可 曉,陳雙林,張小平,郭子武
(1.中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院 亞熱帶林業(yè)研究所,浙江 富陽,311400;2.四川農(nóng)業(yè)大學(xué) 資源與環(huán)境學(xué)院,四川 雅安 625014)
雷竹Phyllostachys violascens林地有機(jī)材料(主要為礱糠、稻草、鋸木屑等)覆蓋竹筍早出技術(shù)的推廣應(yīng)用始于20世紀(jì)90年代初,滿足了市場(chǎng)供應(yīng)淡季對(duì)鮮筍的大量需求,顯著地提高了筍用竹林的經(jīng)濟(jì)效益[1]。然而,長(zhǎng)期連年覆蓋會(huì)導(dǎo)致雷竹林地土壤理化性質(zhì)劣變,竹林地上和地下部分結(jié)構(gòu)失衡[2-6],致使雷竹林大面積衰敗,如雷竹筍用竹主產(chǎn)區(qū)浙江省臨安市太湖源鎮(zhèn)超過1萬hm2雷竹林中重度、中度、輕度退化竹林所占比例分別達(dá)13.34%,26.66%和46.67%,未退化竹林僅占13.33%,重度退化竹林幾乎無經(jīng)濟(jì)產(chǎn)出[7]。而存留于雷竹林土壤中短期內(nèi)難以自然腐解且高碳氮比 (C/N),富含纖維素和木質(zhì)素的有機(jī)覆蓋物,是導(dǎo)致林地土壤發(fā)生物理、化學(xué)和生物性劣變重要原因之一。因此,從維護(hù)林地覆蓋筍用竹林高效可持續(xù)經(jīng)營(yíng)目標(biāo)出發(fā),必須采取高效、無二次污染的林地存留有機(jī)覆蓋物促腐措施。目前,具有生物質(zhì)材料降解活性的微生物已廣泛應(yīng)用于高碳氮比材料的工業(yè)發(fā)酵(替代能源的生產(chǎn))[8]、飼料生產(chǎn)[9]和秸稈還田土壤培肥[10]等方面,而對(duì)于筍用竹林存留有機(jī)覆蓋物降解微生物篩選、降解活性及產(chǎn)酶條件的相關(guān)研究尚未見有報(bào)道。本研究從長(zhǎng)期堆放有機(jī)覆蓋物場(chǎng)所的不同腐解程度的稻草、礱糠及覆蓋雷竹林土壤中篩選培養(yǎng)具有高纖維素降解酶活性的微生物,并對(duì)其產(chǎn)酶條件進(jìn)行優(yōu)化,旨在為筍用竹林林地存留有機(jī)覆蓋物高效促腐制劑的研制提供前期理論基礎(chǔ)。
供試材料采自浙江省臨安市太湖源鎮(zhèn)(30°24′N,119°32′E)雷竹林林地覆蓋的不同腐解程度的礱糠、稻草及覆蓋雷竹林土壤。礱糠、稻草采用多點(diǎn)取樣法,取混合樣品200.00 g,土壤采用五點(diǎn)取樣法,取0~10 cm土壤混合樣品500.00 g。樣品采集后放入無菌袋內(nèi),置于冰壺中帶回實(shí)驗(yàn)室4℃保存。
對(duì)照菌株哈茨木霉(HC)Trichoderma harzianum,綠色木霉(LS)Trichoderma viride購(gòu)自廣東省微生物研究所菌種保藏中心。
富集培養(yǎng)基(赫奇遜濾紙液體培養(yǎng)基):1 cm×6 cm新華定量濾紙、磷酸二氫鉀(KH2PO4)1.00 g,氯化鈉(NaCl) 0.10 g,硫酸錳(MgSO4°7H2O) 0.30 g,硝酸鈉(NaNO3) 2.50 g,氯化鐵(FeCl3) 0.01 g,氯化鈣(CaCl2) 0.10 g。水 1 000 mL,pH 7.2[11]。
初篩培養(yǎng)基(剛果紅羧甲基纖維素平板培養(yǎng)基):羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)2.00 g,剛果紅0.40 g,硫酸銨[(NH4)2SO4]2.00 g,硫酸錳(MgSO4°7H2O) 0.50 g,磷酸二氫鉀(KH2PO4) 1.00 g,氯化鈉(NaCl)0.50 g,瓊脂20.00 g。水1 000 mL,自然pH值(不進(jìn)行人為的調(diào)節(jié))[12]。
復(fù)篩培養(yǎng)基(赫奇遜秸稈液體培養(yǎng)基):用稻草取代富集培養(yǎng)基中的濾紙。
分別取腐爛的礱糠、稻草及雷竹林土壤樣品各10.00 g,加入裝有90.0 mL無菌水和玻璃珠的150.0 mL三角瓶中,180 r°min-1振蕩30 min使樣品充分分散,取懸濁液5.0 mL接種于45.0 mL富集培養(yǎng)基中,28℃下120 r°min-1振蕩培養(yǎng)2 d。再取培養(yǎng)液接種到新鮮無菌富集培養(yǎng)基中,反復(fù)培養(yǎng)3次。
取第3次富集培養(yǎng)液100 μL均勻涂布在剛果紅羧甲基纖維素平板培養(yǎng)基上,28℃下培養(yǎng),挑取水解圈出現(xiàn)時(shí)間早,水解圈直徑與菌落直徑之比大的菌株進(jìn)行純化并保存。將初篩獲得的菌株分別在馬鈴薯葡萄糖瓊脂(PDA)(真菌)、高氏一號(hào)(放線菌)培養(yǎng)基上活化,用直徑1 cm打孔器在菌落生長(zhǎng)均勻處取菌塊接種于復(fù)篩培養(yǎng)基中,28℃下120 r°min-1振蕩培養(yǎng)5 d,測(cè)定發(fā)酵液中濾紙酶活力,篩選具有高纖維素酶活性的菌株。
濾紙酶活力測(cè)定采用 3,5-二硝基水楊酸顯色法[13-16]。發(fā)酵液于 10 kg°min-1離心 10 min,取上清液即為粗酶液。將新華定量濾紙裁剪成1 cm×6 cm的小條,放入25.0 mL刻度試管中,加入1.0 mL檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液(pH 4.8)和稀釋酶液0.5 mL,50℃水浴中反應(yīng)1 h,加入3.0 mL 3,5-二硝基水楊酸(DNS)試劑沸水浴5 min,定容到25.0 mL后測(cè)定540 nm波長(zhǎng)吸光度,計(jì)算還原糖量,同時(shí)測(cè)定發(fā)酵液中的還原糖量,以酶解反應(yīng)液中還原糖量與發(fā)酵液中還原糖量之差計(jì)算酶活力。實(shí)驗(yàn)設(shè)3個(gè)重復(fù)。以1 h 1.0 mL原酶液催化底物(濾紙)轉(zhuǎn)化為1 μmol葡萄糖的酶量為1個(gè)酶活力單位(16.67 nkat)。
1.5.1 單因素實(shí)驗(yàn) 采用赫奇遜液體培養(yǎng)基。選擇不同培養(yǎng)時(shí)間(1,2,3,4,5,6,7 d),pH(3.0,4.0,5.0,6.0,7.0,8.0,9.0,10.0),培養(yǎng)溫度(20,25,30,35,40℃),碳源[淀粉、 葡萄糖、 微晶纖維素粉、稻草秸稈粉、淀粉和微晶纖維素粉(m∶m=1∶1)和葡萄糖和微晶纖維素粉(m∶m=1∶1)],氮源(酵母膏、蛋白胨、牛肉膏、硫酸銨和尿素為氮源)及無機(jī)鹽(氯化鐵為0.01g°L-1,氯化鈣0.10 g°L-1,磷酸二氫鉀 1.00 g°L-1,硫酸錳 0.30 g°L-1和氯化鈉 0.10 g°L-1)進(jìn)行單因素實(shí)驗(yàn),分別確定目標(biāo)菌株的最佳產(chǎn)酶條件。
1.5.2 正交實(shí)驗(yàn) 根據(jù)以上的各單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,對(duì)菌株產(chǎn)酶的最佳碳源、氮源及無機(jī)鹽進(jìn)行正交實(shí)驗(yàn)[L9(34)],確定目標(biāo)菌株最佳培養(yǎng)條件。
經(jīng)過富集培養(yǎng),從常年堆積的不同腐解程度的礱糠、稻草及覆蓋雷竹林土壤中初步篩選獲得38株在剛果紅羧甲基纖維素平板上能夠產(chǎn)生透明水解圈的菌株,再經(jīng)反復(fù)篩選出透明水解圈出現(xiàn)時(shí)間早,水解圈直徑與菌落直徑比值(HC值)較大的菌株7株(表1),其中,真菌4株(分別編號(hào)為1.1,2.1,YQ1和YQ9),放線菌3株(分別編號(hào)為1.2,2.2和3.1)。
表1 菌株培養(yǎng)3 d透明水解圈與菌落直徑比值Table 1 HC values of 9 strains after 3 days cultivation
培養(yǎng)5 d后,從7個(gè)菌株濾紙酶活性分析表明:真菌1.1,2.1,YQ1酶活力極顯著地高于放線菌、真菌YQ9及對(duì)照菌株哈茨木霉(3.93×16.67 nkat)與綠色木霉(4.64×16.67 nkat),且以2.1菌株的濾紙酶活力最高,達(dá)10.80×16.67 nkat(圖1),確定菌株2.1為高效目標(biāo)菌株。
從菌株2.1的菌落培養(yǎng)特征(表2)及顯微結(jié)構(gòu)特征(圖2a)表明,菌株2.1分生孢子梗發(fā)生于基質(zhì),壁平滑,帚狀枝雙輪生,偶有3輪生或單輪生;梗基每輪2~3個(gè),13.0~20.0 μm×3.2~3.7 μm,彼此通常較緊貼;瓶梗幼齡時(shí)呈現(xiàn)瓶狀至披針狀,充分成熟時(shí)近圓柱形,梗頸明顯,分生孢子橢圓形,4.5~5.5 μm×3.0~4.0 μm,壁平滑。依據(jù)2.1菌落形態(tài)(圖2b)及菌株顯微結(jié)構(gòu)特征,查《中國(guó)真菌志》(青霉及其相關(guān)有性型屬)[17]、《真菌的形態(tài)和分類》[18]等相關(guān)資料可確定菌株2.1屬青霉屬Penicillium。
圖1 分離菌株的濾紙酶活力Figure 1 Filter paper activity of 9 strains
圖2 菌株2.1的菌落形態(tài)(a)及顯微結(jié)構(gòu)(b)Figure 2 Colony morphology and microstructure of Strain 2.1
表2 菌株2.1菌落形態(tài)特征Table 2 The colony morphology of strain 2.1
2.3.1 培養(yǎng)時(shí)間 培養(yǎng)初期菌株2.1發(fā)酵液濾紙酶活力隨培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)緩慢升高,第1,2天發(fā)酵液濾紙酶活力分別為2.72×16.67 nkat,3.32×16.67 nkat,增幅僅為22.51%。第3天酶活力迅速提高,4.95×16.67 nkat,較第2天增加了49.01%。第3天以后,酶活力增加趨勢(shì)減緩,至第5天時(shí)發(fā)酵液酶活力達(dá)峰值(5.62×16.67 nkat),其后酶活力雖能維持在較高水平,但較第5天有所下降(圖3a)。說明菌株2.1產(chǎn)酶的最佳培養(yǎng)時(shí)間為5 d。
2.3.2 起始酸堿度(pH值) 菌株2.1發(fā)酵液濾紙酶活力隨起始酸堿度(pH值)的變化呈先升高后降低的趨勢(shì)(圖3b)。起始酸堿度為pH 3.0~5.0時(shí),菌株酶活力緩慢上升,且較為平穩(wěn),當(dāng)起始酸堿度為pH 5.0時(shí),發(fā)酵液濾紙酶活力達(dá)到峰值(4.90×16.67 nkat),其后隨酸堿度(pH值)的升高酶活力緩慢降低,當(dāng)起始酸堿度超過pH 8.0時(shí),酶活力開始迅速下降,至起始酸堿度為pH 10.0時(shí),發(fā)酵液濾紙酶活力僅為2.22×16.67 nkat,為峰值的45.31%。說明菌株2.1培養(yǎng)的最佳起始酸堿度為pH 5.0。
2.3.3 培養(yǎng)溫度 隨著培養(yǎng)溫度的升高,菌株2.1產(chǎn)酶能力呈先升高后降低的變化規(guī)律(圖3c)。在25~30℃區(qū)間內(nèi)酶活力急劇升高,由2.36×16.67 nkat提高到3.67×16.67 nkat,增幅達(dá)55.51%,而后酶活力趨于平穩(wěn),當(dāng)溫度35℃時(shí),酶活力為3.83×16.67 nkat,其后酶活力略有降低,40℃時(shí)酶活力下降為3.68×16.67 nkat。雖然35和40℃時(shí)菌株2.1的酶活力均高于30℃的酶活力,但結(jié)合菌株培養(yǎng)及竹林生產(chǎn)實(shí)踐,確定30℃為菌株2.1的最佳培養(yǎng)溫度。
圖3 培養(yǎng)時(shí)間(a),起始pH值(b)和培養(yǎng)溫度(c)對(duì)菌株2.1濾紙酶活力的影響Figure 3 Effect of time,pH and temperature on FPA of Strain 2.1
2.4.1 碳源 菌株2.1在不同碳源的培養(yǎng)基中均能正常生長(zhǎng),但在不同碳源條件下酶活力存在較大差異(圖4a)。以葡萄糖、淀粉、纖維素為單一碳源時(shí),發(fā)酵液濾紙酶活力分別為1.67×16.67 nkat,1.98×16.67 nkat和1.35×16.67 nkat。當(dāng)用葡萄糖和纖維素(m∶m=1∶1)共同作為碳源時(shí),發(fā)酵液濾紙酶活力達(dá)到3.08×16.67 nkat,分別比葡萄糖或纖維素作單一碳源時(shí)增加了84.43%和128.15%。淀粉與纖維素(m∶m=1∶1)共同作為碳源時(shí),發(fā)酵液濾紙酶活力僅為0.56×16.67 nkat,遠(yuǎn)低于任一單一碳源的處理。在供試碳源中,以稻草秸稈粉做碳源時(shí)發(fā)酵液中濾紙酶活力最高(5.03×16.67 nkat)。
2.4.2 氮源 菌株2.1在多種氮源條件下均能正常生長(zhǎng),在有機(jī)氮源條件下發(fā)酵液濾紙酶活力均遠(yuǎn)高于無機(jī)氮源(圖4b)。其中,牛肉膏為氮源時(shí)菌株發(fā)酵液濾紙酶活力最高(5.95×16.67 nkat),其次是酵母粉(5.19×16.67 nkat),蛋白胨為氮源時(shí)發(fā)酵液酶活(4.59×16.67 nkat)略低于牛肉膏和酵母粉為氮源的處理。以硫酸銨和尿素為氮源時(shí)酶活力較低,分別為3.13×16.67 nkat和3.18×16.67 nkat,僅為牛肉膏為氮源時(shí)的52.60%和53.44%。
圖4 碳源(a),氮源(b)和無機(jī)鹽(c)對(duì)菌株2.1酶活力的影響Figure 4 Effect of C (a),N (b) source and inorganic salt(c) on FPA of Strain 2.1
2.4.3 無機(jī)鹽 菌株2.1發(fā)酵液濾紙酶活力以培養(yǎng)基中添加磷酸二氫鉀(KH2PO4)的最高(5.40×16.67 nkat),其次是添加氯化鐵(FeCl3)的處理(5.19×16.67 nkat)。這2種無機(jī)鹽處理均遠(yuǎn)高于添加氯化鈣(CaCl2),氯化鈉(NaCl)和硫酸錳(MgSO4)的處理(分別為 2.98 × 16.67 nkat,2.13 × 16.67 nkat和 1.26×16.67 nkat,僅為最高酶活力的55.18%,39.44%和22.78%)(圖4c)。說明磷酸二氫鉀與氯化鐵對(duì)菌株2.1的酶活力影響較大。
2.4.4 培養(yǎng)基最佳組合 從表3的菌株2.1培養(yǎng)基碳源(稻草秸稈)、氮源(牛肉膏)及無機(jī)鹽(FeCl3),磷酸二氫鉀添加量正交實(shí)驗(yàn)分析表明,9號(hào)培養(yǎng)基配方的菌株酶活力最高(11.19×16.67 nkat)。稻草秸稈和牛肉膏對(duì)菌株酶活力影響較大,極值分別為5.69和1.00,氯化鐵和磷酸二氫鉀對(duì)菌株酶活力影響較小,極值分別為0.41和0.27。稻草秸稈、牛肉膏、氯化鐵、磷酸二氫鉀均值最大水平分別為A3,B3,C1,D2。經(jīng)方差分析,各因素對(duì)菌株2.1濾紙酶活力影響均達(dá)極顯著水平。表明菌株2.1產(chǎn)酶最適培養(yǎng)基組合為A3B3C1D2,即秸稈 25.00 g°L-1,牛肉膏 2.50 g°L-1,氯化鐵 0.01 g°L-1,磷酸二氫鉀 1.50 g°L-1。
表3 L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及培養(yǎng)基組合菌株2.1酶活力Table 3 Design and results of L9(34) experiment and FPA of Strain 2.1
本研究通過稀釋涂平板法和富集培養(yǎng)法,從雷竹林地覆蓋材料礱糠、稻草及覆蓋雷竹林土壤中初步篩選得到了38個(gè)對(duì)林地有機(jī)覆蓋物具有分解活性的菌株,經(jīng)反復(fù)篩選得7株在剛果紅羧甲基纖維素培養(yǎng)基上水解圈直徑較大,且出現(xiàn)時(shí)間早的菌株(真菌4株,放線菌3株),其中,菌株1.1,2.1,YQ1在僅有羧甲基纖維素為唯一碳源的剛果紅羧甲基纖維素平板上生長(zhǎng)旺盛,濾紙酶活力較高,而且以菌株2.1酶活力最高,遠(yuǎn)高于對(duì)照的綠色木霉和哈茨木霉。由于濾紙是聚合度和結(jié)晶度都居 “中等”的纖維性材料,濾紙酶活綜合反映了纖維素酶系統(tǒng)中3類酶的綜合效果[19]。因此,可以推斷菌株2.1可能具有較全面的酶系,將其定為目標(biāo)菌株。經(jīng)菌落培養(yǎng)特征和顯微結(jié)構(gòu)特征觀察,菌株2.1屬青霉屬。
隨培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),菌株2.1濾紙酶活呈先升高而后降低的趨勢(shì),培養(yǎng)5 d后酶活力最高。菌株2.1在起始酸堿度為pH 3.0~5.0范圍內(nèi)濾紙酶活較高,酸堿度超過pH 5.0后濾紙酶活力開始下降,這與普遍認(rèn)為的酸性條件有利于真菌產(chǎn)纖維素酶的結(jié)論一致[16]。浙江省的筍用竹林土壤大多為紅壤或黃紅壤、黃壤,呈酸性[20],適宜菌株2.1的產(chǎn)酶潛力發(fā)揮。溫度對(duì)微生物生長(zhǎng)發(fā)育有著重要影響,菌株2.1在30℃左右時(shí)產(chǎn)酶活力較高,而浙江省雷竹主栽區(qū)夏季最高氣溫40℃左右,菌株2.1適合浙江省雷竹林生境,能夠應(yīng)用于竹林存留有機(jī)覆蓋物的生物降解。氮、碳及無機(jī)鹽均為降解菌株生長(zhǎng)的必需養(yǎng)分因子,菌株2.1的最佳氮源為牛肉膏,添加量為2.50 g°L-1,最佳碳源為稻草秸稈,添加量為25.00 g°L-1,對(duì)菌株產(chǎn)酶活性有較大影響的無機(jī)鹽為氯化鐵和磷酸二氫鉀,添加量分別為0.01 g°L-1和1.50 g°L-1。
[1]方偉,何鈞潮,盧學(xué)可,等.雷竹早產(chǎn)高效栽培技術(shù)[J].浙江林學(xué)院學(xué)報(bào),1994,11(2):121-128.FANG Wei,HE Junchao,LU Xueke,et al.Cultivation techniques of early shooting and high yielding for Lei bamboo sprout[J].J Zhejiang For Coll,1994,11 (2): 121-128.
[2]余樹全,姜春前,周國(guó)模,等.雷竹林生態(tài)系統(tǒng)健康的研究[J].北京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2003,25(5):15-19.YU Shuquan,JIANG Chunqian,ZHOU Guomo,et al.Study on Phyllostachys praecox forest ecosystem health [J].J Beijing For Univ,2003,25 (5): 15-19.
[3]胡超宗,金愛武,鄭建新.雷竹地下鞭的系統(tǒng)結(jié)構(gòu)[J].浙江林學(xué)院學(xué)報(bào),1994,11(3):264-268.HU Chaozong,JIN Aiwu,ZHENG Jianxin.Composition of Lei bamboo rhizomatic system [J].J Zhejiang For Coll,1994,11 (3): 264-268.
[4]何鈞潮,方偉,盧學(xué)可,等.雷竹雙季豐產(chǎn)高效筍用林的地下結(jié)構(gòu)[J].浙江林學(xué)院學(xué)報(bào),1995,12(3):247-252.HE Junchao,F(xiàn)ANG Wei,LU Xueke,et al.Rhizome structure of Lei bamboo shoot-stand with high yield and good benefit[J].J Zhejiang For Coll,1995,12 (3): 247-252.
[5]金愛武,周國(guó)模,鄭炳松,等.覆蓋保護(hù)地栽培對(duì)雷竹地下鞭的影響[J].竹子研究匯刊,1998,17(4):36-39.JIN Aiwu,ZHOU Guomo,ZHENG Bingsong,et al.An effect of cultivation in mulched and protected Phyllostachys praecox plantations on its rhizome [J].J Bamboo Res,1998,17 (4): 36-39.
[6]張卓文,湯景明,熊艷平,等.雷竹引種后地下鞭生長(zhǎng)規(guī)律研究[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2001,20(1):77-80.ZHANG Zhuowen,TANG Jingming,XIONG Yanping,et al.Studies on the bamboo rhizome growth after introduction of Phyllostachys praecox f.preveynalis [J].J Huazhong Agric Univ,2001,20 (1): 77-80.
[7]劉麗,陳雙林,李艷紅,等.基于林分結(jié)構(gòu)和竹筍產(chǎn)量的有機(jī)材料覆蓋雷竹林退化程度評(píng)價(jià)[J].浙江林學(xué)院學(xué)報(bào),2010,27 (1): 15-21.LIU Li,CHEN Shuanglin,LI Yanhong,et al.Stand structure and bamboo shoot number production based assessment of degradation degree of Phyllostachys praecox covered with organic materials [J].J Zhejiang For Coll,2010,27 (1):15-21.
[8]奚立民,曹樹,柯中爐.木質(zhì)纖維素類生物質(zhì)制備燃料乙醇的微生物研究進(jìn)展[J].化工進(jìn)展,2009,28(11):2003-2008.XI Limin,CAO Shu,KE Zhonglu.Research progress in microorganisms for the conversion of lignocellulosic biomass to fuel ethanol[J].Chem Ind Eng Prog,2009,28 (11): 2003-2008.
[9]刁治民,張雄偉,吳保鋒,等.微生物纖維素酶在飼料工業(yè)中的生產(chǎn)現(xiàn)狀及應(yīng)用[J].青海草業(yè),2006,15(3):15-20.DIAO Zhimin,ZHANG Xiongwei,WU Baofeng,et al.The research on the productive status and applied of microbial cellulose [J].Qinghai Pratac,2006,15 (3): 15-20.
[10]肖春玲,徐常新.微生物纖維素酶的應(yīng)用研究[J].微生物學(xué)雜志,2002,22(2):33-35.XIAO Chunling,XU Changxin.Application study on microbial cellulose [J].J Microbiol,2002,22 (2): 33-35.
[11]湛方棟,何永美,陳建軍,等.3種培養(yǎng)基分離高溫纖維素分解菌及其酶活測(cè)定[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,36(15):6171-6172,6232.ZHAN Fangdong,HE Yongmei,CHEN Jianjun,et al.Study on the isolation of thermophilic cellulolytic bacteria by using 3 kinds of medium and the determination of its enzyme activity [J].J Anhui Agric Sci,2008,36 (15):6171-6172,6232.
[12]張宇昊,王頡,張偉,等.一種改進(jìn)的纖維素分解菌鑒別培養(yǎng)基[J].纖維素科學(xué)與技術(shù),2004,12(1):33-36.ZHANG Yuhao,WANG Jie,ZHANG Wei,et al.An improved differential medium for cellulose decomposing microorganisms [J].J Cellul Sci Technol,2004,12 (1): 33-36.
[14]唐冰,夏秋瑜,李從發(fā),等.NAG含量測(cè)定中常見的3種DNS試劑使用效果比較研究[J].熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,26 (2): 33-35.TANG Bing,XIA Qiuyu,LI Congfa,et al.Comparison of three DNS reagents in determination of N-acetylglucosamine [J].Chin J Trop Agric,2006,26 (2): 33-35.
[15]SHARROCK K R.Cellulase assay methods: a review [J].Biochem Biophys Methods,1988,17 (2): 81-105.
[16]姜心,陳偉,周波,等.纖維素酶活測(cè)定影響因素的研究[J].食品工業(yè)科技,2010,31(5):65-68.JIANG Xin,CHEN Wei,ZHOU Bo,et al.Study on impact factors of determination of cellulase activity [J].Sci Technol Food Ind,2010,31 (5): 65-68.
[17]孔華忠.中國(guó)真菌志:青霉屬及其相關(guān)有性型屬[M].北京:科學(xué)出版社,2007.
[18]戴芳瀾.真菌的形態(tài)和分類[M].北京:科學(xué)出版社,1987.
[19]龐良偉.纖維素分解菌的混合培養(yǎng)及互生特性研究[D].成都:四川大學(xué),2003.PANG Liangwei.The Study of Mixed Culture and the Mutualsitic Characteristics of Cellulolytic Strains [D].Chengdu:Sichuan University,2003.
[20]孫曉,莊舜堯,劉國(guó)群,等.集約經(jīng)營(yíng)下雷竹林土壤酸化的初步研究[J].土壤通報(bào),2010,14(6):1339-1343.SUN Xiao,ZHUANG Shunyao,LIU Guoquan,et al.A preliminary study of soil acidification under Lei bamboo plantation with intensive management[J].Chin J Soil Sci,2010,14 (6): 1339-1343.