陳耀國
(上海聯(lián)合賽爾生物工程有限公司,上海201206)
骨質(zhì)疏松癥(Osteoporosis)是一種以由骨強度受損導致骨折危險增加為特征的骨骼疾病,是嚴重影響老年人身體健康的三大疾病之一[1]。1996年,WHO世界骨質(zhì)疏松癥大會上達成共識,認為治療骨質(zhì)疏松癥的理想藥物是甲狀旁腺激素(Parathyroid hormone,PTH)。
人甲狀旁腺激素是由甲狀旁腺主細胞分泌的含84個氨基酸的激素,最初合成產(chǎn)物是含115個氨基酸的前甲狀旁腺素原,在分泌過程中切除N端的31個殘基后,形成成熟的由84個氨基酸組成的單鏈多肽激素。通過受體介導,PTH能夠激活腺苷酸環(huán)化酶、蛋白激酶A、蛋白激酶C、磷脂酶C等產(chǎn)生cAMP、IP3、Ca2+和二?;视偷劝麅?nèi)二級信使[2]。rhPTH(1-34)是第一種用于臨床的治療骨質(zhì)疏松癥的PTH類似物,它于2002年11月由美國FDA通過,商品名為特立帕肽,主治絕經(jīng)后婦女骨質(zhì)疏松癥和原發(fā)性骨質(zhì)疏松癥,并于2003年初在美國上市[3]。乳糖無毒性,價格便宜,可在pET系統(tǒng)中用于誘導宿主菌表達重組產(chǎn)物[4]。本文以大腸桿菌BL21(DE3)為宿主菌,對乳糖誘導表達目的蛋白的條件進行了優(yōu)化。
1.1 菌株 Escherichia coli BL21(DE3)含 pET28a(+)-PTH重組質(zhì)粒,由公司研發(fā)工藝部提供。
1.2 培養(yǎng)基 搖瓶培養(yǎng)基選用LB培養(yǎng)基:蛋白胨(10 g·L-1),酵母粉(5 g·L-1),NaCl(10 g·L-1);發(fā)酵罐基礎(chǔ)培養(yǎng)基為半合成培養(yǎng)基:葡萄糖(5 g·L-1),蛋白胨(10 g·L-1),酵母粉(5 g·L-1),KH2PO4(2 g·L-1),K2HPO4(4 g·L-1),Na2HPO4(7 g·L-1),(NH4)2SO4(1.2 g·L-1),MgSO4(0.5 g·L-1),泡敵 0.02%(v/v);補料液:葡萄糖(300 g·L-1),蛋白胨(50 g·L-1),酵母粉(50 g·L-1),MgSO4(3 g·L-1);乳糖誘導液:乳糖(200 g·L-1);全部培養(yǎng)基pH調(diào)至7.0。
1.3 試劑 蛋白胨、酵母粉(英國Oxoid公司);異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)和乳糖(上海生物工程有限公司);SDS,甘氨酸,Tris(Sigma公司);30% 丙烯酰胺-雙丙烯酰胺溶液(美國伯樂公司);卡那霉素(荷蘭Duchefa Biochemie公司);Marker(分子量范圍14 400~97 400,上海升正生物公司)。
1.4 主要設(shè)備 HZQ-X100恒溫振蕩培養(yǎng)箱(江蘇太倉市華美生化儀器廠);UV2000分光光度計(美國尤尼柯公司);Centrifuge 5810R高速冷凍離心機(德國艾本德公司);PAC 1000電泳儀(美國伯樂公司);BIOTECH-5BG-4發(fā)酵罐(上海保興生物設(shè)備工程有限公司);Gel Doc EZ Imager凝膠成像系統(tǒng) (美國伯樂公司)。
2.1 菌體生長及目的蛋白表達量的測定方法
2.1.1 菌體生長情況以A600確定 將發(fā)酵液稀釋一定的倍數(shù),測定600 nm波長下的吸光度,使測定值在0.3與0.7之間[5],A600= 稀釋倍數(shù) × 吸光度。
2.1.2 目的蛋白表達量的分析 取誘導后的發(fā)酵液12 000 r·min-1離心10 min后去上清,洗滌再離心后,按文獻[5]的方法進行SDS-PAGE電泳,丙烯酰胺的濃度為15%;通過凝膠成像系統(tǒng)分析目的蛋白占菌體總蛋白的比例。
2.2 乳糖誘導表達目的蛋白
2.2.1 搖瓶培養(yǎng)條件優(yōu)化 ①確定乳糖最佳誘導濃度:取甘油菌1‰接種到50 mL(250 mL錐形瓶)含50 mg·L-1卡那霉素的LB培養(yǎng)基中,37℃,200 r·min-1,培養(yǎng)12~15 h進行菌種活化。將活化好的菌液以2%的接種量加入到50 mL(250 mL 錐形瓶)LB 培養(yǎng)基中,37 ℃,200 r·min-1,培養(yǎng)2~4 h(A600≈1.0)時,分別向9個搖瓶添加終濃度為0%、0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%、1.2%、1.5% 和 2.0% 的乳糖,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后,各取1 mL菌液做全菌SDS-PAGE電泳并用凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白表達量;②確定乳糖最佳誘導時間:將活化好的菌液以2%的接種量加入到50 mL(250 mL錐形瓶)LB培養(yǎng)基中,37℃,200 r·min-1,培養(yǎng) 2~4 h(A600≈1.0)時,向搖瓶中添加最佳濃度的乳糖,于誘導0 h、1 h、2 h、3 h、4 h、5 h、6 h 和 7 h 各取 1 mL 菌液做全菌 SDS -PAGE電泳并用凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白表達量。
2.2.2 發(fā)酵罐培養(yǎng)條件優(yōu)化 ①間歇補料培養(yǎng):在5 L發(fā)酵罐加入基礎(chǔ)培養(yǎng)基3 L,115℃滅菌,接種量6%,通氣量200 L·h-1,通過流加氨水調(diào)節(jié)pH為7.0,溶氧上升到80%后加入100 mL的補料液,待溶氧回升至80%后再次加入100 mL的補料液,如此間歇補料,整個過程保持溶氧不低于30%。A600達到19~20時,加入100 mL的乳糖誘導液誘導,于誘導0 h、3 h、4 h和5 h各取1 mL菌液做全菌SDS-PAGE電泳并用凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白表達量;②分批補料培養(yǎng):在5 L發(fā)酵罐加入基礎(chǔ)培養(yǎng)基3 L,115℃滅菌,接種量6%,通氣量200 L·h-1,通過流加氨水調(diào)節(jié)pH為7.0,溶氧上升到80%后開始按80 mL·h-1的速度流加補料液,整個過程保持溶氧不低于30%,A600達到19~20時,加入100 mL的乳糖誘導液誘導,于誘導0 h、3 h、4 h和5 h各取1 mL菌液做全菌SDS-PAGE電泳并用凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白表達量。
3.1 乳糖最佳誘導濃度的確定 為確定合適的乳糖誘導濃度,分別以0~20%不同濃度的乳糖誘導。實驗結(jié)果如圖1,在菌體A600達到1.0時加入乳糖,隨著乳糖濃度的提高,在一定范圍內(nèi)目的蛋白的表達量也隨之提高,當乳糖濃度為0.6%時,目的蛋白的表達量達到最大,占總蛋白的 56.8%。此后隨著乳糖濃度的提高,目的蛋白的表達量有所減少。同樣,隨著乳糖濃度的提高,誘導4 h后的菌體A600也隨之增加,在乳糖濃度為0.6%時達到最大值(如表1),這說明乳糖能促進菌體的生長。但乳糖濃度大于0.6%時誘導4 h后的菌體A600開始下降,這可能由于高濃度的乳糖對菌體生長有抑制效應(yīng)。
表1 不同濃度乳糖的誘導結(jié)果
圖1 乳糖濃度的確定
3.2 乳糖最佳誘導時間的確定 在菌體A600達到1.0時加入0.6%的乳糖,37 ℃,200 r·min-1振蕩培養(yǎng),在各時間點取1 mL菌液做全菌SDS-PAGE電泳分析。從圖2電泳結(jié)果可知,加入乳糖后,隨著時間的延長,目的蛋白占總蛋白的比值逐步升高,在4 h時達到最高(54.6%),并且雜蛋白表達量較少,之后目的蛋白逐步減少。
圖2 誘導時間的確定
表2 不同誘導劑誘導后菌體生長情況
表3 不同誘導時間的誘導結(jié)果
從表2可以看出,相同時間點,加入乳糖比加入IPTG的菌體A600要高得多,說明IPTG可能對菌體生長有毒害效應(yīng);而乳糖對菌體生長有促進作用。從表3可以看出,乳糖誘導4h時目的蛋白的比值達到54.6%,這比最佳誘導條件下IPTG誘導的目的蛋白表達量要高(1 mmol·L-1IPTG誘導,目的蛋白表達比值約為47.6%)。
3.3 發(fā)酵罐培養(yǎng) 發(fā)酵初期溶氧持續(xù)下降,培養(yǎng)至4~5 h左右,溶氧上升到80%時,表明發(fā)酵罐里的營養(yǎng)物質(zhì)基本耗盡,開始間歇加入補料液(A-間歇補料培養(yǎng))和按80 mL·h-1的速度流加補料液(B-分批補料培養(yǎng)),溶氧迅速下降,通過調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)速(500~700 r·min-1)和增加通氣量保持溶氧不低于30%,A600達到19~20時,加入100 mL的乳糖誘導液誘導,于誘導0 h、3 h、4 h和5 h各取1 mL菌液做全菌SDS-PAGE電泳并用凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白表達量。兩種培養(yǎng)方式誘導4 h時,目的蛋白比值都達到最高,間歇補料培養(yǎng)方式的目的蛋白的比值僅有30.1%,而分批補料培養(yǎng)方式的目的蛋白比值達到了42.6%,可能間歇補料時一次性加入的葡萄糖過多,影響了乳糖的誘導效果。
圖3 發(fā)酵培養(yǎng)比較
本文以乳糖作為誘導劑誘導表達rhPTH(1-34),當乳糖濃度為0.6%、誘導時間4 h時,乳糖誘導效果好于IPTG。當乳糖濃度為0.6%時,目的蛋白的表達量達到最大,乳糖濃度增高反而抑制了目的蛋白的表達,這可能是由于乳糖從胞外轉(zhuǎn)移至胞內(nèi)需要β-半乳糖苷透過酶的作用,這是一種主動運輸?shù)倪^程,高濃度的乳糖會造成菌體質(zhì)子推動力的消耗,從而“分散”了菌體的能量[6]。此外,本文對5 L發(fā)酵罐高密度培養(yǎng)工藝進行了初步研究,結(jié)果顯示連續(xù)分批補料培養(yǎng)效果好于間歇補料方式。
[1]劉豐亮,常宏,劉潔,等.重組人甲狀旁腺素的原核表達及發(fā)酵條件初步優(yōu)化[J].云南大學學報(自然科學版),2008,30(2):198 -201.
[2]Potts JT,Kronenberg HM,Rosenblatt M.Parathyroid hormone:Chemistry,biosynthesis and mode of action[J].Adv Protein Chem,1982,35:323 -396.
[3]張梅,鄔敏辰,金堅.PTH融合蛋白研究進展[J].生物技術(shù)通報,2009,20(3):25 -28.
[4]吳一凡,張雙全,高秀玉,等.乳糖誘導pET載體表達重組蛋白的研究[J].南京師大學報(自然科學版),2002,25(1):89 -93.
[5]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典2010年版(三部)[M].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:附錄ⅡA,ⅣC.
[6]張毅,屈賢銘,楊勝利.乳糖作為誘導劑對重組目的蛋白表達的影響[J].生物工程學報,2000,16(4):464-468.