郭夏麗,楊小麗,王 巖
(鄭州大學(xué)化工與能源學(xué)院,河南鄭州450001)
在秸稈的資源化和能源化利用中生物法被廣泛應(yīng)用[1-3],而在玉米秸稈的微生物降解中,大多采用的是單菌株法[4-5].由于玉米秸稈含有纖維素、半纖維素及木質(zhì)素等多種組分,因此玉米秸稈的完全降解,需要多種微生物共同參與[6].目前有一些研究者開(kāi)始利用復(fù)合菌進(jìn)行秸稈降解,但只注重菌種種類,缺乏考慮菌種間的協(xié)同性和分泌酶系的全面性[7].
筆者將誘變得到的高效纖維素降解菌Y11-4與篩選得到的纖維素降解菌X2、木質(zhì)素降解菌L3及酵母菌J6進(jìn)行組配,然后將由單菌株組合的菌系與馴化得到的降解菌系再次組合,形成秸稈降解的復(fù)合菌劑.通過(guò)考察玉米秸稈降解體系的pH值變化、微生物組成、酶組成、秸稈降解率等,以檢驗(yàn)秸稈降解復(fù)合菌劑的穩(wěn)定性、酶系組成的全面性及其對(duì)秸稈的降解效果.
將風(fēng)干的玉米秸稈剪成長(zhǎng)約1 cm的小塊,于105℃烘1 h,冷卻后稱取4 g添加到150 mL三角瓶中,再加入12 mL營(yíng)養(yǎng)液,混合均勻,于121℃滅菌40 min作秸稈降解率測(cè)定培養(yǎng)基.
無(wú)機(jī)鹽溶液:MgSO4.7H2O 5 g,CaCl20.1 g,KH2PO41 g,NaCl 0.1 g,F(xiàn)eSO4.7H2O 0.05 g,Zn-SO4.7H2O 0.014 g,MnSO4.7H2O 0.016 g,CoCl20.01 g,水1 000 mL,pH值自然.
營(yíng)養(yǎng)液:(NH4)2SO46 g,尿素 3 g,蛋白胨3 g,無(wú)機(jī)鹽溶液1 000 mL,pH值自然.
將復(fù)合菌劑接種于秸稈培養(yǎng)基,于30℃靜止培養(yǎng)14 d,每天定時(shí)振蕩一次,在一定時(shí)間間隔內(nèi)分別測(cè)定pH值、酶活性、微生物數(shù)量及秸稈降解率[8-9].
酶活測(cè)定.外切型葡聚糖酶(C1)活測(cè)定:取兩支25 mL試管,各加0.2 mL酶液,再加pH為4.8的醋酸緩沖液1.8 mL,測(cè)定管加入50 mg脫脂棉,充分浸泡,與不加脫脂棉的空白管同時(shí)置50℃恒溫水浴60 min.然后分別加入DNS顯色液2 mL,空白管同時(shí)加50 mg脫脂棉,沸水浴10 min,冷卻后加水至15 mL,混勻,在550 nm處比色.羧甲基纖維素酶(Cx)活測(cè)定:取兩支25 mL試管,各加0.2 mL酶液,測(cè)定管加1.8 mL羧甲基纖維素鈉CMC(1 g/100 mL),空白管加pH為4.8醋酸緩沖液1.8 mL,置50℃恒溫水浴60 min,取出,加入2 mL DNS溶液,沸水浴中保持10 min,冷卻后加水至15 mL,混勻,在550 nm處比色.β-葡萄糖苷酶(Cb)酶活測(cè)定:把CMC酶活測(cè)定中的 CMC(1 g/100 mL)換成水楊素(1 g/100 mL).
纖維素酶活定義:1 mL酶液于50℃,pH4.8條件下,每分鐘水解底物產(chǎn)生1 μg還原糖(以葡萄糖計(jì))的酶量即為1個(gè)酶活單位。
秸稈降解菌系的pH調(diào)控能力是其穩(wěn)定性的重要表現(xiàn)之一,通過(guò)對(duì)秸稈降解過(guò)程中pH變化的檢測(cè),來(lái)探明復(fù)合菌系的穩(wěn)定性.不同培養(yǎng)時(shí)間pH的變化如圖1所示.
圖1 不同培養(yǎng)時(shí)間pH的變化Fig.1 The pH changes at different culture time
由圖1可知,在秸稈降解的14 d內(nèi),體系的pH值始終處于6.5~7.5之間.在整個(gè)降解過(guò)程中體系的pH值始終變化不大,處于中性范圍內(nèi),而且秸稈降解率逐漸增加,表明穩(wěn)定的pH提供了微生物生長(zhǎng)及代謝活動(dòng)旺盛進(jìn)行所需要的適宜環(huán)境,從而使微生物能高效降解秸稈.pH的穩(wěn)定說(shuō)明該復(fù)合菌系具有一定的pH調(diào)節(jié)能力.
纖維素的降解是秸稈降解的關(guān)鍵.纖維素的降解是內(nèi)切 β-1,4-葡聚糖酶(Cx酶),外切 β-1,4-葡聚糖酶(C1酶)和β-葡萄糖苷酶(Cb酶)協(xié)同作用的結(jié)果[10],本研究通過(guò)考察秸稈降解過(guò)程中各種纖維素降解酶的活性變化,以探明復(fù)合菌劑產(chǎn)生的纖維素降解酶的種類及其在玉米秸稈降解中的作用.
秸稈降解過(guò)程中纖維素酶活力的變化如圖2所示.由圖2可以看出,復(fù)合菌劑能夠分泌纖維素降解所需的3種酶類,在秸稈降解的整個(gè)過(guò)程中,各纖維素酶活性變化呈現(xiàn)了一個(gè)由低到高、再回落的趨勢(shì).纖維素降解酶為纖維素底物誘導(dǎo)產(chǎn)生的誘導(dǎo)酶.在培養(yǎng)前期,復(fù)合菌系中各種纖維素降解菌開(kāi)始被誘導(dǎo)產(chǎn)生纖維素降解酶,因而酶活逐漸增大,隨著底物秸稈的不斷降解,纖維素濃度逐漸降低,導(dǎo)致纖維素降解酶活有所降低.C1酶和Cx酶的水解產(chǎn)物纖維二糖對(duì)C1酶和Cx酶具有很強(qiáng)的反饋抑制作用[11],而Cb酶可水解纖維二糖,從而解除該抑制作用.由圖2可知,Cb酶在C1酶和Cx酶之前進(jìn)入高活性階段,對(duì)C1酶和Cx酶的活性增加起到了促進(jìn)作用.Cx酶的作用可以形成C1酶所需要的游離末端,Cx酶在C1酶之前進(jìn)入高活性階段,對(duì)C1酶的活性具有一定促進(jìn)作用.C1酶、Cx酶和Cb酶表現(xiàn)了良好的協(xié)同性.C1酶、Cx酶和Cb酶是由混合菌系產(chǎn)生分泌的,可以來(lái)自不同的菌源,這3種酶間的協(xié)同性在一定程度上反映了復(fù)合菌系在秸稈降解功能上的穩(wěn)定性.
圖2 秸稈降解過(guò)程中纖維素酶活力的變化Fig.2 The cellulase activity at different culture time
復(fù)合菌系中不同微生物種群之間的協(xié)同作用是復(fù)合菌系穩(wěn)定的關(guān)鍵.通過(guò)分析秸稈降解過(guò)程中不同微生物種群的數(shù)量變化,以探明復(fù)合菌系穩(wěn)定的根本機(jī)制.秸稈降解率及微生物種群變化如圖3所示.
圖3 秸稈降解過(guò)程中微生物組成的變化Fig.3 The changes of microbial populations during corn stalk decomposing
由圖3可知,秸稈降解率在前6 d增加較快,隨后變得緩慢.細(xì)菌數(shù)量隨著秸稈的降解一直增加,到第10 d趨于穩(wěn)定.真菌數(shù)量在前8 d逐漸增加,隨后有一定的下降,并在第10 d保持穩(wěn)定.本研究的前期工作即纖維素分解菌的篩選表明真菌分泌的胞外纖維素酶活比細(xì)菌的活性高[12],而且真菌具有發(fā)達(dá)的菌絲,菌絲能很快覆蓋秸稈表面,有利于秸稈降解,加之,真菌數(shù)量與C1酶和Cx酶活均在第8 d達(dá)到最高,說(shuō)明C1酶和Cx酶大多來(lái)自真菌,表明真菌直接參與了秸稈降解過(guò)程.細(xì)菌雖然纖維素酶活不高,但能利用纖維素水解產(chǎn)物葡萄糖和纖維二糖,憑借其快速生長(zhǎng)繁殖優(yōu)勢(shì),消耗大量的葡萄糖和纖維二糖,在一定程度上緩解纖維素分解產(chǎn)物對(duì)真菌纖維素分解酶的反饋抑制,間接促進(jìn)秸稈降解.再者,細(xì)菌適宜pH為中性,而秸稈降解體系的pH值始終處于6.5~7.5之間,推測(cè)細(xì)菌在pH的調(diào)控上起主導(dǎo)作用.
(1)在秸稈的整個(gè)降解過(guò)程中,pH值一直處于中性范圍,表明秸稈降解菌劑對(duì)pH具有較強(qiáng)的調(diào)節(jié)能力,在性質(zhì)上具有穩(wěn)定性.
(2)復(fù)合菌劑能夠產(chǎn)生纖維素降解所需的三種酶類,即C1酶、Cx酶和Cb酶.在秸稈降解過(guò)程中,Cb酶對(duì)C1酶和Cx酶的活性有促進(jìn)作用,Cx酶對(duì)C1酶的活性有促進(jìn)作用.C1酶、Cx酶和Cb酶之間具有一定協(xié)同性.
(3)復(fù)合菌劑主要由細(xì)菌和真菌組成.在秸稈降解過(guò)程中,真菌通過(guò)產(chǎn)生纖維素酶降解秸稈,同時(shí)為細(xì)菌提供了大量營(yíng)養(yǎng)物質(zhì);而細(xì)菌通過(guò)利用纖維素降解產(chǎn)物——葡萄糖和纖維二糖進(jìn)行生長(zhǎng)繁殖,解除真菌的產(chǎn)物反饋抑制作用,間接促進(jìn)了秸稈的降解.細(xì)菌群落與真菌群落的協(xié)同作用是復(fù)合菌系穩(wěn)定性的基礎(chǔ).
[1]孫健,陳礪,王紅林.纖維素原料生產(chǎn)燃料酒精的技術(shù)現(xiàn)狀[J].可再生解源,2003,112(6):5-9.
[2]曹國(guó)良,張小曳,鄭方成,等.中國(guó)大陸秸桿露天焚燒的量的估算[J].資源科學(xué),2006,28(1):9-12.
[3]MALHERBE S,CLOETE T E.Lignocellulose biodegradation:Fundaments and applications[J].Reviews in Environmental Science and Biotechnology,2002(1):105-114.
[4]劉清鋒,支曉鵬,徐惠娟,等.纖維素降解菌青霉T24-2的分離及產(chǎn)酶特性[J].工業(yè)微生物,2007,37(3):15-19.
[5]曲小爽,頓寶慶,郭明鳴,等.一株嗜熱纖維素分解菌的分離及其酶學(xué)性質(zhì)的初探[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報(bào),2009(1):124-128.
[6]SANCHEZ C.Lignocellulosic residues:Biodegradation and bioconversion by fungi[J].Biotechnology Advances,2009(27):185-194.
[7]GUO Peng,WANG Xiaofen,ZHU Wanbin,et al.Degradation of corn stalk by the composite microbial system of MC1[J].Journal of Environmental Sciences,2008,20(1):109-114.
[8]姚占芳,吳云漢.微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)[M].北京:氣象出版社,1998:50-54.
[9]劉德海,楊玉華,安明理,等.纖維素酶酶活的測(cè)定方法[J].中國(guó)飼料,2002(17):27-28.
[10]劉樹(shù)立,王華,王春艷,等.纖維素酶分子結(jié)構(gòu)及作用機(jī)理的研究進(jìn)展[J].食品科技,2007(7):12-15.
[11]趙越,武彬,閻伯旭,等.纖維二糖抑制外切纖維素酶水解作用機(jī)理的分析[J].中國(guó)科學(xué)(C),2003,23(5):454-460.
[12]郭夏麗,楊小麗,李順義,等.秸稈降解菌的篩選及菌種組合[J].鄭州大學(xué)學(xué)報(bào):工學(xué)版,2010,31(1):74-77.