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    液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定蜂蜜中9種青霉素

    2012-12-09 07:04:20李學(xué)民母健王蕾曹彥忠張進(jìn)杰
    關(guān)鍵詞:磷酸二氫鈉氨芐萃取柱

    李學(xué)民,母健,王蕾,曹彥忠,張進(jìn)杰

    (秦皇島出入境檢驗(yàn)檢疫局,河北 秦皇島 066004)

    液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法測定蜂蜜中9種青霉素

    李學(xué)民,母健,王蕾,曹彥忠,張進(jìn)杰

    (秦皇島出入境檢驗(yàn)檢疫局,河北 秦皇島 066004)

    建立了用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜(LC-MS-MS)測定蜂蜜中9種青霉素殘留量的分析方法.3g蜂蜜樣品用25mL pH=8.5的0.15mol/L磷酸二氫鈉緩沖溶液溶解,用Oasis HLB固相萃取柱凈化,目標(biāo)物用乙腈-水(體積比1∶1)洗脫,定容收集液至3mL.采用電噴霧電離,正離子掃描,多反應(yīng)監(jiān)測(MRM)模式檢測.0.5,1.0,2.0,5.0μg/kg 4個(gè)添加水平的回收率為76.9%~104.3%;相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.29%~9.12%;方法定量限是:青霉素 G、乙氧萘青霉素為0.5μg/kg,氧哌嗪青霉素、青霉素V、苯唑青霉素為1.0μg/kg,羥氨芐青霉素、氨芐青霉素、鄰氯青霉素、雙氯青霉素為2.0μg/kg.

    液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜;蜂蜜;9種青霉素

    青霉素類抗生素是β-內(nèi)酰胺類藥物的重要代表之一,用于治療革蘭氏陽性菌引起的各種感染.養(yǎng)蜂業(yè)常用它治療蜜蜂感染幼蟲腐臭?。?].用藥方式通常是將抗生素添加到糖水或蜜汁里飼喂蜜蜂,從而達(dá)到治療或預(yù)防蜂病的目的.這就可能使藥物混入蜂蜜中而導(dǎo)致抗生素殘留.據(jù)文獻(xiàn)報(bào)道[2],青霉素最主要的不良反應(yīng),可產(chǎn)生各種過敏反應(yīng),嚴(yán)重的出現(xiàn)過敏性休克,同時(shí)還能產(chǎn)生耐藥性,對(duì)人體健康造成危害.因此,世界各國對(duì)動(dòng)物源食品中青霉素殘留量均提出了限量要求[8、15],如美國規(guī)定牛組織中青霉素最高殘留限量(MRL)為10~50μg/kg,歐盟規(guī)定牛奶中青霉素最高殘留限量(MRL)為4~30μg/kg.

    測定牛奶、動(dòng)物組織和體液中青霉素殘留量的檢測技術(shù),在美國和歐盟等國家采用了多種方法,已見報(bào)道的分析方法有:微生物法[3],該方法只能測定青霉素的總量;酶聯(lián)免疫法[4],主要作為青霉素殘留量檢測的篩選方法;薄層色譜法[5],所需設(shè)備簡單,應(yīng)用范圍小,檢測周期長;極譜法[6],該方法適用性不強(qiáng);氣相色譜法[7],該方法需經(jīng)過提取、甲基化、凈化、衍生化等步驟,在德國曾經(jīng)作為臨時(shí)性官方方法;高效液相色譜法[8-10],分別采用柱前衍生和柱后衍生,使用的檢測器有紫外檢測器、熒光檢測器和電化學(xué)檢測器;液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法[11-20],這類方法樣品前處理大多數(shù)采用固相萃取技術(shù),對(duì)青霉素類既可定性又可定量,方法檢出限較低(0.4~5μg/kg).

    在實(shí)驗(yàn)中主要參考了文獻(xiàn)[8,10,14,17,18],重點(diǎn)研究了9種青霉素從蜂蜜中提取和凈化效果.確定了用磷酸二氫鈉緩沖溶液提取,通過固相萃取柱凈化,用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定.該方法操作簡單,結(jié)果準(zhǔn)確,是一種既能定性又能定量的檢測方法,完全滿足對(duì)9種青霉素殘留限量的要求.

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 試劑與材料

    甲醇(色譜純);乙腈(色譜純);乙酸(優(yōu)級(jí)純);羥氨芐青霉素(CAS26787-78-0)、氨芐青霉素(CAS69-53-4)、氧哌嗪青霉素(CAS59703-84-3)、青霉素 G(CAS69-57-8)、青霉素 V(CAS132-98-9)、乙氧萘青霉素(CAS7177-50-6)、苯唑青霉素(CAS7240-38-2)、鄰氯青霉素(CAS642-78-4)、雙氯青霉素(CAS13412-64-1)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(Sigma公司);9種青霉素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液:準(zhǔn)確稱取適量的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),分別用水配制成濃度為1.0mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液.儲(chǔ)備液儲(chǔ)存在-25℃冰柜中;9種青霉素標(biāo)準(zhǔn)工作溶液:根據(jù)需要吸取適量標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備溶液,用空白樣品提取液稀釋成適當(dāng)濃度的基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)工作溶液;磷酸二氫鈉(優(yōu)級(jí)純,無水);氫氧化鈉(優(yōu)級(jí)純);磷酸鹽緩沖溶液(0.15mol/L,pH=8.5:稱取18g磷酸二氫鈉溶于1 000mL水中,用5mol/L氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH=8.5);固相萃取柱(Oasis HLB,C18 500mg:使用前分別用5mL甲醇、10mL水和5mL磷酸鹽緩沖溶液預(yù)處理,保持柱體濕潤).

    1.2 儀器與設(shè)備

    液相色譜-串聯(lián)四極桿質(zhì)譜儀配有電噴霧離子源(API 3000,美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司);液相色譜儀(Angilent 1100);液體混勻器;玻璃固相萃取裝置;真空泵;pH計(jì),測量精度±0.02(瑞士Precisa pH900型).

    1.3 測定條件

    液相色譜條件 色譜柱:SunFireTMC 18 3.5μm ,150mm×2.1mm;流速200μL/min;柱溫:30℃;進(jìn)樣量:20μL;流動(dòng)相:乙腈(A)和0.3%乙酸水溶液(B),梯度洗脫程序?yàn)轶w積分?jǐn)?shù)5%A保持3min,然后在10min內(nèi)將A體積分?jǐn)?shù)增加至50%,隨后在5min內(nèi)增加至75%,最后在7min內(nèi)降低A至5%.

    質(zhì)譜條件 離子源:電噴霧離子源(ESI);掃描方式:正離子掃描;檢測方式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM);噴霧電壓(IS):5 500V;霧化氣(NEB):0.055MPa;氣簾氣(CUR):0.079MPa;輔助氣(AUIX):6L/min;離子源溫度400℃.

    定性離子對(duì)、定量離子對(duì)和去簇電壓(DP)、聚焦電壓(FP)、碰撞能量(CE)及碰撞室出口電壓(CXP)見表1.

    1.4 操作步驟

    稱取3g試樣(精確到0.01g)置于150mL三角瓶中,加入25mL磷酸鹽緩沖溶液,于液體混勻器上混合1min,使試樣完全溶解,用5mol/L氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)樣液,使樣液pH=8.5.樣液移至下接已預(yù)處理的固相萃取柱的儲(chǔ)液器中,在玻璃固相萃取器上(陜西奧聯(lián)科技發(fā)展有限公司),以小于或等于3mL/min的流速通過固相萃取柱后,用2mL水洗柱,棄去全部流出液.用3mL乙腈-水(體積比1∶1)洗脫,收集洗脫液于刻度樣品管中,用乙腈-水(體積比1∶1)定容至3mL,搖勻、過濾膜后,供液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定.

    表1 9種青霉素的定性離子對(duì)、定量離子對(duì)、去簇電壓、聚焦電壓、碰撞能量和碰撞室出口電壓Tab.1 Some parameters of multiple reaction monitoring detection for 9penicillins

    2 結(jié)果與討論

    2.1 固相萃取柱的選擇

    在本方法的研究中,筆者用Oasis HLB,ENVI-18,Octadecyl C18,LiChrolut EN和Sep-Pak C18共5種固相萃取柱對(duì)9種青霉素的提取和凈化效果進(jìn)行了對(duì)比研究.實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),Sep-Pak C18固相萃取柱回收率低(只有50%~60%),且凈化效果也不理想,這是該固相萃取柱填料中含碳量小于14%所致.而ENVI-18、Li-Chrolut EN和Octadecyl C18 3種固相萃取柱對(duì)羥氨芐青霉素和氨芐青霉素的回收率低,還存在著不同批次之間回收率的顯著差異.使用Oasis HLB固相萃取柱對(duì)蜂蜜中9種青霉素的回收率進(jìn)行測定,9種青霉素回收率及重現(xiàn)性均適用蜂蜜樣品.因此,本方法選擇Oasis HLB固相萃取柱凈化樣品.

    2.2 提取溶液的選擇

    分別用去離子水、質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%氯化鈉溶液和磷酸二氫鈉緩沖溶液(0.15mol/L,pH=8.5)做為提取液,進(jìn)行蜂蜜樣品中9種青霉素回收率實(shí)驗(yàn).實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),當(dāng)用去離子水和質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4% 氯化鈉溶液作為提取液時(shí),羥氨芐青霉素和氨芐青霉素的回收率均小于30%,其他7種青霉素在81.5%~102.0%.在使用磷酸二氫鈉緩沖溶液提取液時(shí),9種青霉素回收率都超過65%.故選擇磷酸二氫鈉緩沖液做提取液.

    由于磷酸二氫鈉緩沖溶液濃度和pH值對(duì)羥氨芐青霉素和氨芐青霉素的回收率影響較大,對(duì)此分別進(jìn)行實(shí)驗(yàn).分別配制0.033~0.2mol/L不同濃度的磷酸二氫鈉緩沖溶液和0.15mol/L pH值分別為4.2~9.5磷酸二氫鈉緩沖溶液,進(jìn)行羥氨芐青霉素和氨芐青霉素的回收率實(shí)驗(yàn),結(jié)果見表2.

    表2 磷酸二氫鈉緩沖溶液不同濃度和pH值對(duì)羥氨芐青霉素和氨芐青霉素回收率的影響Tab.2 Effects of buffer concentration and pH on the recoveries of hydroxyl ampicillin and amoxicillin penicillin

    實(shí)驗(yàn)表明,磷酸二氫鈉濃度在0.033~0.1mol/L時(shí),羥氨芐青霉素回收率重現(xiàn)性不好,磷酸二氫鈉濃度超過0.17mol/L時(shí),峰形變寬,容易導(dǎo)致樣液過柱慢.氨芐青霉素在磷酸二氫鈉濃度超過0.05mol/L時(shí)其回收率已經(jīng)滿足工作需要,因此,確定0.15mol/L的磷酸二氫鈉緩沖溶液作為提取液.磷酸二氫鈉緩沖溶液pH值對(duì)羥氨芐青霉素回收率的影響大于氨芐青霉素,當(dāng)磷酸二氫鈉緩沖溶液pH值為8.0~9.0時(shí),羥氨芐青霉素和氨芐青霉素均獲得滿意的回收率.當(dāng)磷酸二氫鈉緩沖溶液pH值超過9.5時(shí),氧哌嗪青霉素的回收率逐漸降低.因此,確定磷酸二氫鈉緩沖溶液pH值是8.5.

    2.3 固相萃取柱洗脫條件的選擇

    本方法比較了1,2,3,4mL乙腈-水(體積比1∶1)作為固相萃取柱的洗脫劑對(duì)9種青霉素回收率產(chǎn)生的影響,結(jié)果見圖1.實(shí)驗(yàn)表明,當(dāng)洗脫劑用量小于3mL時(shí),羥氨芐青霉素、氨芐青霉素和青霉素V的回收率偏低,其他6種青霉素的回收率為80.8%~94.7%.當(dāng)洗脫劑用量為3mL時(shí),9種青霉素回收率為95.6%~102.4%.當(dāng)洗脫劑用量為4mL時(shí),9種青霉素回收率沒有明顯改善.因此,本方法選用3mL乙腈-水(體積比1∶1)作為固相萃取柱的洗脫劑.

    圖1 固相萃取柱洗脫劑用量對(duì)回收率的影響Fig.1 Effects of eluant volume of SPE on the recoveries of 9penicillins.

    2.4 測定條件的選擇

    a)液相色譜條件的選擇

    分別對(duì)μBondapak C18 300mm×4.0mm色譜柱和SunFireTM 3.5μm C18 150mm×2.1mm色譜柱進(jìn)行了比較.實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),這2種色譜柱的靈敏度均能滿足要求,但μBondapak C18色譜柱對(duì)鄰氯青霉素和乙氧萘青霉素分離度不如SunFireTM 3.5μm C18色譜柱好,μBondapak C18柱流速在1.5mL/min,進(jìn)質(zhì)譜儀之前需要分流,而分流時(shí)對(duì)青霉素結(jié)果的測定產(chǎn)生一定誤差,而使用SunFireTM 3.5μm C18柱不需分流,定量準(zhǔn)確度優(yōu)于μBondapak C18柱,通過以上對(duì)2種色譜柱的比較,本方法選用SunFireTM 3.5μm C18為9種青霉素的分析柱.

    b)質(zhì)譜條件的選擇

    采用注射泵直接進(jìn)樣方式,以5μL/min分別將羥氨芐青霉素、氨芐青霉素、氧哌嗪青霉素、青霉素G、青霉素V、苯唑青霉素、鄰氯青霉素、乙氧萘青霉素、雙氯青霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液注入離子源,用正離子檢測方式對(duì)9種青霉素進(jìn)行一級(jí)質(zhì)譜分析(Q1掃描),得到質(zhì)子化分子離子峰分別為366,350,518,335,351,402,436,415和470.

    再對(duì)分子離子進(jìn)行二級(jí)質(zhì)譜分析(子離子掃描),得到碎片離子信息.然后對(duì)去簇電壓(DP),碰撞氣能量(CE),電噴霧電壓、霧化氣和氣簾氣壓力進(jìn)行優(yōu)化,使分子離子與特征碎片離子對(duì)強(qiáng)度達(dá)到最佳.然后將質(zhì)譜儀與液相色譜聯(lián)機(jī),再對(duì)離子源溫度,輔助氣流速進(jìn)行優(yōu)化,使樣液中9種青霉素離子化效率達(dá)到最佳.

    2.5 線性范圍和方法檢出限

    配制含羥氨芐青霉素、氨芐青霉素、氧哌嗪青霉素、青霉素G、青霉素V、苯唑青霉素、乙氧萘青霉素質(zhì)量濃度分別為1.0,5.0,10,50,100,200ng/mL;鄰氯青霉素、雙氯青霉素質(zhì)量濃度分別為2.0,10,20,100,200,400ng/mL的蜂蜜基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,在選定的條件下進(jìn)行測定,進(jìn)樣量為20μL,用峰面積對(duì)標(biāo)準(zhǔn)溶液中各被測組分的濃度做圖,羥氨芐青霉素、氨芐青霉素、氧哌嗪青霉素、青霉素G、青霉素V、苯唑青霉素、乙氧萘青霉素的絕對(duì)量分別為0.02~4ng;鄰氯青霉素、雙氯青霉素的絕對(duì)量分別在0.04~8ng內(nèi)均呈線性關(guān)系,符合定量要求,其線性方程和校正因子見表3.

    表3 9種青霉素線性方程和相關(guān)系數(shù)Tab.3 Linearity of 9penicillins in a analyte-free honey.

    在該方法操作條件下,9種青霉素在添加水平0.5~20μg/kg時(shí),各自的測定響應(yīng)值在儀器線性范圍之內(nèi).同時(shí),樣品中青霉素G、乙氧萘青霉素的添加量為0.5μg/kg;氧哌嗪青霉素、青霉素V、苯唑青霉素的添加量為1.0μg/kg;羥氨芐青霉素、氨芐青霉素、鄰氯青霉素、雙氯青霉素的添加量為2.0μg/kg時(shí),所測譜圖的信噪比遠(yuǎn)大于10.因此,確定本方法的定量限,青霉素G、乙氧萘青霉素為0.5μg/kg;氧哌嗪青霉素、青霉素V、苯唑青霉素為1.0μg/kg;羥氨芐青霉素、氨芐青霉素、鄰氯青霉素、雙氯青霉素為2.0μg/kg.

    2.6 方法的回收率和精密度

    用不含青霉素的蜂蜜樣品進(jìn)行添加回收率和精密度實(shí)驗(yàn),樣品中添加0.5,1.0,2.0,5.0μg/kg 4個(gè)不同濃度標(biāo)準(zhǔn)后,搖勻,然后按本方法進(jìn)行提取和凈化,用高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測定,其回收率和精密度見表4.從表中回收率及精密度數(shù)據(jù)可以看出,本方法回收率為76.9%~104.3%,4個(gè)添加水平的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為3.29%~9.12%.

    表4 9種青霉素添加回收率及精密度(n=6)Tab.4 Spiked recoveries and precisions of 9 penicillins in a blank honey(n=6)

    2.7 方法的適用性

    筆者采用本方法對(duì)葵花蜜、棉花蜜、油菜蜜和梧桐蜜等10個(gè)不同蜜種,在4個(gè)添加水平檢查方法的適用性,9種青霉素的回收率為65.5%~105.7%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為5.79%~9.90%,說明方法的適用性很好.

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    Determination of 9 penicillins in honey by high-performance liquid chromatography-tandem mass spectrometry

    LI Xuemin,MU Jian,WANG Lei,CAO Yanzhong,ZHANG Jinjie
    (Qinhuangdao Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau,Qinhuangdao 066004,China)

    A method was described for the determination of 9penicillins in honey by LC-MS-MS.3.0g honey samples were dissolved in 25mL sodium dihydrogen phosphate buffer solution(pH=8.5),and then cleaned up with Oasis HLB SPE cartridge.The target compounds were eluted with acetonitrile-water(1∶1),and the elution was determined to a volume of 3mL.MS detection was performed in the positive ion mode using multiple reaction monitoring(MRM).Limit of quantification(LOQ)for the method of 9penicillins was between 0.5 2.0μg/kg.Average recoveries at four fortification levels(0.5,1.0,2.0,5.0μg/kg)in honeywere 76.9%104.3%,relative standard deviation were 3.29%9.12%.

    LC-MS-MS;honey;9penicillins

    O177.91

    A

    1000-1565(2012)05-0492-07

    2012-01-20

    國家標(biāo)準(zhǔn)研制資助項(xiàng)目(20040032-T-442)

    李學(xué)民(1964-),男,河北盧龍人,秦皇島出入境檢驗(yàn)檢疫局高級(jí)工程師,主要從事農(nóng)獸藥殘留分析研究.

    E-mail:ciqlixm@163.com

    梁俊紅)

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