康燕燕 唐莉莉 石磊 陳海龍 林南靜 馬興元
華東理工大學(xué)生物工程學(xué)院應(yīng)用生物學(xué)系,上海 200237
重組蛋白TATm-Survivin(T34/117A)對(duì)乳腺癌細(xì)胞周期變化與凋亡的影響
康燕燕 唐莉莉 石磊 陳海龍 林南靜 馬興元
華東理工大學(xué)生物工程學(xué)院應(yīng)用生物學(xué)系,上海 200237
背景與目的:Survivin是一個(gè)抗凋亡、促增殖的雙功能基因,且高表達(dá)于多種惡性腫瘤和轉(zhuǎn)化組織中,使其成為抗腫瘤藥物研究的新靶點(diǎn)。本研究觀察經(jīng)點(diǎn)突變的重組蛋白藥物TATm-Survivin(T34/117A)處理乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37后,對(duì)乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37細(xì)胞周期和增殖的影響,檢測(cè)其對(duì)癌細(xì)胞促凋亡且抑制增殖的藥效并初步探討其分子機(jī)制。方法:重疊PCR法在TATm-Survivin(T34A)基因上引入突變位點(diǎn)Thr117→Ala117,MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖;流式細(xì)胞術(shù)分析細(xì)胞凋亡和細(xì)胞周期及線粒體膜電位變化;Western blot檢測(cè)Aurora B激酶底物Histone H3的磷酸化水平和Caspase-3激活情況。結(jié)果:TATm-Survivin(T34/117A)蛋白對(duì)B-Cap-37細(xì)胞的增殖有顯著的抑制作用;作用24 h后,細(xì)胞被阻滯在G0/G1期,G0/G1期細(xì)胞由對(duì)照組的(54.1±6.1)%顯著增加到(62.7±5.1)%(P<0.05),作用48 h后,細(xì)胞被阻滯在G2/M期,G2/M細(xì)胞由對(duì)照組的(16.6±8.9)%顯著增加到(24.0±6.0)%;Aurora B激酶活性通過(guò)Histone H3的磷酸化水平間接反映,蛋白藥物處理48 h后p-Histone H3的灰度值由對(duì)照組的100%降低到89.8%(P<0.05);48 h時(shí),細(xì)胞線粒體膜電位由對(duì)照組的(649.9±8.0)%顯著降低到(582.9±15.6)%(P<0.05);細(xì)胞凋亡率由對(duì)照組的(4.6±0.7)%顯著增加到(42.7±0.5)%(P<0.01),與對(duì)照相比,不同濃度的重組蛋白均激活了Caspase-3。結(jié)論:重組蛋白TATm-Survivin(T34/117A)對(duì)乳腺癌B-Cap-37具有抑制增殖、促凋亡作用,其與降低Aurora B激酶的活性,并激活Caspase-3相關(guān)。
TATm-Survivin(T34/117A); 點(diǎn)突變; 乳腺癌; 周期阻滯; 凋亡
Survivin是哺乳動(dòng)物細(xì)胞中凋亡抑制因子(inhibitor of apoptosis protein,IAP)家族最小的成員,高表達(dá)于原發(fā)性乳腺癌和結(jié)腸癌等多種腫瘤細(xì)胞中,但在正常細(xì)胞和組織中卻很少能檢測(cè)到[1-2]。Survivin又是染色體乘客蛋白(chromosomal passenger complex,CPC)的成員,參與細(xì)胞周期調(diào)控,是一個(gè)有絲分裂調(diào)控子。Survivin作為一個(gè)獨(dú)特的雙功能蛋白且擁有在腫瘤組織中選擇性表達(dá)的特性,已成為腫瘤治療的新靶點(diǎn),以此為靶點(diǎn)的抗癌藥物研究已成為國(guó)內(nèi)外研究的熱點(diǎn)。
目前,以Survivin為靶點(diǎn)的抗癌藥物設(shè)計(jì)多以基因治療為主,主要是抑制Survivin抗凋亡并促癌細(xì)胞生存的功能,包括Survivin反義寡核苷酸、siRNA、反義RNA及負(fù)顯性突變等。Tu等[3]構(gòu)建的病毒介導(dǎo)的Survivin突變體能導(dǎo)致癌細(xì)胞凋亡、周期分裂失調(diào),并抑制血管生成和腫瘤生長(zhǎng)。但在蛋白水平,因?yàn)镾urvivin既不是激酶也不是細(xì)胞表面蛋白,所以用小分子或抗體作用該靶點(diǎn)有困難。Ma等[4]獲得了由突變型HIV-TAT跨膜肽介導(dǎo)的,以Survivin為藥靶的促癌細(xì)胞凋亡的重組蛋白藥物HIV-TAT-m-Survivin(T34A)。
本研究根據(jù)Survivin獨(dú)特的生物功能,在本實(shí)驗(yàn)室HIV-TAT-m-Survivin(T34A)的研究基礎(chǔ)上[4],將與細(xì)胞增殖調(diào)控相關(guān)的關(guān)鍵活性位點(diǎn)117位氨基酸進(jìn)行正確突變,以阻止Aurora B激酶對(duì)該位點(diǎn)的磷酸化,構(gòu)建表達(dá)載體pRSET-TATm-Survivin(T34/117A),在大腸埃希菌表達(dá)純化后,以乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37為受檢細(xì)胞,檢測(cè)重組蛋白對(duì)乳腺癌細(xì)胞周期變化與凋亡的影響。
B-Cap-37細(xì)胞購(gòu)買于上海腫瘤特殊項(xiàng)目檢測(cè)中心。受體菌DH5α和BL2I(DE3)由本實(shí)驗(yàn)室保存。pRSET-B-TATm-Survivin(T34A)為本實(shí)驗(yàn)室已構(gòu)建質(zhì)粒[4]。
限制性內(nèi)切酶、T4 DNA連接酶、IPTG、DL-2000 DNA Marker等購(gòu)自日本Takara公司,陽(yáng)離子交換介質(zhì)SP Sepharose FF購(gòu)自美國(guó)Amersham pharmacia公司,噻唑蘭(MTT)、碘化丙啶(PI)、羅丹明123購(gòu)自美國(guó)Sigma公司,Annexin V assay Kit購(gòu)自美國(guó)Clontech公司,β-actin、Survivin、Actived-Caspase-3、p-Histone H3.1(S10)抗體購(gòu)自美國(guó)BioVision公司;化學(xué)發(fā)光試劑盒LumiGlo購(gòu)自美國(guó)Cell Signaling公司。
緩沖液A:包涵體洗滌液,2 mol/L Urea,20 mmol/L PB緩沖液,pH=6.5;緩沖液B:平衡緩沖液,20 mmol/L PB緩沖液,pH=6.5;緩沖液C:上柱平衡液,8 mol/L Urea,20 mmol/L PB緩沖液,pH=6.5;緩沖液D:蛋白洗脫液,20 mmol/L PB緩沖液,0.5 mol/L NaOH,pH=6.5。
以pRSET-B-TATm-Survivin(T34A)為基礎(chǔ)質(zhì)粒,依據(jù)《精編分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》中以引物重疊-延伸為基礎(chǔ)的重疊PCR法[5],利用3步PCR在Thr117位引入突變位點(diǎn)Ala117(Thr117→Ala117),構(gòu)建為質(zhì)粒pRSET-B-TATm-Survivin(T34/117A),酶切鑒定并測(cè)序。突變體亞克隆引物:Psur1:5’-ATATGGATCCATGGGTGCCCCGACGTT-3’(BamHⅠ),Psur2:5’-GTTCTCGAGTCAATCCATGGCAGCC-3’(XhoⅠ),突變點(diǎn)引入引物Pm1:5’-AATTGCAAAGGAAGCCAACAATAAGAAGAAAG-3’,Pm2:5’-CTTTCTTCTTATT GTTGGCTTCCTTTGCAATT-3’。
將轉(zhuǎn)化有BL21(DE3)/pRSET-B-TATm-Survivin(T34/117A)的大腸埃希菌過(guò)夜培養(yǎng)后按2%接種于LB/Ampicilin(100 μg/mL)培養(yǎng)基中,37 ℃搖瓶發(fā)酵,至A600達(dá)0.8左右,加入終濃度為0.75 mmol/L的IPTG誘導(dǎo)表達(dá),培養(yǎng)5 h后500×g離心20 min收菌。
4℃冰浴條件下超聲破碎菌體,8 000×g離心后所得包涵體用緩沖液B進(jìn)行4次洗滌,緩沖液C溶解,8 000×g4℃離心20 min后,上清液即為含有變性蛋白的上柱樣品。將上述樣品過(guò)SP Sepharose FF陽(yáng)離子交換柱進(jìn)行交換吸附。交換柱依次由緩沖液B、C平衡10~15個(gè)柱體積,上樣20 μg/mL(總蛋白/柱床體積)。100%~0%緩沖液C梯度柱上復(fù)性,流速1 mL/min,至無(wú)蛋白流出。緩沖液D洗脫目標(biāo)蛋白,流速3 mL/min。收集目標(biāo)峰,透析除鹽,超濾濃縮,Bradford法測(cè)定濃度。
將待檢蛋白樣品同標(biāo)準(zhǔn)分子量蛋白一起進(jìn)行15%SDS-PAGE電泳[6]。電泳上樣時(shí)在電泳膠上左右對(duì)稱上樣,中間加標(biāo)準(zhǔn)相對(duì)分子質(zhì)量蛋白,電泳結(jié)束后把膠從中間分割開(kāi),左一半膠用考馬斯亮藍(lán)R-250染色,右一半膠用于Western blot轉(zhuǎn)印。將轉(zhuǎn)印好的PVDF膜置于含封閉緩沖液(5%脫脂牛奶溶于TPBS)的玻璃大平皿中,室溫漂洗2 h,然后棄去封閉液,加入兔抗人Survivin多克隆抗體(一抗,用TPBS稀釋800倍),室溫下漂洗1 h,再用TPBS緩沖液洗滌PVDF膜3次,每次漂洗10 min,加入山羊抗兔抗體(二抗,用PBST稀釋5 000倍)。室溫漂洗1 h,用PBST漂洗2次,每次10 min,最后用紅外掃膜儀掃描拍照,利用Smart(Bio-Rad)軟件分析目的蛋白的表達(dá)情況與純化復(fù)性后的純度。
胰酶消化并收集細(xì)胞,6孔板中每孔細(xì)胞加入200μL裂解液,漩渦振蕩器裂解細(xì)胞。水煮沸細(xì)胞裂解液10 min后,-20 ℃保存。采用Bradford方法測(cè)定蛋白濃度[6]。行常規(guī)Western blot,最后掃描獲取灰度值,以目的蛋白與β-actin灰度值之比作為蛋白的相對(duì)表達(dá)量。
用含50%乙腈的25 mmol/L PB緩沖液(pH:3.1)平衡毛細(xì)管(總長(zhǎng)度/有效長(zhǎng)度25/15 cm)2 min,將純化后蛋白樣品以0.5 mg/mL濃度進(jìn)樣[6]。
乳腺癌B-Cap-37細(xì)胞在DMEM培養(yǎng)基(含10%小牛血清、100 μg/mL青霉素和100 μg/mL鏈霉素)、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%、37 ℃飽和濕度的條件下培養(yǎng)。對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的B-Cap-37細(xì)胞胰酶消化后接種于96孔板,每孔1×104個(gè)細(xì)胞。待細(xì)胞50%~60%匯聚時(shí),加入TATm-Survivin(T34/117A)重組蛋白(終濃度依次為0、70.0、91.0、118.3、153.8、199.9 μg/mL),另設(shè)調(diào)零孔和只加相同緩沖液的對(duì)照孔,每個(gè)處理6個(gè)復(fù)孔。培養(yǎng)24、48、72 h后加入MTT液(5 mg/mL)20 μL,37 ℃溫育4 h后棄上清液,加入DMSO 150 μL/孔,測(cè)定A495值。以藥物濃度為橫坐標(biāo)軸,通過(guò)計(jì)算重組蛋白作用后的細(xì)胞存活率來(lái)反映細(xì)胞的增殖情況,并計(jì)算藥物對(duì)細(xì)胞作用48 h后的半抑制濃度(IC50)。
參考《實(shí)用流式細(xì)胞術(shù)彩色圖譜》中的方法[7],用胰酶(0.25%)消化并收集經(jīng)TATm-Survivin(T34/117A)蛋白藥物處理24、48 h的細(xì)胞,預(yù)冷PBS洗1次后加入3倍體積預(yù)冷的70%乙醇固定,-20℃保存過(guò)夜。檢測(cè)前用預(yù)冷PBS洗滌細(xì)胞1次,調(diào)整細(xì)胞懸液密度為5×105/mL,取100 μL細(xì)胞懸液加入400 μL含有50 μg/mL PI、50 μg/mL RNase A的PBS溶液。37 ℃避光處理30 min,流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞周期。
收集經(jīng)TATm-Survivin(T34/117A)蛋白藥物處理48 h并消化的細(xì)胞,以終濃度為10 μg/mL的羅丹明123(Rho123)處理細(xì)胞,37 ℃避光處理30 min,150×g離心5 min去上清液,預(yù)冷PBS洗2次后,0.5 mL PBS重懸,立即用流式細(xì)胞儀分析線粒體膜電位變化[7-8]。
收集經(jīng)TATm-Survivin(T34/117A)蛋白藥物處理48 h并消化的細(xì)胞,按AnnexinV- FITC/PI凋亡檢測(cè)試劑盒說(shuō)明書處理細(xì)胞,1 h內(nèi)流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞凋亡。
數(shù)據(jù)均用表示,多組樣本間均值比較采用單因素方差分析,如果差異顯著,進(jìn)行多重比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
用特異性引物對(duì)Psur1與Pm2、Psur2與Pm1,以pRSET-B-TATm-Survivin(T34A)為模板,PCR擴(kuò)增出2條約340 bp(圖1A)和90 bp(圖1B)條帶,與預(yù)期大小相符,回收目的條帶。再以Psur1與Psur2引物對(duì),以340和90 bp片段混合物互為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,連接2個(gè)片段,所得全序列為429 bp (圖1C),突變位點(diǎn)為Thr117→Ala117,質(zhì)粒構(gòu)建后經(jīng)酶切鑒定及測(cè)序結(jié)果均正確(圖2、3)。
小批量搖瓶發(fā)酵,37 ℃、0.75 mmol/L IPTG誘導(dǎo)5 h后收集菌體,經(jīng)SDS-PAGE和Smart(Bio.rad)軟件分析目的蛋白的表達(dá)量,最高可達(dá)菌體總蛋白的35%。目的蛋白經(jīng)過(guò)4次洗滌并行陽(yáng)離子柱交換后純度達(dá)98%,透析除鹽并超濾濃縮,最終可獲得終濃度為2 mg/mL的經(jīng)復(fù)性處理的重組蛋白。
樣品經(jīng)SDS-PAGE及毛細(xì)管電泳,發(fā)現(xiàn)純化復(fù)性后的蛋白樣品中含2種相對(duì)分子質(zhì)量不同的蛋白(圖4A),經(jīng)Western blot證實(shí)2條帶均為Survivin蛋白(圖4B)。根據(jù)毛細(xì)管電泳原理斷定,20.1×103附近的條帶為TATm-Survivin(T34/117A)單體,43×103附近的條帶為TATm-Survivin(T34/117A)二聚體形式(圖4C)。
不同濃度TATm-Survivin(T34/117A)作用24、48和72 h后,B-Cap-37細(xì)胞存活率呈現(xiàn)時(shí)間和濃度依賴性下降。藥物濃度為153.8 μg/mL,在48 h時(shí),TATm-Survivin(T34A)對(duì)細(xì)胞抑制率為25.45%,TATm-Survivin(T34/117A)對(duì)細(xì)胞抑制率為33.5%;在72 h時(shí), 兩種蛋白對(duì)B-Cap-37細(xì)胞的抑制率分別為33.4%和45.8% (圖5)。藥物作用48 h的IC50為(180.5±5.3) μg/mL。
表1所示,當(dāng)?shù)鞍姿幬餄舛确謩e為0、60、90、150、180 μg/mL時(shí),作用24 h后,TATm-Survivin(T34/117A)使乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37阻滯在G0/G1期,且這種阻滯具有劑量依賴性。與對(duì)照(0 μg/mL)相比,隨藥物濃度的增加,G0/G1期細(xì)胞所占的比例由(54.1±6.1)% 顯著增加到(62.7±5.1)%(P<0.05),S期細(xì)胞所占比例由(28.4±0.1)%顯著降低到(15.8±0.8)%(P<0.05),而G2/M期細(xì)胞比例無(wú)顯著性變化。作用48 h后,細(xì)胞被阻滯在G2/M期,G2/M細(xì)胞所占比例由(16.6±8.9)%顯著增加到(24.0±6.0)%,G0/G1期細(xì)胞所占比例由(59.8±4.7)% 下降到了(50.2±5.1)%,與對(duì)照相比差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),S期細(xì)胞所占比例仍呈降低趨勢(shì),但與對(duì)照相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
表 1 PI單染檢測(cè)TATm-Survivin(T34/117A)(μg/ml)對(duì)乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37周期的影響Tab. 1 Flow cytometric data showing the effect of TATm-Survivin (T34/117A) protein on cell cycle to B-Cap-37
Histone H3是Aurora B激酶的磷酸化底物,可通過(guò)檢測(cè)Histone H3磷酸化程度間接反映Aurora B激酶的活性[9]。如圖6A所示,不同濃度的重組蛋白作用B-Cap-37細(xì)胞24和48 h后,與對(duì)照相比,其Ser10位磷酸化的Histone H3灰度值顯著降低(P<0.05) (圖6B),表明Aurora B激酶活性有顯著降低,且48 h相比24 h,Histone H3磷酸化程度更低,但不同的蛋白藥物濃度之間對(duì)Aurora B激酶活性的影響差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
隨蛋白藥物濃度的增加,羅丹明123的熒光曲線逐漸左移,表明其強(qiáng)度逐漸降低,與0 μg/mL相比,當(dāng)?shù)鞍诐舛葹?00 μg/mL時(shí),線粒體膜電位由(649.9±7.8)% 顯著降低到(582.9±15.6)%(圖7)。說(shuō)明TATm-Survivin(T34/117A)影響了B-Cap-37細(xì)胞的線粒體膜電位。
不同濃度TATm-Survivin(T34/117A)蛋白藥物作用細(xì)胞48 h后,流式細(xì)胞術(shù)分析細(xì)胞凋亡見(jiàn)圖8A,濃度0、100、200、300 μg/mL所對(duì)應(yīng)的凋亡率分別為(4.6±0.7)%、(10.8±0.6)%、(23.9±0.8)%(P<0.05)和(42.7±0.5)%(P<0.01)(圖8B),蛋白藥物對(duì)細(xì)胞凋亡率影響呈濃度依賴性。
TATm-Survivin(T34/117A)重組蛋白激活了Caspase-3,且與對(duì)照(0 μg/mL)相比,不同濃度的重組蛋白作用B-Cap-37細(xì)胞24和48 h后,被激活的Caspase-3表達(dá)量均明顯增強(qiáng),但不同濃度的藥物之間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖9)。
本研究設(shè)計(jì)了含雙負(fù)顯性突變位點(diǎn)并連接有具高效跨膜結(jié)構(gòu)域HIV-TATm的Survivin突變體,阻滯了Survivin在34位和117位的磷酸化,將其在大腸埃希菌中表達(dá)后,通過(guò)柱上復(fù)性和離子交換分離獲得了高純度的重組蛋白藥物TATm-Survivin(T34/117A),它可使乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37阻滯在G0/G1期和G2/M期,從而抑制乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37的增殖;重組蛋白同時(shí)降低線粒體膜電位,通過(guò)激活Caspase-3誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。本研究獲得了一種新的以Survivin為靶標(biāo)的重組蛋白藥物,體外研究結(jié)果顯示,其有候選抗乳腺癌藥物的應(yīng)用前景。
Survivin作為CPC成員之一,既是CPC核心成員Aurora B激酶的磷酸化底物[10],也是Aurora B的正調(diào)控分子,可反饋性提高Aurora B的活性[11]。有研究證實(shí),Aurora B激酶可在第10位絲氨酸磷酸化Histone H3,磷酸化的Histone H3(S10)不僅與染色體濃縮和染色體分離有關(guān),而且涉及激活近著絲粒異染色質(zhì)[12-13]。在爪蟾和哺乳動(dòng)物細(xì)胞中都發(fā)現(xiàn)干擾Survivin后,Histone H3磷酸化水平降低[14-15]。本研究將Survivin Thr117位突變?yōu)锳la117后,抑制了Aurora B激酶對(duì)Survivin117位的磷酸化,使細(xì)胞阻滯在G0/G1期和G2/M期,抑制了細(xì)胞增殖。
細(xì)胞凋亡在維持機(jī)體內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定有重要作用,而癌細(xì)胞的重要標(biāo)志是逃脫細(xì)胞凋亡而無(wú)限增殖。Survivin是抗凋亡家族成員中最特殊、抗凋亡功能最強(qiáng)的新成員。目前的研究表明,Survivin可能通過(guò)線粒體路徑實(shí)現(xiàn)抗凋亡功能,通過(guò)直接或間接抑制凋亡終末效應(yīng)分子Caspase-3、 Caspase-7,最終抑制細(xì)胞凋亡[16-17]。在轉(zhuǎn)基因動(dòng)物實(shí)驗(yàn)上顯示,Survivin定位于線粒體上,并且與上游的Caspase-9和凋亡刺激因子(SMACE/DIABLO)相互作用,最后影響終端效應(yīng)子Caspase-3、Caspase-7的活性,使細(xì)胞發(fā)生凋亡。Mesri等[18]采用編碼Survivin(Thr34Ala)突變體的復(fù)制缺陷性腺病毒載體阻止了p34cdc2-cyclin B1對(duì)Survivin的磷酸化,激發(fā)了細(xì)胞線粒體凋亡途徑并抑制了荷瘤小鼠腫瘤的生長(zhǎng)。本研究中Survivin Thr34突變?yōu)锳la34后線粒體膜電位顯著下降,并激活了凋亡執(zhí)行因子Caspase-3,最終誘導(dǎo)了細(xì)胞凋亡。
通過(guò)Thr117突變獲得的重組蛋白TATm-Survivin(T34/117A)抑制了Aurora B激酶活性,導(dǎo)致細(xì)胞周期發(fā)生阻滯,抑制了細(xì)胞增殖,并通過(guò)Caspase-3途徑誘導(dǎo)乳腺癌細(xì)胞B-Cap-37凋亡。研究結(jié)果提示,TATm-Survivin(T34/117A)降低了線粒體膜電位,誘導(dǎo)了細(xì)胞凋亡,其是否引發(fā)細(xì)胞色素C的釋放,激活了細(xì)胞線粒體凋亡途徑,有待進(jìn)一步的研究。
[1]Altieri DC. The molecular basis and potential role of survivin in cancer diagnosis and therapy [J]. Trends Mol Med,2001, 7(12): 542-547.
[2]J??ttel? M. Escaping cell death: survival proteins in cancer[J]. Exp Cell Res, 1999, 248(1): 30-43.
[3]Tu SP, Cui JT, Liston P, et al. Gene therapy for colon cancer by adeno-associated viral vector-mediated transfer of survivin Cys84Ala mutant [J]. Gastroenterology, 2005, 128(2): 361-375.
[4]Ma XY, Zheng WY, Wei DZ, et al. Preparation of recombinant HIV-TATm-survivin (T34A) protein and its pro-apoptosis activity to cancer cells in vitro [J]. Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao, 2006, 22(2): 285-292.
[5]F. M, 奧斯伯, R. E. 金斯頓, J. G. 賽斯曼. 精編分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)指南(第四版)[M]. 馬學(xué)軍, 舒躍龍, 譯校. 北京: 科學(xué)出版社, 2005, 105-108.
[6]汪家政, 范明. 蛋白質(zhì)技術(shù)手冊(cè)[M], 北京: 科學(xué)出版社,2002, 77-166.
[7]王書奎, 周振英. 實(shí)用流式細(xì)胞術(shù)彩色圖譜[M], 上海:第二軍醫(yī)大學(xué)出版社, 2004, 36-42.
[8]Chen W, Zhao Z, Li L, et al. Hispolon induces apoptosis in human gastric cancer cells through a ROS-mediated mitochondrial pathway [J]. Free Radic Biol Med, 2008,45(1): 60-72.
[9]Kim KW, Mutter RW, Willey CD, et al. Inhibition of survivin and aurora B kinase sensitizes mesothelioma cells by enhancing mitotic arrests [J]. Int J Radiat Oncol Biol Phys,2007, 67(5): 1519-1525.
[10]Wheatley SP, Henzing AJ, Dodson H, et al. Aurora-B phosphorylation in vitro identifies a residue of survivin that is essential for its localization and binding to inner centromere protein (INCENP) in vivo[J]. J Biol Chem, 2004, 279(7):5655-5660.
[11]Bolton MA, Lan W, Powers SE, et al. Aurora B Kinase exists in a complex with survivin and INCENP and its kinase activity is stimulated by survivin binding and phosphorylation [J].Mol Bio Cell, 2002, 13(9): 3064-3077.
[12]Wei Y, Yu L, Bowen J, et al. Phosphorylation of histone H3 is required for proper chromosome condensation and segregation[J]. Cell, 1999, 97: 99-109.
[13]Hendzel MJ, Wei Y, Mancini MA, et al. Mitosis-specific phosphorylation of histone H3 initiates primarily within pericentromeric heterochromatin during G2 and spreads in an ordered fashion coincident with mitotic chromosome condensation [J]. Chromosoma, 1997, 106(6): 348-360.
[14]Chen J, Jin S, Tahir SK, et a1. Survivin enhances Aurora B kinase activity and localizes Aurora-B in human cells [J].J Biol Chem, 2003, 278(1): 486-490.
[15]Bolton MA, Lan W, Powers SE, et a1. Aurora B kinase exists in a complex with survivin and INCENP and its kinase activity is stimulated by survivin binding and phosphorylation [J].Mol Biol Cell, 2002, 13(9): 3064-3077.
[16]Shin S, Sung BJ, Cho YS, et al An anti-apoptotic protein human survivin is a direct inhibitor of caspase-3 and -7 [J].Biochemistry, 2001, 40(4): 1117-1123.
[17]O’Connor DS, Grossman D, Plescia J, et al. Regulation of apoptosis at cell division by p34cdc2 phosphorylation of survivin [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2000, 97(24):13103-13107.
[18]Mesri M, Wall NR, Li J, et a1. Cancer gene therapy using a Survivin mutant adenovirus [J]. J Clin Invest, 2001, 108(7):981-990.
Effects of recombinant protein TATm-Survivin(T34/117A) on cell cycle and apoptosis of B-Cap-37 cell
KANG Yan-yan,TANG Li-li,SHI Lei,CHEN Hai-long,LIN Nan-jing,MA Xing-yuan(Department of Applied Biology, School of Biotechnology of East China University of Science and Technology, Shanghai 200237,China)
MA Xing-yuan E-mail:maxy@ecust.edu.cn
Background and purpose:Survivin is a bifunctional gene in both antiapoptosis and proproliferation and is also highly expressed in many malignant tumors and transformed cells. This makes it an attractive target for anti-cancer drug development. This study investigated the effects of the recombinant protein TATm-Survivin(T34/117A) on cell cycles and the apoptosis of breast cancer cell B-Cap-37, as well as explored the overall molecular mechanism.Methods:Thr117 was replaced by Ala117 on TATm-Survivin (T34A) by overlapping PCR. The B-Cap-37 cells were treated by purified TATm-Survivin (T34/117A). The MTT method was used to observe the cell proliferation process. Flow cytometry assay was used to analyze the cell cycle, apoptosis and mitochondrial membrane potential.Western blot was used to determine the phosphorylation level of Histone H3, a substrate of Aurora B kinase, as well as the expression of activated Caspase-3.Results:TATm-Survivin (T34/117A) significantly inhibited the proliferation of B-Cap-37 cells. After 24 hours of treatment, the cells arrested in the G0/G1phase(62.7±5.1)% as compared with the control group (54.1±6.1)%(P<0.05). After 48 hours, the cells significantly arrested in the G2/M phase (24.0±6.0)% as compared with the control group (16.6±8.9)%(P<0.05). Compared with the control group, the gray intensity in the phosphorylation levels of Histone H3 in the treated cells was significantly down to 89.8% (P<0.05). Apoptosis rates increased significantly, from (4.6±0.7) % in the control to (42.7±0.5)%(P<0.01). Meanwhile, mitochondrial membrane potential significantly decreased from (649.9±7.8) % in the control to (582.9±15.6) % (P<0.05) while Caspase-3 was activated.Conclusion:TATm-Survivin (T34/117A) inhibits proliferation and promotes apoptosis of B-Cap-37 cells by reducing the activity of Aurora B kinase while activating Caspase-3.
Recombinant TATm-Survivin(T34/117A); Point mutant; Breast cancer; Cell cycle arrest;Apoptosis
10.3969/j.issn.1007-3969.2011.02.003
R737.9
A
1007-3639(2011)02-0091-08
國(guó)家自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(No:C0304)。
馬興元 E-mail:maxy@ecust.edu.cn
2010-12-06
2011-01-27)