蘭道亮,吉文匯,王長松,孫 煥,陳莫林,崔 立,童光志,華修國*
(1.上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院 上海市獸醫(yī)生物技術(shù)重點實驗室,上海200240;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院上海獸醫(yī)研究所,上海200241)
豬薩佩羅病毒(Porcine sapelovirus,PSV)是微球形,無囊膜包裹的一類RNA病毒,屬小RNA病毒科,由于最初從腹瀉豬的腸道中分離得到,所以先前統(tǒng)屬于腸道病毒屬中的豬腸道病毒Ⅱ群,稱為豬腸道病毒8型(PEV8)[1]。近年來,由于對腸道病毒基因組及進(jìn)化關(guān)系的深入研究,該病毒已單獨劃分為薩佩羅病毒屬[2]。PSV可引起豬腦脊髓灰質(zhì)炎、肺炎、繁殖障礙、心包炎、心肌炎、皮膚損傷、腹瀉等多系統(tǒng)綜合征,同時也可出現(xiàn)無明顯特征的亞臨床癥狀,但無論其以何種形式暴發(fā),都會給養(yǎng)豬業(yè)帶來威脅。該病最早于20世紀(jì)60年代在英國發(fā)現(xiàn)[3],隨后在北美、日本、澳大利亞等世界范圍內(nèi)的其他國家相繼報道[4-8],而且在飼養(yǎng)豬群中感染率很高[9-10]。
近年來,隨著規(guī)?;B(yǎng)豬業(yè)的發(fā)展及畜產(chǎn)品流通渠道的增多,我國豬群中腸道、呼吸道、生殖器官疾病以及腦脊髓炎等多系統(tǒng)綜合征頻繁發(fā)生,長期以來豬圓環(huán)病毒2型(PCV-2)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、豬細(xì)小病毒(PPV)、豬捷申病毒(PTV)被認(rèn)為是引起該類疾病的主要病原體[11],但PSV這個經(jīng)典腸道病毒卻一直沒有引起相應(yīng)的重視。目前為止,我國還未見對PSV的系統(tǒng)性研究報道。但鑒于PSV也可引起類似的臨床癥狀且可混合感染,使我們不得不考慮PSV這一感染因素。目前,豬病的發(fā)生越來越復(fù)雜,在控制重點傳統(tǒng)病的同時,對于一些我國還沒有開展研究或研究力度不夠的傳染病進(jìn)行深入的研究也十分必要。因此,在我國開展PSV的研究工作,了解PSV流行情況,建立快速的病原學(xué)診斷方法,具有重要的意義。本研究主要通過設(shè)計的PSV鑒定引物,應(yīng)用RT-PCR方法對華東地區(qū)豬群中PSV進(jìn)行調(diào)查,通過序列比對分析其遺傳進(jìn)化關(guān)系,為了解該病毒在華東地區(qū)的分布情況提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
1.1.1 樣本采集 2009年10月至2010年12月,從上海、江蘇、安徽等地的15個大中型養(yǎng)豬場(200頭~1 000頭母豬)共采集1月齡~5月齡臨床健康豬糞便樣本960份,其中從上海市崇明、浦東、閔行、南匯、金山區(qū)的6個豬場采集350份,從江蘇省宿遷市、鹽城市、鎮(zhèn)江市、蘇州市的4個豬場采集310份,從安徽省宿州市、阜陽市、滁州市、黃山市的5個豬場采集300份(表1),采集的新鮮豬糞便樣品立即置-80℃冰箱凍存。
1.1.2 主要試劑及儀器 Trizol為Invitrogen公司產(chǎn)品;Prime Script 1st Strand cDNA Synthesis Kit pMD-18T載體為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品;PCR Mix、AxyPrep DNA凝膠回收試劑盒為上海前塵生物技術(shù)有限責(zé)任公司產(chǎn)品;DH5αE.coli為天根生化公司產(chǎn)品。PCR儀PX2為美國Thermo Hybaid公司產(chǎn)品;核酸電泳儀Powerpac universalTM為美國Bio-Rad公司產(chǎn)品。
表1 采樣地區(qū)及樣品數(shù)量Table 1 The areas and numbers of specimen
1.2.1 樣本的處理及總RNA的提取 取在-80℃保存的樣品,冰上溶化。用PBS液將樣品按照1∶10的比例稀釋,渦旋振動5min。在4℃條件下以12 000r/min離心10min,取上清。處理后的糞便上清供下游提取遺傳物質(zhì)。然后取100μL糞便上清,利用Trizol法提取總RNA,具體操作方法按照Invitrogen產(chǎn)品說明書提取步驟進(jìn)行。
1.2.2 RT-PCR檢測 參考Palmquist J M等[12]設(shè)計的PSV 5′保守區(qū)的通用檢測引物,擴(kuò)增目的片段為 163bp。上游 引 物 PSV1:5′-GTGGCGACAGGGTACAGAAGAG-3′;下游引物 PSV-2:5′-GGCCAGCCGCGACCCTGTCAG-3′。以提取的樣本RNA為模板,按照Prime Script 1st Strand cDNA Synthesis Kit的說明書進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,合成cDNA。反應(yīng)參數(shù)為:42℃30min,85℃5s。然后取10μL反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)體系為:模板10μL,PCR mix 25μL;上游引物1μL;下游引物1μL;ddH2O為13μL。反應(yīng)條件為:94℃3min;94℃30s,56℃40s,72℃40s,35個循環(huán);72℃5 min,4℃結(jié)束反應(yīng)。
1.2.3 PSV RdRp基因及VP1基因序列擴(kuò)增 參考GenBank中已有PSV基因序列,自行設(shè)計擴(kuò)增RdRp及VP1基因全長引物。RdRp基因擴(kuò)增引物:上游引物 RdRp-F:5′-GCAGCCCTGTTGAAGAGAGACT-3′;下游引物RdRp-R:5′-ATA TGTTCACGCCGCCTAAAA-3′;VP1基因擴(kuò)增引物:上游 引 物 VP1-F:5′-ATTGCCTAYACACCACCTGG-3′;下 游 引 物 VP1-R:5′-GCAGGTCTTCTCCCACAAAC-3′;參照1.2.2所述方法,對 PSV RdRp基因及VP1基因全序列進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增。
1.2.4 序列的克隆及測序 擴(kuò)增后的PCR產(chǎn)物利用10g/L和50g/L凝膠電泳進(jìn)行檢測。特異性目的條帶經(jīng)割膠、純化回收后連接pMD-18T載體,隨后進(jìn)行T/A克隆,挑取陽性重組質(zhì)粒,送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司測序。
1.2.5 系統(tǒng)進(jìn)化分析 本試驗所得序列及其參考序列均整理成Fasta格式,通過ClustaXv1.8比對后保存生成的文件采用Mega 4.0系統(tǒng)進(jìn)化分析軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。本試驗中使用的小RNA科不同種屬病毒名稱及參考株序列號如下:
AiV,aichivirus(FJ890523);ASV,avian sapelovirus(NC-006553);BEV,bovine enterovirus(AF123432);EMCV,encephalomyocarditis virus(NC-001479);PEMCV,porcine encephalomyocarditis virus(DQ835184);ERAV,equine rhinitis A virus(NC-003982);ERBV,equine rhinitis B virus(NC-003077);FMDV,foot-and-mouth disease virus (GU384683); HAV,hepatitis A virus(EU526088); HEV, human enterovirus(AB678778,HM185056,JN542510,AB601882);HPeV,human parechovirus(AB668033);HRV,human rhinovirus(JN990704,JN614997);LjV,ljungan virus(NC-003976);PEV,porcineenterovirus(Y14459,AF363455);PKV,porcine kobuvirus (GU298977);PSV,porcine sapelovirus(NC-003987,AY392543,AY392556,AY392544,AY392538);PTV,porcine teschovirus (NC-003985);SHAV,simian hepatitis A virus(SHVAGM27);SV,simian sapelovirus(EU789367)。
960份臨床糞便總樣本,經(jīng)RT-PCR檢測,共有165份樣本為PSV陽性樣本,總體陽性率為17.2%。各地區(qū)PSV陽性率如表2所示,其中安徽地區(qū)的PSV陽性感染率要明顯高于上海和江蘇地區(qū)(P<0.05)。進(jìn)一步分析不同年齡段豬的PSV陽性率,我們發(fā)現(xiàn)10周齡~20周齡的豬PSV陽性率最高,達(dá)到25.6%,大于20周齡的豬PSV陽性率最低為11.6%(表3),這表明10周齡~20周齡的豬的PSV感染率要顯著高于其他周齡的豬(P<0.05)。
表2 華東地區(qū)15個豬場PSV的流行情況Table 2 Prevalence of PSV in 15farms located in East China
表3 不同年齡段豬的糞便樣本中PSV檢測結(jié)果Table 3 The prevalence of PSV in swine feces of different ages
2.2.1 RdRp及VP1基因序列分析 從上海、江蘇、安徽三省市的陽性樣本中,各隨機(jī)選取8個樣本,擴(kuò)增其RdRp基因及VP1基因全序列,并測序。然后,對這選取的24株P(guān)SV中國華東株分別進(jìn)行RdRp基因及VP1基因的同源性比對。結(jié)果表明,這24株P(guān)SV中國華東株的RdRp基因間的同源性為87.0%~99.9%,同源性較高,而VP1基因間的同源性為72.4%~99.4%。
2.2.2 以RdRp基因為基礎(chǔ)的系統(tǒng)進(jìn)化分析 利用ClustaX v1.8,將24株P(guān)SV中國華東株的RdRp基因序列與小RNA病毒科其他代表毒株的RdRp基因序列進(jìn)行核苷酸比對,然后使用Mega 4.0系統(tǒng)進(jìn)化分析軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖1),本研究分離的毒株與GenBank中已有的PSV V13株聚為一類,且與SV-2和ASV同屬于薩佩羅病毒屬,而與小RNA病毒科的其他成員相距較遠(yuǎn)。說明本研究分離的毒株為PSV,符合ICTV的分類條件。
2.2.3 以VP1基因為基礎(chǔ)的系統(tǒng)進(jìn)化分析 將24株P(guān)SV中國華東株的VP1基因序列與微RNA病毒科其他代表毒株的VP1基因序列進(jìn)行核苷酸比對,然后構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖2),上海、江蘇和安徽三省市的毒株交錯分布在一起,不存在明顯的地區(qū)差異,但大體可分為3個亞群,其中7株與Gen-Bank中已有的PSV V13、16-S-X、26-T-XII株聚為一個亞群,3株與GenBank中已有的PSV Sek1562/98、Po 5116株聚為一個亞群,而剩下的又聚為一個亞群。
PSV很早便于英國發(fā)現(xiàn),隨后在北美、日本、澳大利亞等世界范圍內(nèi)的其它國家相繼有報道,而且在正常飼養(yǎng)豬群中感染率超過20%[9]。PSV可引起豬腸道、呼吸道、生殖器官疾病以及腦脊髓炎等多系統(tǒng)綜合征,同時也可出現(xiàn)無明顯特征的亞臨床癥狀,所以在疾病檢測和防控方面容易被忽略。目前,我國尚未對PSV開展深入研究,而且PSV在我國的流行情況還不十分清楚。
本研究通過RT-PCR方法對中國華東地區(qū)豬群中PSV的感染率進(jìn)行了分子流行病學(xué)調(diào)查,從上海、江蘇、安徽三省市的13個地區(qū)收集的960份臨床健康豬糞便樣本中,共檢測到PSV陽性樣本165份,總體陽性率17.2%,并且在所檢測的13個地區(qū)均檢測到該病毒,這表明PSV在華東地區(qū)普遍存在。在所檢測的3個省市中,安徽省豬群平均感染率最高為22.3%,上海市豬群平均感染率最低為13.1%,在所檢測的13個地區(qū)中,情況類似,安徽省的阜陽地區(qū)豬群感染率最高為25.3%,上海市的崇明地區(qū)豬群感染率最低為10.0%,而江蘇省地區(qū)豬群的感染率介于二者之間。造成不同地區(qū)的感染率差異的原因可能與地區(qū)間的養(yǎng)殖狀況以及飼養(yǎng)管理方式有關(guān)。進(jìn)一步分析不同年齡段豬的PSV陽性率,我們發(fā)現(xiàn)10周齡~20周齡的豬PSV陽性率最高,達(dá)到25.6%,表明在此年齡段的仔豬最易感,這與PEV的感染狀況類似[12-13]。我國仔豬的哺乳期在一般為4周~9周,由于哺乳期仔豬受到母源抗體保護(hù),對PSV具有一定的抵抗力,而相關(guān)抗體在斷奶3周后降至最低[14-15],所以易于受到PSV感染。這也提示加強(qiáng)斷奶仔豬,尤其是10周齡~20周齡仔豬的飼養(yǎng)管理,對于防控PSV有重要意義??傮w來說,我國華東地區(qū)豬群中PSV的感染流行率,與國外報道的情況基本相同。但臨床健康豬群中20%以上的感染率不能不視其為危害養(yǎng)豬業(yè)的重要潛在威脅。
隨后從上海、江蘇、安徽三省市的陽性樣本中,隨機(jī)選取24個樣本,擴(kuò)增其RdRp基因及VP1基因全序列,進(jìn)行相關(guān)系統(tǒng)進(jìn)化分析。以RdRp基因為基礎(chǔ)構(gòu)建進(jìn)化樹,分析其與小RNA病毒科其他種屬之間的關(guān)系,結(jié)果表明本研究分離的毒株與已有的PSV株歸為一類,且與SV-2和ASV同屬于薩佩羅病毒屬,而與小RNA病毒科的其它成員相距較遠(yuǎn)。由于RdRp基因在小RNA病毒科各種屬成員中具有較高的保守性,成為區(qū)分小RNA病毒科中不同種屬成員的有力依據(jù)。同時,從RdRp基因進(jìn)化樹中也可發(fā)現(xiàn)薩佩羅病毒屬與腸道病毒屬各歸為一類,存在一定的遺傳距離,這與國際病毒分類委員會將PSV從原先的PEV腸道病毒屬中單獨劃分出來的分類相符。進(jìn)一步以PSV的外層衣殼蛋白基因VP1為基礎(chǔ)構(gòu)建進(jìn)化樹,分析24株P(guān)SV中國華東株間的進(jìn)化關(guān)系。由于外層衣殼蛋白VP1在小RNA病毒科各種屬間具有多變性及良好的抗原性,所以被認(rèn)為是劃分小RNA病毒科各種屬間不同亞型的有力依據(jù)[9,16]。VP1基因進(jìn)化樹分析表明上海、江蘇和安徽三省市的毒株交錯分布在一起,不存在明顯的地區(qū)差異,但大體可分為3個亞群,而且已有的國外PSV均包括在這3亞群中。目前,PSV只有1個血清型,但PSV是否存在不同的基因亞型尚不清楚。Tseng C H等[2]證實PSV存在3種類型的抗原變異株,與本研究的進(jìn)化分析結(jié)果相似,這提示PSV可能至少存在3種不同的抗原基因亞型。但關(guān)于PSV的亞型分型國際上尚無定論,還需進(jìn)一步深入研究加以證實。
圖1 基于RdRp基因序列構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.1 The phylogenetic tree constructed based on the RdRp gene sequence
圖2 基于VP1基因序列構(gòu)建的系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.2 The phylogenetic tree constructed based on the VP1gene sequence
[1] Kaku Y,Sarai A,Murakami Y.Genetic reclassification of porcine enteroviruses[J].J Gen Virol,2001,82(Pt 2):417-424.
[2] Tseng C H,Tsai H J.Sequence analysis of a duck picornavirus isolate indicates that it together with porcine enterovirus type 8and simian picornavirus type 2should be assigned to a new picornavirus genus[J].Virus Res,2007,129(2):104-114.
[3] Lamout P H,Betts A O.Studies on enteroviruses of the pig.IV.The isolation in tissue culture of a possible enteric cytopathogenic swine orphan(ECSO)virus(V13)from the faeces of pig[J].Res Vet Sci,1960(1):152-59.
[4] L'Ecuyer C,Greig A S.Serological and biological studies on porcine enteroviruses isolated in Canada[J].Can Vet J,1966,7(7):148-154.
[5] Dunne H W,Kradel D C,Clark C D,et al.Porcine enteroviruses:a serologic comparison of thirty-eight Pennsylvania isolates with other reported North American strains,Teschen,Talfan,and T80serums-aprogress report[J].Am J Vet Res,1967,28(123):557-568.
[6] Morimoto T,Watanabe M.Serological identification of porcine enteroviruses isolated in Japan [J].Natl Inst Anim Health Q(Tokyo),1964,4:177-182.
[7] Dunne H W,Wang J T,Ammerman E H.Classification of North American porcine enteroviruses:a comparison with European and Japanese strains[J].Infect Immun,1971,4(5):619-631.
[8] Forman A J,Pass D A,Connaughton I D.The characterisation and pathogenicity of porcine enteroviruses isolated in Victoria[J].Aust Vet J,1982,58(4):136-142.
[9] Sozzi E,Barbieri I,Lavazza A,et al.Molecular characterization and phylogenetic analysis of VP1of porcine enteric picornaviruses isolates in Italy[J].Transbound Emerg Dis,2010,57(6):434-442.
[10] Buitrago D,Cano-Gomez C,Aguero M,et al.A survey of porcine picornaviruses and adenoviruses in fecal samples in Spain[J].J Vet Diagn Invest,2010,22(5):763-766.
[11] Yi J,Liu C.Molecular characterization of porcine circovirus 2isolated from diseased pigs co-infected with porcine reproductive and respiratory syndrome virus [J].Virol J,2010(7):286.
[12] Palmquist J M,Munir S,Taku A,et al.Detection of porcine teschovirus and enterovirus type II by reverse transcriptionpolymerase chain reaction[J].J Vet Diagn Invest,2002,14(6):476-480.
[13] Zell R,Krumbholz A,Henke A,et al.Detection of porcine enteroviruses by nRT-PCR:differentiation of CPE groups IIII with specific primer sets[J].J Virol Meth,2000,88(2):205-218.
[14] McCormick B M,Driesen S J,Connaughton I D,et al.Prevalence of enteroviral and parvoviral antibodies in pig sera[J].Res Vet Sci,1986,41(3):397-401.
[15] Cropper M,Dunne H W,Leman A D,et al.Prevalence of antibodies to porcine enteroviruses and porcine parvovirus in body fluids of fetal pigs from small vs large litters[J].J Am Vet Med Assoc,1976,168(3):233-235.
[16] Huang J,Gentry R F,Zarkower A.Experimental infection of pregnant sows with porcine enteroviruses[J].Am J Vet Res,1980,41(4):469-473.
[17] Krumbholz A,Dauber M,Henke A,et al.Sequencing of porcine enterovirus groups II and III reveals unique features of both virus groups[J].J Virol,2002,76(11):5813-5821.