化學(xué)檢測。所有動物的實驗處理過程,均按中南大學(xué)實驗動物操作規(guī)則進行。

      2.方法

      2.1 Western blot檢測

      不同年齡階段大鼠腹腔麻醉后,在冰上將各組腰段脊髓(L4-L6)迅速取出,稱重后,以100 mg/ml加入組織裂解液(1∶100加入蛋白酶抑制劑),冰浴勻漿。以1℃,12000轉(zhuǎn)/分鐘離心20min左右,吸取上清,以BCA法進行蛋白定量,沸水中煮沸變性,冷卻后置4℃保存。分別取不同年齡階段腰段脊髓組織蛋白樣品各40μg,行SDS-PAGE(分離膠濃度為10%)電泳,后進行濕式電轉(zhuǎn)移。轉(zhuǎn)移后的NC膜(Millipore公司)用含5%脫脂奶粉的TBST緩沖液室溫封閉90min,兔ABRA多克隆抗體 (1∶200,sigma,美國)和鼠GAPDH抗體室溫孵育1 h后,4℃過夜,然后轉(zhuǎn)入 HRP-羊抗兔IgG(1∶2000)和HRP-驢抗鼠IgG(1∶1000)中,室溫孵育2h,每次抗體孵育后均用TBST漂洗10min×3次,ECL發(fā)光,顯影,定影。免疫印跡照片用激光掃描儀掃描成圖片后用Image-pro plus(IPP)6.0軟件分別測定各蛋白條帶的光密度(OD)值,以ABRA條帶的OD值與相應(yīng)內(nèi)參GAPDH條帶的OD值比值表示ABRA蛋白相對量。

      2.2 灌注取材和切片準(zhǔn)備

      將實驗用大鼠,以10%水合氯醛溶液經(jīng)腹腔注射(4mg/kg)麻醉成功后,剪開胸腔,顯露心臟,從左心室插管至主動脈,剪開右心耳??焖俟嘧⑸睇}水,待流出的液體清亮后,再灌注4%多聚甲醛固定。取腰段(L4-L6)脊髓放入4%多聚甲醛溶液中后固定,常規(guī)梯度浸糖至組織塊沉底后取出,OCT復(fù)合物包埋,用三頓冷凍切片機連續(xù)切片,片厚15μm。

      2.3 免疫熒光組織化學(xué)顯色

      組織切片用5%BSA封閉1h后同時加入一抗兔來源ABRA多克隆抗體 (1:50,sigma,美國)與小鼠來源 Neu N單克隆抗體(1:2000,sigma,美國),4℃過夜,然后加入生物素化羊抗兔IgG(1:200,sigma,美國)及偶聯(lián)熒光素Cy3的驢抗鼠IgG(1:200,sigma,美國),室溫孵育2 h,再加入鏈霉親和素偶聯(lián)的熒光素 Cy2(1:500),室溫孵育lh,其中除5%BSA封閉之外,其余每次抗體孵育后均用0.01mol/L PBS洗3次,每次10min。

      陰性對照用PBS代替一抗,其余各步驟均同,以排除二抗的非特異性染色。

      Nikon熒光顯微鏡觀察并拍照,圖片用EZ-C1 3.70 FreeViewer進行處理。

      2.4 統(tǒng)計學(xué)處理

      結(jié) 果

      1.ABRA在不同年齡階段腰段脊髓中的蛋白水平表達變化

      Western blot結(jié)果顯示,與成年組、老年組比較,新生組大鼠腰段脊髓中的蛋白表達水平最高,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),成年組與老年組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,有代表性的印跡條帶及至少三次重復(fù)實驗光密度掃描后統(tǒng)計結(jié)果 (見圖1)。

      2.ABRA在不同年齡階段腰段脊髓中的細(xì)胞定位

      在腰髓前角,ABRA廣泛表達于神經(jīng)元的胞核、胞漿和突起,與前角運動神經(jīng)元存在共定位(圖2、圖6)。陽性細(xì)胞計數(shù)顯示:與成年組(0.33±0.05)、老年組(0.36±0.02)比較,新生鼠(0.18±0.03)ABRA+Neu N雙陽性細(xì)胞占總ABRA陽性細(xì)胞百分比最低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),成年組與老年組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(圖3)。

      在腰髓后角,ABRA與小的Neu N(神經(jīng)元標(biāo)記物)陽性感覺神經(jīng)元存在共定位,也主要表達在神經(jīng)元胞核、胞漿和突起內(nèi)(圖4)。陽性細(xì)胞計數(shù)顯示:與成年組(0.67±0.06)、老年組(0.71±0.05)比較,新生鼠(0.40±0.04)ABRA+Neu N雙陽性細(xì)胞占總ABRA陽性細(xì)胞百分比最低,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),成年組與老年組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(圖5)。

      討 論

      ABRA是2002年Arai等使用差異基因篩選獨自鑒定的表達在小鼠胚胎心臟的新基因[1]以及Mahadeva等利用分子索引鑒別的在左心室負(fù)荷過大下的調(diào)節(jié)基因[2],隨后的研究發(fā)現(xiàn)ABRA還參與了心肌肥大、骨骼肌肥大的病理過程及側(cè)支血管生長,ABRA通過參與調(diào)節(jié)actin的功能,增強actin的多聚化,對心肌、骨骼肌、平滑肌細(xì)胞的功能起重要的作用[4,6-8]。

      我們課題組前期研究顯示ABRA在神經(jīng)系統(tǒng)中廣泛表達,ABRA可見于神經(jīng)元的胞核、胞漿、突起內(nèi),提示ABRA可能在神經(jīng)系統(tǒng)中具有一定的作用[9]。在本實驗中我們對各年齡組腰段脊髓ABRA的表達進行了觀察,并發(fā)現(xiàn)不同年齡階段大鼠腰段脊髓中均檢測到ABRA的表達,且在不同年齡階段表達有變化,新生大鼠腰髓中ABRA蛋白水平表達最高,成年鼠及老年鼠表達下調(diào)且維持在一定的生理水平,推測ABRA作為ABPs新成員之一,可能與神經(jīng)細(xì)胞內(nèi)其他ABPs一樣,如profilin[11]、tropomysin[12]等,通過調(diào)節(jié)actin絲的形態(tài)、長度,影響神經(jīng)細(xì)胞的生長、遷移及形態(tài)的改變,進而影響器官的發(fā)育,傷口的愈合等[13-15]。ABRA在新生大鼠腰髓中表達最強,這可能與大鼠發(fā)育早期神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育分化等有關(guān),至成年及老年仍維持在一定的生理水平,可能與ABRA參與調(diào)節(jié)actin的多聚化,維持成熟神經(jīng)元結(jié)構(gòu)功能的穩(wěn)定性有關(guān)的。

      本實驗中免疫熒光染色顯示ABRA廣泛分布于各年齡組前角運動神經(jīng)元,推測ABRA可能與腰段脊髓前角運動神經(jīng)元的發(fā)育分化和出生后長期的神經(jīng)元生存維持作用有關(guān)。在后角,ABRA高表達于感覺神經(jīng)元,提示ABRA可能與外周感覺傳入有關(guān)。新生鼠ABRA+Neu N雙陽性細(xì)胞占總ABRA陽性細(xì)胞百分比顯著低于成年組、老年組,提示ABRA在大鼠發(fā)育早期不僅表達在神經(jīng)元內(nèi),可能還表達于非神經(jīng)元細(xì)胞內(nèi),共同影響大鼠的神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育。

      目前,有關(guān)ABRA與神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育的研究只是剛剛起步,深入研究ABRA與神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育的關(guān)系對于重新認(rèn)識ABPs在神經(jīng)系統(tǒng)的發(fā)育作用及進一步闡述相關(guān)疾病的機制具有重要意義,本文的結(jié)果為探討ABRA在發(fā)育期腰段脊髓中的作用提供了一些形態(tài)學(xué)證據(jù)。ABRA在腰段脊髓表達及隨發(fā)育時段而變化的事實提示ABRA可能參與腰段脊髓的發(fā)育成熟、突觸的形成以及神經(jīng)可塑性調(diào)節(jié)過程。

      [1]Arai A,Spencer JA,Olson EN.STARS,a striated muscle activator of Rho signaling and serum response factor-dependent transcription.J Biol Chem,2002,277(27):24453-24459

      [2]Mahadeva H,Brooks G,Lodwick D,et al.ms1,a novel stress-responsive,muscle-specific gene hat is up-regulated in the early stages of pressure overload-induced left ventricular hypertrophy.FEBS Lett,2002,521(1-3):100-104

      [3]Peng YB,Guan HP,F(xiàn)an B,et al.Molecular characterization and expression pattern of the porcine STARS,a striated muscle-specific expressed gene.Biochem Genet,2008,46(9-10):644-651

      [4]Troidl K,Rüding I,Cai WJ,et al.Actin-binding rho acti-vating protein (Abra)is essential forfluid shear stress-induced arterio-genesis.Arterioscler Thromb Vasc Biol,2009,29(12):2093-2101

      [5]Fogl C,Puckey L,Hinssen U,et al.A structural and functional dissection of the cardiac stress response factor MS1.Proteins,2011,80:398-409

      [6]Kuwahara K,Teg Pipes GC,Mc Anally J,et al.Modulation of adverse cardiac remodeling by STARS,a mediator of MEF2 signaling and SRF activity.J Clin Invest,2007,117(5):1324-1334

      [7]Lamon S,Wallace MA,Léger B,et al.Regulation of STARS and its downstream targets suggest a novel pathway involved in human skeletal muscle hypertrophy and atrophy.J Physiol,2009,587(8):1795-1803

      [8]Troidl C,Troidl K,Eitenmuller I,et al.Overexpression of actin-binding Rho activating protein triggers collateral growth in the rabbit hind limb ischemic model.circulation,2006,114(18):39-42

      [9]Lihua L,Mingying L,Baolin Y,et al.Actin-binding Rho activating protein is expressed in the central nervous system of normal adult rats.Neural Regen Res,2012,7(13):965-970

      [10]Fontana PA,Barbeito CG,Goya RG,et al.Impact of very old age on the expression of cervical spinal cord cell markers in rats.J Chem Neuroanat,2009,37(2):98-104

      [11]Witke W,Podtelejnikov AV,Nardo AD,et al.In mouse brain profilin I and profilin II associate with regulators of the endocytic pathway and actin assembly.EMBO J,1998,17(4):967-976

      [12]Sekino Y,Kojima N,Shirao T.Role of actin cytoskeleton in dendritic spine morphogenesis.Neurochemistry International,2007,51(2-4):92-104

      [13]Ishikawa R,Kohama K.Actin-binding proteins in nerve cell growth cones.J Pharmacol Sci,2007,105(1):6-11

      [14]Pak CW,F(xiàn)lynn KC,Bamburg JR.Actin-binding proteins take the reins in growth cones.Nat Rev Neurosci,2008,9(2):136-47

      [15]Geraldo S,Gordon-Weeks PR.Cytoskeletal dynamics in growth-cone steering.Dev Neurobiol,2009,69(12):761-779

      圖 版 說 明

      圖1 Western blot檢測ABRA在新生鼠、成年鼠、老年鼠腰段脊髓中的表達變化1.新生鼠2.成年鼠3.老年鼠。GAPDH作為上樣對照。*與成年鼠、老年鼠組相比P<0.05。

      圖2 免疫熒光雙標(biāo)顯示ABRA在新生鼠、成年鼠、老年鼠腰段脊髓前角中的分布A-A":ABRA(綠)和 Neu N(紅)在新生鼠腰段脊髓前角的雙標(biāo)記B-B":ABRA(綠)和 Neu N(紅)在成年鼠腰段脊髓前角的雙標(biāo)記C-C":ABRA(綠)和 Neu N(紅)在老年鼠腰段脊髓前角的雙標(biāo)記Bar=50μm 綠:ABRA 紅:Neu N

      圖3 新生鼠、成年鼠、老年鼠腰段脊髓前角中ABRA+Neu N雙陽性細(xì)胞占總ABRA陽性細(xì)胞百分比

      *與成年鼠、老年鼠組相比P<0.05

      圖4 免疫熒光雙標(biāo)顯示ABRA在新生鼠、成年鼠、老年鼠腰段脊髓后角中的分布

      A-A”:ABRA(綠)和 Neu N(紅)在新生鼠腰段脊髓后角的雙標(biāo)記

      B-B”:ABRA(綠)和 Neu N(紅)在成年鼠腰段脊髓后角的雙標(biāo)記

      C-C”:ABRA(綠)和 Neu N(紅)在老年鼠腰段脊髓后角的雙標(biāo)記

      Bar=50μm 綠:ABRA 紅:Neu N

      圖5 新生鼠、成年鼠、老年鼠腰段脊髓后角中ABRA+Neu N雙陽性細(xì)胞占總ABRA陽性細(xì)胞百分比

      *與成年鼠、老年鼠組相比P<0.05

      圖6 ABRA亞細(xì)胞定位圖

      EXPLANATION OF FIGURES

      Fig.1 The expression of ABRA during the lumbar spinal cord of newborn、adult and aged rats by Western blot 1,newborn rats;2,adult rats;3,aged rats.GAPDH served as a loading control.*P<0.05 vs adult and aged rats groups

      Fig.2 Immunofluorescence double staining showed that the distribution of ABRA in the lumbar spinal cord anterior horn of newborn、adult and aged rats A-A":Double-labeling of ABRA (green)and Neu N(red)in the lumbar spinal cord anterior horn of newborn rats B-B":Double-labeling of ABRA (green)and Neu N(red)in the lumbar spinal cord anterior horn of adult rats C-C":Double-labeling of ABRA (green)and Neu N(red)in the lumbar spinal cord anterior horn of aged rats Bar=50μm green:ABRA red:Neu N

      Fig.3 The percentage of ABRA+Neu N double positive cells to total ABRA positive cell in the lumbar spinal cord anterior horn of newborn、adult and aged rats Note:*P<0.05 vs adult and aged rats groups

      Fig.4 Immunofluorescence double staining showed that the distribution of ABRA in the lumbar spinal cord dorsal horn of newborn、adult and aged rats A-A”:Double-labeling of ABRA (green)and Neu N(red)in the lumbar spinal cord dorsal horn of newborn rats B-B”:Double-labeling of ABRA (green)and Neu N(red)in the lumbar spinal cord dorsal horn of adult rats C-C”:Double-labeling of ABRA (green)and Neu N(red)in the lumbar spinal cord dorsal horn of aged rats

      Fig.5 The percentage of ABRA+Neu N double positive cells to total ABRA positive cell in the lumbar spinal cord dorsal horn of newborn、adult and aged rats

      Note:*P<0.05 vs adult and aged rats groups Fig.6 Subcellular location map of ABRA

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