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      DNMT 在胃癌中的表達及DNMT 抑制劑5-氮雜-2'-脫氧胞苷對胃癌的影響

      2012-12-23 04:07:40湯為學王子衛(wèi)
      中國病理生理雜志 2012年7期
      關鍵詞:癌基因細胞株甲基化

      何 苗, 湯為學, 姜 蓉, 范 晶, 張 能, 查 朗, 王子衛(wèi)△

      (重慶醫(yī)科大學1附屬第一醫(yī)院普通外科,2附屬第一醫(yī)院實驗研究中心,3基礎醫(yī)學院,4附屬第一醫(yī)院急診科,重慶400016)

      DNA 甲基化轉移酶(DNA methyltransferase,DNMT)是催化DNA 甲基化修飾的生物酶。一般認為DNMT 高表達導致抑癌基因高甲基化并失活是腫瘤發(fā)展的表觀遺傳機制[1]。但也有資料表明DNMT 低表達及癌基因低甲基化并激活亦是腫瘤的重要特點[2-4];加上既往對DNMT 的研究集中在DNMT1、DNMT3A 和DNMT3B,而對DNMT2 和DNMT3L 探索甚少。本文遂全面分析5 種DNMT 在胃癌與胃黏膜的表達特點,以期對胃癌(腫瘤)表觀遺傳學的研究提供參考。

      材 料 和 方 法

      1 材料

      胃癌與對應癌旁組織(60 對)由重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院胃腸外科提供,標本病理診斷明確。SGC-7901、MKN-45(胃癌細胞株)及GES-1(胃黏膜上皮細胞株)由重慶醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院實驗研究中心饋贈。DNMT1、DNMT2、DNMT3A、DNMT3B 和DNMT3L 抗體購自Santa Cruz;免疫組化與免疫熒光相關試劑購自中杉金橋;免疫印跡相關材料購自碧云天;噻唑藍(MTT)和5-氮雜-2'-脫氧胞苷(5-aza-2'-deoxycytidine)購自Sigma。其它基本實驗材料購自鼎國昌盛與惠爾利公司。

      2 方法

      2.1 免疫組織化學 免疫組化法參照中杉金橋公司提供的試劑盒說明書進行。Ⅰ抗孵育采用4 ℃過夜(Ⅰ抗稀釋比為1∶50);顯色時間均為5 min。

      2.2 免疫組化結果判斷 根據(jù)細胞著色程度區(qū)分染色(a):0(無染色),1(淺黃色),2(黃褐色),3(褐紅色)。區(qū)分染色細胞占相應細胞總體的比率(b):1(b <25%),2(25% ≤b <50%),3(50% ≤b <75%),4(b≥75%)。再根據(jù)a × b 判斷陽性結果(c):陰性(c=0),弱陽性(c =1、2),陽性(c =3、4、6、8),強陽性(c =9、12)。計算表達率包括弱陽性、陽性和強陽性的資料。

      2.3 細胞培養(yǎng) SGC-7901、MKN-45 和GES-1細胞均用加10%胎牛血清的RPMI-1640 培養(yǎng)基培養(yǎng);常規(guī)置于37 ℃、5%CO2孵箱內(nèi)。3 d 傳代或更換培養(yǎng)基1 次。

      2.4 免疫熒光 接種細胞株至96 孔板,孵育24 h。將孔板內(nèi)細胞按固定(4%多聚甲醛,室溫20 min)、打孔(0.5%Triton X-100,37 ℃20 min)、封閉(山羊血清封閉液,37 ℃30 min)、Ⅰ抗孵育(1∶50,4 ℃過夜)、熒光Ⅱ抗孵育(1∶50,37 ℃1 h)的順序處理。設立PBS 代替Ⅰ抗的陰性對照。熒光顯微鏡觀察結果。

      2.5 Western 免疫印跡 收集細胞,免疫印跡法按參考文獻[5]記錄的方法進行,實驗重復3 次,Quantity One 軟件分析結果。

      2.6 噻唑藍比色法 細胞于對數(shù)生長期接種至96孔板,1 ×104cells/well,250 μL 培養(yǎng)基/well。5-氮雜-2'-脫氧胞苷終濃度5 μmol/L、50 μmol/L 和500 μmol/L 處理上述細胞。于1、2、3、4、5 d 加MTT(5 g/L,20 μL/well),4 h 后棄培養(yǎng)基加二甲亞砜(150 μL/well),酶標儀490 nm 波長測A 值。設立陰性對照(不加藥)及空白對照(無細胞)組,實驗設復孔5 個。細胞增殖率= (A目的- A空白)/(A對照-A空白)。

      2.7 流式細胞儀檢測 細胞平均接種至2 個培養(yǎng)瓶,培養(yǎng)24 h。5-氮雜-2'-脫氧胞苷終濃度50 μmol/L處理其中之一,繼續(xù)培養(yǎng)96 h。收集2 瓶細胞,PBS 洗滌2 次,分別加入1 mL 70%乙醇中4 ℃固定過夜。第2 d 送流式細胞儀檢測細胞周期與凋亡率。實驗重復3 次。

      3 統(tǒng)計學處理

      采用SPSS 17.0 統(tǒng)計軟件處理。計數(shù)資料用卡方檢驗、Fisher 精確概率檢驗或符號秩檢驗分析。計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,用單因素方差分析比較均數(shù)。以P <0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。

      結 果

      1 DNMT 在人胎盤組織表達

      根據(jù)部分DNMT 抗體說明,取胎盤組織為DNMT 陽性對照標本。5 種DNMT 均在人胎盤組織表達,以DNMT2 顯著,見圖1,提示抗體與免疫組化步驟無誤。

      Figure 1. Expression of DNMT2 in human placenta tissue(×400).圖1 DNMT2 在人胎盤組織的表達

      2 胃癌與癌旁組織中DNMT 的表達

      Figure 2. Expression of DNMT in gastric cancer and corresponding non-cancerous tissues(×400).圖2 DNMT 在人胃癌及癌旁組織的表達

      免疫組化法檢測胃癌及癌旁組織DNMT 表達的結果見圖2、3。癌旁組織DNMT1 表達率63. 3%(38/60),DNMT2 表達率93.3%(56/60),DNMT3A表達率71.7%(43/60),DNMT3B表達率93.3%(56/60),DNMT3L 表達率75.0%(45/60)。胃癌組織DNMT1 表達率11. 7% (7/60),DNMT2 表達率43.3%(26/60),DNMT3A 表達率15.0%(9/60),DNMT3B 表達率85.0%(51/60),DNMT3L表達率36.7%(22/60)??梢姵鼶NMT3B 外,其余DNMT 在胃癌的表達率不如癌旁組織(P <0. 05)。此外,DNMT1 和DNMT3L 為胞核胞漿共表達,DNMT2 為胞核表達,而DNMT3A 和DNMT3B 為胞漿表達。

      3 DNMT 在胃癌與癌旁組織的配對比較

      胃癌與自身癌旁組織配對,60 對組織的DNMT表達差異見圖4。其中癌旁組織表達低于胃癌組織記為“-”(如癌旁為陽性,癌為強陽性);癌旁組織表達高于胃癌組織記為“+”(如癌旁為陽性,癌為弱陽性);兩者表達無差異記為“0”(如兩者均為陽性)。運用符號秩檢驗分析5 種DNMT 在胃癌及癌旁組織的差異,發(fā)現(xiàn)DNMT1 和DNMT3A 在胃癌表達顯著低于癌旁組織(P <0.01);DNMT2 和DNMT3L 在胃癌表達低于癌旁組織(P <0.05);DNMT3B 在胃癌及癌旁中表達無顯著差異(P >0.05)。與結果2 相符合。

      4 DNMT 與胃癌臨床特征的關聯(lián)

      卡方檢驗及Fisher 精確概率檢驗分析DNMT 與胃癌臨床特征的關聯(lián),結果見表1。DNMT2 表達與胃癌分化及臨床分期相關(P <0.05);DNMT3A 表達與胃癌臨床分期相關(P <0.05)。而其余DNMT 與性別、年齡、腫瘤大小、幽門螺旋桿菌感染等臨床特征無顯著關聯(lián)(P≥0.05)。

      5 胃癌與胃上皮細胞株中DNMT 的定位

      免疫熒光法研究DNMT 在胃癌與胃上皮細胞中的定位發(fā)現(xiàn),DNMT2 在胞核表達顯著,見圖5A;DNMT3B 和DNMT3L 在胞漿表達,見圖5B;而DNMT1與DNMT3A 特異綠色熒光甚弱。

      6 胃癌與胃上皮細胞株中DNMT 的差異

      免疫印記法研究DNMT 在胃癌與胃上皮細胞中表達差異,結果見圖6、7。DNMT3B 在GES-1 細胞中表達較MKN-45 和SGC-7901 細胞增強(P <0.05);DNMT2 和DNMT3L 在各細胞表達無顯著差異(P >0.05);而DNMT1 和DNMT3A 在各細胞幾無表達。

      Figure 3. The positive expression of DNMT in 60 pairs of gastric cancer and corresponding non-cancerous tissues. * P <0.05,**P <0.01 vs non-cancerous tissue.圖3 DNMT 在60 對人胃癌及癌旁組織的陽性表達

      Figure 4. Differential expression of DNMT between gastric cancer and corresponding non-cancerous tissues.-:expression of DNMT in non-cancerous tissue was lower than that in gastric cancer tissue. +:expression of DNMT in non-cancerous tissue was higher than that in gastric cancer tissue. 0:expression of DNMT in non-cancerous tissue was similar to that in cancer tissue. DNMT1 and DNMT3A expression in cancer tissues was lower than that in non-cancerous tissues (**P <0.01,sign rank test). DNMT2 and DNMT3L expression in cancer tissues was lower than that in non-cancerous tissues (* P <0.05,sign rank test). The differential expression of DNMT3B between cancer and non-cancer was not significant .圖4 胃癌及配對癌旁組織的DNMT 差異

      表1 不同胃癌臨床特征中DNMT 的表達差異Table 1. Differential expression of DNMT in different clinicopathologic features of gastric cancer[n(%)]

      Figure 5. Fluorescence microscopy image of DNMT expression in cell lines(×100). A:DNMT2 was located in nucleus(SGC-7901);B:DNMT3B was located in cytoplasm(MKN-45).圖5 DNMT 表達定位

      Figure 6. Protein expression of some DNMT in cell lines detected by Western blotting.圖6 部分DNMT 蛋白在胃癌細胞與胃黏膜上皮細胞表達

      7 5-氮雜-2'-脫氧胞苷對胃癌與胃上皮細胞增殖的影響

      噻唑藍比色法分析5-氮雜-2'-脫氧胞苷不同濃度及作用時間對SGC-7901、MKN-45 和GES-1 細胞增殖的影響,結果見圖8。5-氮雜-2'-脫氧胞苷對各細胞株增殖率無顯著影響(P >0.05)。

      8 5-氮雜-2'-脫氧胞苷對胃癌細胞與胃黏膜上皮細胞周期分布與凋亡的影響

      流式細胞術分析5-氮雜-2'-脫氧胞苷對胃癌細胞與胃黏膜上皮細胞周期分布和凋亡率的影響,結果見圖9、10。5-氮雜-2'-脫氧胞苷對各細胞株周期分布與凋亡無顯著影響(P >0.05)。

      討 論

      DNA 甲基化是表觀遺傳學在腫瘤領域的研究熱點[6]。異常DNA 甲基化可致腫瘤基因轉錄異常,并被看作腫瘤發(fā)展表觀遺傳機制之一[7]。因腫瘤具有整體基因組低甲基化及抑癌基因高甲基化的特點[8],且DNMT 是催化DNA 甲基化修飾的生物酶,故普遍認為DNMT 在腫瘤中異常表達[9]。DNMT 可分DNMT1、DNMT2、DNMT3A、DNMT3B 和DNMT3L 5 種[10-11]。

      一般理論是,各種DNMT 在腫瘤高表達,通過高甲基化抑癌基因并抑制其轉錄而促進腫瘤發(fā)展[12-13]。但腫瘤基因組也有整體甲基化率降低的特點[14]。例如正常細胞基因組CpG 島甲基化率高達80%,而癌細胞中則降低20%至60%[15],此現(xiàn)象不能被DNMT 高表達所解釋。且不少研究證實癌基因低甲基化并激活亦是腫瘤重要表觀遺傳特點[4,14,16],這讓我們疑惑“抑癌基因高甲基化失活”與“癌基因低甲基化激活”誰在腫瘤中起主導作用?加上新近資料[3]發(fā)現(xiàn)DNMT3A 在腫瘤中表達降低,并與腫瘤增殖、侵襲和轉移負相關(起抑癌基因作用)!又讓我們深思DNMT 低表達與癌基因低甲基化并激活的聯(lián)系,及此聯(lián)系與腫瘤的關系??傊延胁簧儋Y料向腫瘤中DNMT 絕對高表達的理論提出挑戰(zhàn)。

      Figure 7. Differential expression of some DNMT in different cell lines. DNMT3B expression was higher in GES-1 cells than in MKN-45 and SGC-7901 cells. ±s.n=3. **P <0.05 vs SGC-7901 and MKN-45.圖7 DNMT 在胃癌與胃上皮細胞的表達差異

      Figure 8. The growth rates of different cell lines with 5-aza-2'-deoxycytidine treatment (MTT assay). A:SGC-7901 cells;B:MKN-45 cells;C:GES-1 cells. ±s.n=5.圖8 細胞株經(jīng)5-氮雜-2'-脫氧胞苷處理后的增殖率

      Figure 9. The cell cycle distribution of cell lines with 5-aza-2'- deoxycytidine treatment(flow cytometry analysis).C:control;T:treated with 5-aza-2'-deoxycytidine.±s.n=3.圖9 細胞株經(jīng)5-氮雜-2'-脫氧胞苷處理后的周期分布

      Figure 10. The apoptotic rates of cell lines with 5-aza-2'-deoxycytidine treatment(flow cytometry analysis). ±s.n=3.圖10 細胞株經(jīng)5-氮雜-2'-脫氧胞苷處理后的凋亡率

      本研究結果提示,“DNMT 高表達導致抑癌基因高甲基化并失活”可能并非胃癌發(fā)展的關鍵機制,至少胃癌中抑癌基因的高甲基化并非由DNMT 高表達所致。此外,抑制DNMT 可能對胃癌與胃上皮細胞增殖、周期分布、凋亡的影響也十分有限。至少在短期內(nèi)(5 d),抑制DNMT 不對胃癌增殖、凋亡起決定性作用。故本文不支持腫瘤DNMT 絕對高表達并促癌發(fā)展的觀點。那么胃癌是否存在DNMT 低表達與癌基因低甲基化并激活的聯(lián)系?以及此聯(lián)系是否與胃癌發(fā)展相關?還有構建DNMT 過表達載體轉染胃癌細胞是否對其增殖、凋亡有影響?目前尚不能確定,亟待進一步實驗證實。

      腫瘤表觀遺傳研究屬新興科研領域,未知性與不確定性強;近年此領域雖已獲不少進展,但可用于腫瘤臨床診治的仍稀少,故需更多學者前赴后繼的探索與付出。

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