潘 松,付 勇,劉 杰,劉立思△
(1.華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬同濟(jì)醫(yī)院耳鼻咽喉-頭頸外科,湖北 武漢 430030;2.咸寧學(xué)院附屬第一醫(yī)院耳鼻咽喉科,湖北 咸寧 437100;3.浙江大學(xué)附屬第一醫(yī)院耳鼻咽喉科,浙江 杭州 310003)
外周性感音神經(jīng)性聾是一種嚴(yán)重影響人類生活質(zhì)量的疾病,其病因主要是由于耳蝸毛細(xì)胞的損傷引起,而毛細(xì)胞在成年哺乳動物不可自行再生。針對毛細(xì)胞再生的治療方式包括基因治療和細(xì)胞替換治療。基因治療可用于保護(hù)毛細(xì)胞[1]或產(chǎn)生新的毛細(xì)胞[2],細(xì)胞替換治療是利用干細(xì)胞產(chǎn)生新的毛細(xì)胞和聽神經(jīng)。不管是基因治療還是細(xì)胞替換治療,經(jīng)耳蝸行局部顯微注射,將基因和細(xì)胞導(dǎo)入耳蝸是最有效的方式。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)經(jīng)大鼠圓窗導(dǎo)入綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)標(biāo)記的神經(jīng)干細(xì)胞后,可以在前庭階和鼓階發(fā)現(xiàn)GFP的表達(dá),但在血管紋和Corti器無明顯綠色熒光表達(dá)[3-4]。如何將外源性基因或細(xì)胞導(dǎo)入耳蝸Corti器部位,從而更好地發(fā)揮針對Corti器損傷的治療作用。本實驗以此為出發(fā)點(diǎn),通過大鼠耳后切開手術(shù)進(jìn)路,經(jīng)耳蝸中階側(cè)壁顯微注射攜帶增強(qiáng)型綠色熒光蛋白基因(enhanced green fluorescent protein,EGFP)的慢病毒,并觀察其在耳蝸的表達(dá)情況,為后續(xù)的經(jīng)耳蝸中階導(dǎo)入以慢病毒為載體的基因治療提供實驗基礎(chǔ)?,F(xiàn)報道如下。
1.1 材料 攜帶EGFP的慢病毒購于上海比昂公司,病毒滴度為2×108TU/m L。人工內(nèi)淋巴液參照文獻(xiàn)[5]配置,NaCl 1 m M ,KCl 126 m M ,KHCO325 m M ,M gCl20.025 mM ,CaCl20.025 m M,K2HPO41.4 m M。
1.2 動物分組 健康SD大鼠12只,雄性,體質(zhì)量250~300 g,由華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院實驗動物中心提供,耳廓反射正常,聽性腦干反應(yīng)(auditory brainstem response,ABR)檢查示雙耳聽力正常。將大鼠隨機(jī)分為兩組:實驗組6只,經(jīng)耳蝸中階側(cè)壁行EGFP慢病毒顯微注射;對照組6只,經(jīng)耳蝸中階側(cè)壁行人工內(nèi)淋巴液顯微注射。
1.3 動物手術(shù) 大鼠用氯胺酮(40 mg/kg)和氯丙嗪(15 mg/kg)行大腿肌肉注射麻醉后,取頭上腳下位側(cè)俯臥于自制加熱平板上并維持溫度在37℃左右,頭偏右側(cè)使左耳向上。行耳后備皮后,碘伏消毒,手術(shù)器械術(shù)前經(jīng)高溫滅菌消毒。沿耳廓后溝2 mm處4點(diǎn)到7點(diǎn)的位置弧形剪開皮膚及皮下組織,向下分離腺體后剪開頸闊肌,用自制拉鉤拉開切口,向深處鈍性分離可見胸鎖乳突肌,向上牽開胸鎖乳突肌后,可見面神經(jīng)和二腹肌后腹(封2圖1a);向后分離并牽開二腹肌后腹,在面神經(jīng)和二腹肌圍成的三角區(qū)域內(nèi)向深處分離并去除聽泡外側(cè)壁覆蓋的軟組織和筋膜,可暴露聽泡外側(cè)壁(封2圖1b);沿聽泡后外側(cè)磨除骨壁并擴(kuò)大,可暴露鐙骨動脈、圓窗龕、耳蝸外側(cè)壁(封2圖1c);在耳蝸底周外側(cè)壁色素沉著區(qū),盡量遠(yuǎn)離鐙骨動脈和便于操作處確定開孔口,用三棱針穿破耳蝸中階外側(cè)壁骨質(zhì),再用細(xì)塢針穿破內(nèi)壁軟組織膜,可見少許血液和清亮的淋巴液流出,將微量操縱器上固定的玻璃微電極導(dǎo)入開孔口,用5 min將EGFP慢病毒或人工內(nèi)淋巴液5μL緩慢注入耳蝸中階(封2圖1d);完成后以自體小塊頸闊肌覆蓋,再用牙科水門汀覆蓋頸闊肌,封閉耳蝸開孔口,行中耳腔碘伏清洗消毒后,用少許明膠海綿填塞中耳腔;復(fù)位肌肉和軟組織,分層縫合切口。縫合口處以乙醇消毒。待大鼠清醒后,回籠中喂養(yǎng)。術(shù)后肌注青霉素20萬IU/d,連續(xù)3 d。
1.4 ABR檢測 于動物手術(shù)前和手術(shù)后3周在動物處死前行ABR測試。采用Nicolet Compass系統(tǒng),刺激聲為短聲,時程0.1 ms,重復(fù)率為 11.1次/秒,濾波帶寬 150~2000 Hz,疊加1000次,掃描周期10 ms。采用銀絲電極,正極插入頭頂正中皮下,參考電極插入檢測耳頜面部皮下,地極電極插入對側(cè)耳頜面部皮下。刺激聲經(jīng)插入式耳塞給入,給聲策略采用升10降5法;以Ⅲ波消失的刺激強(qiáng)度確定閾值,并要求至少能重復(fù)1次。
1.5 標(biāo)本取材和制備 術(shù)后3周,待ABR檢測完后,將兩組大鼠斷頭立即取出耳蝸,挑開蝸尖、前庭窗和蝸窗,從蝸尖灌注4%多聚甲醛至無血性物流出,并在4%多聚甲醛中4℃下固定過夜,再以20%EDTA脫鈣2周后,20%蔗糖脫水,OCT包埋,沿蝸軸水平行冰凍切片。整個過程注意避光操作。
1.6 熒光顯微鏡觀察 切片以PBS洗3遍,20%甘油封片,在熒光顯微鏡下觀察、拍照。
1.7 統(tǒng)計學(xué)方法 全部數(shù)據(jù)經(jīng)SPSS16.0統(tǒng)計軟件處理,結(jié)果以表示。ABR閾值比較采用配對 t檢驗。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 大鼠的一般情況 兩組術(shù)中、術(shù)后均無動物死亡。術(shù)后大鼠無明顯歪頭、斜頸、行走不穩(wěn)、面癱、食欲減退及切口感染等癥狀。術(shù)后3周手術(shù)耳聽泡打開后未見化膿感染,明膠海綿有少量殘余,耳蝸開窗處可見白色的牙科水門汀封閉,未見明顯異常。
2.2 ABR閾值的變化 手術(shù)后實驗組大鼠的手術(shù)耳ABR閾值提高(55.8±4.9)dB SPL;對照組大鼠的手術(shù)耳ABR閾值提高(56.7±6.1)d B SPL;兩組大鼠手術(shù)耳的ABR閾值比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);兩組大鼠的非手術(shù)耳在手術(shù)前、后ABR閾值無明顯變化;兩組大鼠的手術(shù)耳,在手術(shù)后聽力均高于手術(shù)前,且差異有統(tǒng)計學(xué)意義(表1)。
表1 兩組大鼠手術(shù)前、后ABR(click)閾值(dB SPL)
2.3 耳蝸內(nèi)EGFP慢病毒的表達(dá) 在熒光顯微鏡下可見,術(shù)后3周實驗組可見耳蝸內(nèi)有EGFP的綠色熒光表達(dá),其主要位于耳蝸中階的血管紋邊緣細(xì)胞、Corti器、螺旋神經(jīng)和螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞等部位;對照組的耳蝸內(nèi)無EGFP的綠色熒光表達(dá)(封2圖 2)。
在外周性感音神經(jīng)性聾動物模型的活體實驗中,如何經(jīng)耳蝸快速成功地導(dǎo)入基因或細(xì)胞是實驗的關(guān)鍵。大鼠由于其基因組與人類的同源基因組相似,成為進(jìn)行內(nèi)耳研究的常用對象[6]。另外大鼠的手術(shù)耐受性和抗感染能力均強(qiáng)于小鼠,故本實驗選取大鼠為研究對象。大鼠麻醉對手術(shù)的順利進(jìn)行顯得很重要,氯胺酮和氯丙嗪的復(fù)合麻醉可以維持2 h左右,藥量不可過大,否則可致動物死亡。
在耳蝸基因?qū)胧中g(shù)的進(jìn)路選擇上,國內(nèi)外較多應(yīng)用的是腹側(cè)[7-8]和耳后[9]進(jìn)路。大鼠聽泡的位置較深,腹側(cè)進(jìn)路須經(jīng)過氣管、大的面靜脈和頸動脈分支等結(jié)構(gòu),損傷后均可導(dǎo)致動物術(shù)中、術(shù)后發(fā)生死亡;而耳后進(jìn)路經(jīng)過的重要結(jié)構(gòu)相對較少。本研究采取耳后進(jìn)路,術(shù)中隨時以手指探觸骨性聽泡的位置,切開頸闊肌,向上牽拉胸鎖乳突肌,然后以面神經(jīng)和二腹肌后腹圍成的三角為解剖標(biāo)志,即面神經(jīng)下方、二腹肌后腹的前方,進(jìn)一步向深處分離骨性組織上覆著的軟組織和筋膜,即可暴露聽泡;在聽泡的前方有頸內(nèi)動脈,操作時切勿靠前損傷而導(dǎo)致動物死亡。聽泡開窗時位置選擇靠前外,可避免損傷耳蝸側(cè)壁和鐙骨動脈,開窗的大小以能看見耳蝸底周骨質(zhì)和鐙骨動脈為宜,不宜過大。韓朝和遲放魯[8]報道聽泡打孔的位置選擇在聽泡下壁的前偏外側(cè),與作者觀點(diǎn)一致。
在耳蝸中階外側(cè)壁開孔口的定位上,作者發(fā)現(xiàn)血管紋在耳蝸側(cè)壁上呈現(xiàn)一較明顯的色素沉著區(qū),遂以耳蝸底周外側(cè)壁色素沉著區(qū)為解剖標(biāo)志帶,選取盡量遠(yuǎn)離鐙骨動脈且便于操作處為開孔口,在顯微鏡下將EGFP慢病毒導(dǎo)入耳蝸中階。Iguchi等[10]報道通過觀察耳蝸骨壁色素沉著區(qū),在該部位開孔可將細(xì)胞導(dǎo)入內(nèi)淋巴系統(tǒng),這與作者的觀點(diǎn)一致。本實驗采用的EGFP是一種優(yōu)化的突變型GFP,將64位絲氨酸用蘇氨酸代替,65位苯丙氨酸用亮氨酸代替,使其產(chǎn)生的熒光比野生型GFP強(qiáng)35倍,大大增強(qiáng)了報告分子的靈敏度,該分子的激發(fā)波長為488 nm,發(fā)射波長為507 nm。經(jīng)中階導(dǎo)入后,可以發(fā)現(xiàn)在血管紋邊緣細(xì)胞、Corti器、螺旋神經(jīng)和螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞等部位有EGFP的綠色熒光表達(dá),提示可以通過慢病毒為載體,將外源基因?qū)氲紺orti器部位,更好地發(fā)揮針對Corti器損傷的基因治療。韓朝等[11]報道經(jīng)圓窗入路導(dǎo)入的腺病毒不能感染內(nèi)外毛細(xì)胞和支持細(xì)胞;經(jīng)耳蝸中階側(cè)壁導(dǎo)入的腺病毒,可以感染聽器的支持細(xì)胞和血管紋緣細(xì)胞。
耳蝸側(cè)壁開孔后,對大鼠聽功能產(chǎn)生一定的影響。本研究發(fā)現(xiàn)手術(shù)前、后實驗組大鼠 ABR閾值提高了(55.8±4.9)d B。Bogaerts等[12]報道CBA/CaH小鼠耳蝸側(cè)壁開孔術(shù)后3個月ABR閾值提高了15~45 dB,并認(rèn)為聽力損失與開孔口的大小有關(guān),小的開孔口導(dǎo)致小量的聽力損失,大的開孔口導(dǎo)致大量的聽力損失和術(shù)后轉(zhuǎn)圈行為。Iguchi等[10]報道C57BL/6小鼠耳蝸側(cè)壁開孔術(shù)后聽力損失40~70 dB,而外半規(guī)管開孔導(dǎo)致的聽力損失小于耳蝸側(cè)壁開孔。韓朝等[13]報道通過豚鼠耳蝸中階輸注腺病毒后,ABR閾值為(33.33±11.69)dB。作者發(fā)現(xiàn)經(jīng)耳蝸中階外側(cè)壁導(dǎo)入慢病毒和人工內(nèi)淋巴的大鼠,術(shù)后ABR閾值無明顯差異,提示ABR的閾值增高與導(dǎo)入內(nèi)淋巴的物質(zhì)無關(guān),可能與手術(shù)和顯微注射的過程有關(guān);韓朝等[13]也報道向豚鼠耳蝸中階輸注的不同藥物成分對其聽力造成的影響在2周時無差別,聽力損害只與灌注的機(jī)械性損傷有關(guān)。作者認(rèn)為耳蝸開孔口盡可能的小,中耳操作時盡量不損傷聽小骨、鼓膜、鐙骨動脈等重要結(jié)構(gòu),可最大限度地減少手術(shù)過程造成的聽力損失;選用可緩慢、勻速控制的顯微注射系統(tǒng)可最大限度地減少顯微注射過程造成的聽力損失。對于如何既能將基因?qū)攵佒须A、又能盡量減小聽功能的損傷還有待進(jìn)一步的研究。
綜上所述,本實驗描述了一種安全、有效地將基因?qū)氪笫蠖佒须A的方法,導(dǎo)入的外源性基因可以在耳蝸中階的C roti器表達(dá),為后續(xù)針對性地經(jīng)耳蝸中階導(dǎo)入治療基因,治療Corti器損傷的外周性感音神經(jīng)性聾提供了實驗基礎(chǔ)。
[1]Kawamoto K,Sha SH ,Minoda R,et al.Antioxidant gene therapy can protect hearing and hair cells from ototoxicity[J].Mol Ther,2004 ,9(2):173.
[2]Izumikawa M,Minoda M ,Kawamoto K,et al.Auditory hair cell replacement and hearing im provement by Atohl gene therapy in deaf mammals[J].Nat Med,2005,11(3):271.
[3]付勇,汪審清,王建亭,等.大鼠胚胎神經(jīng)干細(xì)胞經(jīng)蝸窗移植到正常耳蝸的研究[J].中華耳鼻咽喉頭頸外科雜志,2008,43(12):944.
[4]Fu Y,Wang S,Liu Y,et al.Study on neural stem cell transplantation into natural rat cochlea via round window[J].Am J Otolaryngol,2009 ,30(1):8.
[5]Ishimoto S ,Kaw amoto K,Warpeha RL,et al.Gene transfer into supporting cells of the organ of Corti[J].Hear Res,2002 ,173(1-2):187.
[6]Anson BJ,Donaldson JA ,Warpeha RL,et al.The surgical anatomy of the ossicular muscles and the facial nerve[J].Laryngoscope,1967,77(8):1269.
[7]Qiu J,Olivius P ,Tong B,etal.Ventralapproach to ratinner ear preserves cochlear function[J].Acta Otolaryngol,2007,127(3):240.
[8]韓朝,遲放魯.腺病毒載體經(jīng)豚鼠耳蝸中階導(dǎo)入內(nèi)淋巴系統(tǒng)的實驗觀察[J].中國眼耳鼻喉科雜志,2007,7(2):79.
[9]Lu W,Xu J,Shepherd RK.Cochlear implantation in rats:a new surgicalapproach[J].Hear Res,2005,205(1):115.
[10]Iguchi F ,Nakagaw a T ,Tateya I,et al.Surgical techniques for cell transplantation into the mouse cochlea[J].Acta Otolaryngol Suppl,2004,124(1):43.
[11]韓朝,遲放魯,楊娟梅,等.腺病毒通過不同徑路導(dǎo)入豚鼠耳蝸后的實驗觀察[J].臨床耳鼻咽喉頭頸外科雜志,2009,23(13):607.
[12]Bogaerts S ,Douglas S ,Corlette T ,et al.Microsurgical access for cell injection into the mammalian cochlea[J].J Neurosci Methods,2008,168(1):156.
[13]韓朝,遲放魯,黃一波,等.注射用水及腺病毒中階輸注對豚鼠聽力的影響[J].中國眼耳鼻喉科雜志,2008,8(4):214.