齊牧遙,趙 丹,王 芬,謝 云,陳五嶺
(西北大學生命科學學院,陜西西安710069)
美國紅提葡萄又名美國紅提、晚紅、大紅球,是美國加州大學育成的優(yōu)質(zhì)葡萄新品種,晚熟[1-2],它以個大、色艷、肉厚、味甜、質(zhì)優(yōu)、耐貯等優(yōu)良性狀而著稱,深受廣大人民群眾的喜愛。但是,紅提葡萄屬歐亞品種,抗病性較差,不抗多種病害,在多雨的年份或栽植在溫暖濕潤的地區(qū),其主要病害尤其是真菌性病害發(fā)生嚴重,病害一旦蔓延,對產(chǎn)量、品質(zhì)、效益影響較大,造成許多果園減產(chǎn)甚至面臨毀園的危險,因此,防治病害至關重要[3-4]。
目前,紅提葡萄的主要病害為葡萄黑痘病、葡萄霜霉病、葡萄白腐病,防治措施主要為套袋或者化學防治,但其往往會帶來人力成本過高、用藥盲目、超濃度用藥等問題[5-6]。由于生物防治技術具有安全、無污染、無殘留等特點,越來越受到人們的廣泛關注。葡萄白腐病又稱腐爛病,全世界均有分布,它是紅提葡萄主要的真菌性病害之一。該病常年發(fā)生,一般年份會造成減產(chǎn)15%~20%,在流行年份達到60%以上,是紅提葡萄病害中造成損失最重、危害最大的一種病害[7-8]。Guetsky等[9]證實,不同的拮抗微生物具有不同的功能,混合使用比單獨使用效果更好。
本試驗選取紅提葡萄真菌性病害中發(fā)生頻率最高、范圍最廣、病害嚴重性最強的白腐病的拮抗菌作為研究對象,將實驗室已有的2種拮抗菌混合培養(yǎng),從而獲得拮抗能力更強的混合拮抗菌液,并嘗試優(yōu)化培養(yǎng)基配方,提高混合菌液的拮抗能力,旨在為進一步配制復合生防菌肥、無公害防治葡萄白腐病打下基礎。
1.1.1 菌種 枯草芽孢桿菌PT2′(由西北大學生命科學學院實驗室誘變得到,保存于4℃冰箱),QM34(由西北大學胡青平博士篩選并予以鑒定),葡萄白腐病病原指示菌(為西北大學生命科學學院實驗室保藏菌種)。
1.1.2 培養(yǎng)基 搖瓶種子培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨10.0,葡萄糖 5.0,牛肉膏 5.0,NaCl5.0,MgSO4·7H2O 0.15,MnCl2·7H2O 0.01。
牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基(g/L):蛋白胨10.0,牛肉膏 3.0,NaCl15.0,瓊脂 20.0。
玉米粉液體培養(yǎng)基:糖化酶(2 000單位),α-淀粉酶(2 000 單位),玉米粉,KH2PO4,CO(NH2)2。
牛肉膏蛋白胨液體培養(yǎng)基(g/L):牛肉膏3.0,蛋白胨 10.0,NaCl15.0。
以上培養(yǎng)基使用的試劑均為化學純,調(diào)整pH值為7.0,121℃下滅菌30min。
1.1.3 儀器設備 超凈臺SW-CJ-1F,上海蘇凈實業(yè)有限公司;立式壓力蒸汽滅菌鍋LDZX-40BI,上海申安醫(yī)療器械廠;電熱恒溫干燥箱GZX-DH 400-BS-Ⅱ,上海躍進醫(yī)療器械廠;顯微鏡Eclipse E200,尼康公司;電子天平Sartorius BS210S,北京賽文利斯;培養(yǎng)箱MJ-160-Ⅱ,上海躍進醫(yī)療器械廠;分光光度儀UV-2401,PC。
1.2.1 最佳發(fā)酵條件的確定
1.2.1.1 最佳培養(yǎng)基的選擇 將菌種PT2′及QM34按照接種量各1%混合,分別接種于裝有無菌牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基、無菌搖瓶種子培養(yǎng)基和無菌玉米粉液體培養(yǎng)基的錐形瓶中,做好標記。然后將3個錐形瓶置于30℃,200 r/min的搖床中振蕩培養(yǎng)24 h。重復3次。
1.2.1.2 發(fā)酵培養(yǎng)基生物量測量 取1.2.1.1的3種發(fā)酵液各1mL,于5mL無菌水中稀釋后,分別取1mL,在660 nm下測定吸光值,標記為A660,每種發(fā)酵液重復測定3次。以未接種的無菌培養(yǎng)基按照相同的取量作為空白對照。
1.2.1.3 發(fā)酵培養(yǎng)基抑菌能力的觀察 于4℃,1 000 r/min離心10min得到1.2.1.1的3種發(fā)酵液的上清液,經(jīng)過微孔濾膜過濾得到無菌發(fā)酵液,以葡萄白腐病致病真菌為拮抗對象,四點杯碟對峙法[8]做拮抗試驗,每個平板試驗重復3次,記錄拮抗抑菌圈的大小。離心得到的3組發(fā)酵液試驗互為對照。
1.2.2 工業(yè)發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化
通過查閱相關文獻[10],在試驗確定的最佳培養(yǎng)基的基礎上,加入低濃度的MnS,以觀察混合拮抗菌發(fā)酵液A660值以及抑菌能力的變化。
1.2.2.1 最佳培養(yǎng)基的優(yōu)化 用SPSS 19.0設計6因素3水平的正交表,隨機產(chǎn)生18組試驗(表1)。30℃培養(yǎng)24 h后測定A660值,然后取拮抗菌株發(fā)酵液做拮抗試驗,6 d后觀察抑菌圈的大小,重復3次。
表1 L18(36)正交設計 g/L
1.2.2.2 統(tǒng)計分析 采用SPSS 19.0進行正交試驗表格設計及方差分析。
將PT2′與QM34混合分別接入無菌牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基、無菌搖瓶種子培養(yǎng)基和無菌玉米粉液體培養(yǎng)基中,記為N組、Z組和Y組。振蕩培養(yǎng)24 h,測定A660值,記錄發(fā)酵液中菌數(shù)變化的結(jié)果(表2)。
表2 3種培養(yǎng)基發(fā)酵液的A660值
從表2可以看出,經(jīng)過液體搖床發(fā)酵,Y組的吸光度值A660明顯高于Z組和N組,這說明在玉米粉液體培養(yǎng)基中,PT2′與QM34的混合發(fā)酵液含菌量最多。
以表2數(shù)據(jù)為基礎,假設Y組培養(yǎng)基中,PT2′與QM34的混合發(fā)酵液含菌量最多為正確,經(jīng)過SPSS數(shù)據(jù)分析,得到表3。
從表3可以看出,N,Z,Y這3組數(shù)據(jù)的P值均小于0.01,說明根據(jù)表2推理的假設成立,且Y組的A660較N組和Z組有顯著差異,這說明Y組的發(fā)酵液中含菌量最多,即Y組較N組和Z組發(fā)酵液更適宜混合菌的生長。
表3 3種不同培養(yǎng)基發(fā)酵液A660值差異性檢驗
為了觀察不同培養(yǎng)基對混合菌液拮抗能力的影響,將培養(yǎng)1 d以上的PT2′與QM34的混合培養(yǎng)液制成無菌發(fā)酵液,做拮抗試驗,每種培養(yǎng)基3組重復,記錄各組的抑菌圈直徑大?。ū?、圖 1)。
表4 不同培養(yǎng)基發(fā)酵液的抑菌效果
從表4和圖1可以看出,Y組培養(yǎng)基發(fā)酵液的抑菌圈大小高于N組和Z組,說明其拮抗能力顯著高于N組、Z組發(fā)酵液的拮抗能力。
由圖2可知,Y組發(fā)酵液的抑菌圈大小和吸光度均高于N組和Z組,由此可得出結(jié)論:PT2′與QM34在玉米粉液體培養(yǎng)基中混合培養(yǎng),產(chǎn)生發(fā)酵液與其他2種培養(yǎng)基的相比,拮抗能力更強,即本試驗中玉米粉液體培養(yǎng)基為最優(yōu)培養(yǎng)基,這為下一步培養(yǎng)基的優(yōu)化提供了理論基礎。
為了進一步提高試驗確定的最優(yōu)培養(yǎng)基——玉米粉液體培養(yǎng)基的抑菌效價,我們在培養(yǎng)基中加入少量的MnS,并用SPSS軟件對試驗數(shù)據(jù)進行正交極差分析。
2.3.1 正交結(jié)果極差分析 從表5可以看出,當極差分析中以吸光度值為指標時,各因素的影響順序為:B>A=C=D>E>F;以抑菌圈大小為指標時,各因素的影響順序為:A>F>B>E>D>C,但僅以此數(shù)據(jù)還不能分析確定各因素的影響大小,所以需對其再進行方差分析來確定。
2.3.2 正交結(jié)果方差分析 分別以吸光度值A660和抑菌圈大小為標準,用SPSS軟件進行方差分析,統(tǒng)計各因素對優(yōu)化培養(yǎng)基配比影響的顯著性結(jié)果。方差分析結(jié)果如表6和表7所示。
由表6、表7分析比較得知,以吸光度A660為衡量指標,各因素水平之間并沒有顯著性差異;相比較,各因素水平對抑菌圈的影響較大,因此,在選擇水平的時候,將對抑菌圈的影響作為主要因素考慮。
表5 正交結(jié)果的極差分析
表6 依靠A660的方差分析結(jié)果
由表7可知,以抑菌圈大小為指標,因素A對拮抗菌的生長有顯著性的影響,各因素影響大小順序為:A>F>B>E>D>C,極差表中分析得到最優(yōu)組合為A2B2C2D1E1F1;表6中反映的影響順序為:B>A>D>C>E>F,分析得到最優(yōu)組合為:A2B3C2D2E3F1。綜合極差分析及方差分析可以得出,因素A,B,D無論是對拮抗菌的吸光度值,還是抑菌圈大小都產(chǎn)生了較為穩(wěn)定的影響,同時,因素A,B表現(xiàn)出了顯著的促進作用,而因素C,E則無顯著影響,從而確定玉米粉液體培養(yǎng)基的最優(yōu)組合為A2B3C2D2E1F1,即玉米粉150.0 g/L、糖化酶1.1 g/L、α-淀粉酶1.5 g/L、CO(NH2)25.0 g/L、KH2PO45.0 g/L。
表7 依靠抑菌圈大小的方差分析結(jié)果
本試驗通過對比,篩選出紅提葡萄白腐病拮抗菌PT2′與廣譜拮抗菌株QM34混合培養(yǎng)的最佳培養(yǎng)基,并且利用SPSS軟件的分析,確定了最佳培養(yǎng)基的最優(yōu)組合,這為今后工業(yè)上大規(guī)模生產(chǎn)發(fā)酵打下了基礎。
同時通過查閱文獻,在混合菌株的培養(yǎng)基中加入少量的MnS,以期提高混合菌株的拮抗能力。試驗結(jié)果表明,MnS確實可以提高混合菌液的抑菌能力,但是對其中的菌量并沒有顯著影響,具體原因還有待進一步深入研究。
[1]曉雪.美國紅提葡萄栽培技術[J].致富之友,2005(4):45.
[2]郝云風,史有國,樊俊峰,等.美國紅提葡萄快速育苗技術[J].內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)科技,2001(4):9.
[3]王森.紅地球葡萄主要病原菌的發(fā)生與綜合防治[J].中外葡萄與葡萄酒,2002(1):43-44.
[4]Pearson RC,Goheen AC(美).葡萄病害防治[M].陳捷,楊偉綱,譯.沈陽:遼寧科學技術出版社,1992:37-41.
[5]張中山.紅提葡萄栽培技術及病害防治 [J].河南農(nóng)業(yè),2009(1):36.
[6]杜東奇.紅提葡萄病害防治中存在的問題及對策[J].山西果樹,2007,3(2):34-35.
[7]劉志恒.葡萄白腐病[J].新農(nóng)業(yè),2003(10):36-37.
[8]趙奎華,陶承光,劉長遠.葡萄病蟲害原色圖鑒[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2006.
[9] Guetsky R,Shtienberg D,Elad Y,et al.Improving biological control by combiningbiocontrolagentseach with severalmechanisms of disease suppression[J].Phytopathology,2002,92:976-985
[10]吳艷,陶晶.芽孢桿菌組合CL-8發(fā)酵條件優(yōu)化及其防病效能研究[J].農(nóng)業(yè)工程學報,2008,24(7):204-208.