劉 冰,徐誠蛟,王愛杰
(1.哈爾濱工業(yè)大學城市水資源與水環(huán)境國家重點實驗室,哈爾濱150090,waj0578@hit.edu.cn; 2.沈陽農業(yè)大學土地與環(huán)境學院,沈陽110866;3.東北農業(yè)大學資源與環(huán)境學院,哈爾濱150030)
從19世紀70年代的石油危機開始,利用有機廢物產生生物質能被認為是一個重要的產能途徑[1].我國是農業(yè)大國,每年產生大量纖維素類的農業(yè)廢棄物,利用生物手段將其轉化為高附加值的生物質能成為研究熱點[2].其中,降解纖維素產糖是這項研究的核心內容之一[3-5].在人們追求糖產量的同時,如何能更準確的將產出的糖量測定出來成為一個熱點問題.由于在復合菌系內,微生物對還原糖利用的瞬時性,通過測定反應體系中殘留的還原糖量,很難準確的評價其糖化能力.本試驗采用分室同步糖化發(fā)酵產氫的培養(yǎng)模式,將從高溫堆肥中篩選得到降解水稻秸稈的復合菌系,與實驗室原有只能代謝單糖高產氫菌株YUAN-3(Ethanoligenens harbinense)[6]分室同步糖化發(fā)酵培養(yǎng),以單獨利用葡萄糖為底物發(fā)酵時,產生氫氣與所消耗葡萄糖的比例關系為對照,研究同步培養(yǎng)時復合菌系降解秸稈產生還原糖的能力,從而對厭氧纖維素降解菌系生物糖化效果進行評估.
復合菌系分離樣品取自高溫牛糞堆肥.實驗室原有菌株YUAN-3(E.harbinense),該菌株有較強的產氫能力,同時又具備自凝集特性,該菌僅能利用單糖產氫.試驗所需培養(yǎng)基分別為:秸稈培養(yǎng)基(L-1):NH4Cl 1.0 g,K2HPO43.5 g,KH2PO41.5 g,MgCl20.5 g,NaCl 1.0 g,KCl 0.2 g,半胱氨酸0.5 g,蛋白胨2.0 g,酵母粉2.0 g,秸稈 5 g,維生素液[7]5 mL,微量元素溶液[7]1 mL,刃天青1.5 mg,pH 7.0.YUAN-3培養(yǎng)基[8].濾紙液體培養(yǎng)基[9-10].將各種培養(yǎng)基分裝于血清瓶內,全過程在氮氣的保護下進行,121℃,20 min高壓滅菌.
1.2.1 復合菌系的富集
取高溫堆肥樣品10 g,在氮氣保護下,投入裝有數顆玻璃珠的無氧無菌水中,在振蕩器中振蕩1 h,利用玻璃珠剪切力將堆肥樣品粉碎,使微生物菌體充分分散于體系中.再將混合體系接種于秸稈培養(yǎng)基中,接種量10%,35℃靜止富集培養(yǎng)10 d,連續(xù)轉接兩次,使降解纖維素菌株大量富集.
1.2.2 秸稈降解效果
采用濾紙崩解法.將富集得到的菌群接入到濾紙培養(yǎng)基中培養(yǎng),濾紙在配制培養(yǎng)基前需烘干恒重后稱重,接種量為10%,35℃、120 r/min振蕩培養(yǎng),7~10 d后,烘干稱重,測量濾紙的崩解情況.反復轉接3次,比較濾紙崩解的效果.
1.2.3 連續(xù)稀釋轉接篩選高產糖復合菌系
將篩選得到的利用濾紙效果好的菌系用無菌水進行梯度稀釋,取稀釋度為10-3~10-9的溶液分別接種到水稻秸稈培養(yǎng)基中,35℃培養(yǎng)箱培養(yǎng).每隔24 h小時取樣,采用DNS比色法[11-12]測定還原糖量.總結數據,當還原糖量升高,及時將該稀釋度培養(yǎng)體系再度稀釋至10-3~10-9,分別接入到新鮮秸稈培養(yǎng)基中液體培養(yǎng),如此連續(xù)稀釋以得到高產糖復合菌系.
為更好的研究降解纖維素復合菌系的產糖效果,將其與已知菌株YUAN-3進行分室同步糖化發(fā)酵,根據復合菌系與YUAN-3分別培養(yǎng)時,產生單位體積H2時的底物利用率,研究分室同步培養(yǎng)條件下復合菌系的產糖效果.將篩選得到產糖效果較好的復合菌系接種于如圖1所示反應器的A室,B室接種YUAN-3,A、B兩室以0.45 μm細菌濾膜分隔,單室容積32 mL,裝液量80%,以添加于A室的水稻秸稈段為惟一碳源,流加無碳源培養(yǎng)液,采用單批培養(yǎng)方法,以分別單室培養(yǎng)為對照,測定反應器A、B室及對照產氫量變化規(guī)律,對照的葡萄糖消耗量,反應體系內還原糖含量殘留量.氫氣測定、發(fā)酵液相末端代謝產物的測定采用美國安捷倫7890型氣相色譜儀測定.色譜柱:TDX-02;柱溫:100℃;汽化室:80℃;檢測器100℃.
圖1 雙室反應器裝置簡圖
分別測定復合菌系和YUAN-3在單室反應器中,累積產氫量與葡萄糖消耗量,并根據兩者的比例關系擬合成回歸曲線方程.再將雙室反應器中復合菌系和YUAN-3的產氫量分別代入方程,求得不同時間產生一定體積的氫氣,所需消耗的還原糖量,以此來表述復合菌系降解秸稈的產糖效果.秸稈降解率=(原始秸稈質量-殘留秸稈質量)/原始秸稈質量×100%.
富集得到的復合菌系JY在水稻秸稈培養(yǎng)基中能夠生長,說明具有降解纖維素能力.分別觀察其在濾紙培養(yǎng)基中培養(yǎng)7,9,11 d后的濾紙崩解程度,通過培養(yǎng)觀察得到,圖2中復合菌系JY在第11天能將濾紙完全降解成糊狀,說明其具有較好利用纖維素底物的能力.
圖2 濾紙崩解效果
將復合菌系 JY進行梯度稀釋后接種于50 mL秸稈培養(yǎng)基,每天測定反應體系內還原糖產量,當產糖量升高時,說明利用秸稈的厭氧產糖微生物活躍,及時稀釋轉接,如此反復,從而得到產糖量較高的復合菌系.從表1看出,在稀釋培養(yǎng)后的第2天,所有稀釋度還原糖量均有所下降,下降最快為JY6(JY稀釋為10-6),而在第3天其還原糖量又迅速上升,達到0.088 5 mg/mL.此時將JY6再進行梯度稀釋轉接,轉接后的第2天,JY66(JY6稀釋為10-6)還原糖含量迅速上升達到0.148 6 mg/mL.再將JY66再進行梯度稀釋,同樣在轉接后的第2天,JY665(JY66稀釋為10-5)的還原糖含量上升達到最高值0.165 6 mg/mL,而后還原糖量開始下降.由此可見,通過測定還原糖量并及時稀釋轉接,可以將復合菌系的微生物結構向產糖微生物更活躍,產糖效率更高的方向馴化.得到一個降解纖維素產糖能力較強的菌系,并且產糖量會在接種后的第2天達到最大值.結果還表明,稀釋度10-5或10-6對復合菌系內的產糖類群具有較好的分離度,即產糖微生物類群占所在菌系的比例較高,而隨時間推移,產生的還原糖很快會被其它微生物類群利用,還原糖含量隨即下降.
利用DNS法只能測得體系中殘留的少量還原糖,無法反應菌系降解秸稈過程中,產生還原糖的量和變化動態(tài).本研究利用同步分室培養(yǎng)的方法,利用反應器中氫產量來推算菌系降解秸稈產糖能力.
將產糖效果較好的復合菌系JY665接種于雙室反應器A室,將菌株YUAN-3接種于B室,以利用單室反應器分別培養(yǎng)JY菌系和YUAN-3作為對照,35℃下振蕩培養(yǎng)80 h.將JY復合菌系和YUNA-3對照產氫體積(ml)對消耗葡萄糖的質量(g)擬合方程,分別為Y=-0.000 5x2+ 0.012 1x+0.011 3(R2=0.934 3)和Y=-0.000 07x2+ 0.006 4x+0.001 3(R2=0.999 6),且擬合度較高(如圖3).
圖3 產氫量對葡萄消耗量擬合曲線
圖4 反應器產氫氣變化動態(tài)
雙室反應器JY復合菌系和YUAN-3,80 h累積產氫氣量如圖所示,80 h時產氣累積量達到最大值分別為9.45 mL和14.40 mL.其中JY復合菌系產氣量穩(wěn)步上升,而YUAN-3則呈波動上升,可能是由于還原糖透過細菌濾膜時不均勻擴散造成的.YUAN-3的產氫起始時間為20 h,而JY復合菌系為32 h,說明由于JY的菌系復雜性使還原糖被消耗而產氫起始時間滯后.將反應器雙室所產生氫氣量(圖4)代入JY復合菌系和YUNA-3對照的回歸曲線方程,得到反應體系內還原糖消耗量的變化值,并與利用DNS法測得的反應器殘留還原糖值進行對比.
結果(圖5)表明,JY復合菌系和YUAN-3在發(fā)酵過程中所消耗的還原糖量在不斷升高,在80 h時達到最大值,分別為0.081 0 g和0.083 8 g,總還原糖消耗量達到了0.164 8 g.水稻秸稈添加量為0.320 0 g,培養(yǎng)結束后水稻秸稈殘留為0.124 6 g,據此JY復合菌系,產糖能力達到0.515 0g/g秸稈,秸稈降解率達到61.06%.
圖5 反應器產生及殘留還原糖量
同時,利用DNS法測定了反應體系中的殘留的還原糖量,反應器內JY復合菌系和YUAN-3還原糖含量均較低,最高值也分別只有3.310 mg和3.005 mg,且動態(tài)變化并不規(guī)律.結果表明,在秸稈降解的過程中,可能還原糖在產生后便被及時利用,很難在反應體系發(fā)現糖的殘留.由此可見,以產生一定體積氫氣所消耗的葡萄糖量,來表述復合菌系降解秸稈產生的還原糖量是可行和有效的.
1)利用連續(xù)稀釋轉接法,篩選得到能夠降解水稻秸稈產糖的復合菌系JY665,該菌系35℃條件下降解纖維素產糖效果較好.將所得菌系JY665與產氫菌YUAN-3分室同步糖化培養(yǎng),以單獨培養(yǎng)時氫氣產量對還原糖消耗量擬合曲線方程,代入反應器產氫量得到復合菌系產糖能力達到0.515 0 g/g秸稈,秸稈降解率達到61.06%.
2)通過擬合產氫體積與消耗葡萄糖量之間的曲線方程,采用分室同步糖化發(fā)酵法,以反應體系產氫量推知降解秸稈產生還原糖量,建立了一套關于復合菌系產糖能力的間接評價方法,并驗證了該方法的可行性.
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