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    巴彥淖爾酸粥細(xì)菌菌群多樣性分析及其與風(fēng)味的相關(guān)性

    2023-09-28 03:49:38熊子康孔祥聰馬佳佳王玉榮
    中國(guó)釀造 2023年9期
    關(guān)鍵詞:巴彥淖爾響應(yīng)值電子鼻

    熊子康,張 青,鄒 銓,孔祥聰,馬佳佳,王玉榮*

    (1.湖北文理學(xué)院 食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院 湖北省食品配料工程技術(shù)研究中心,湖北 襄陽(yáng) 441053;2.湖北文理學(xué)院 食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院 乳酸菌生物技術(shù)與工程襄陽(yáng)市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖北 襄陽(yáng) 441053;3.河套學(xué)院 農(nóng)學(xué)系,內(nèi)蒙古 巴彥淖爾 015000)

    酸粥一般以小米、大米或糜米等谷物為原料經(jīng)自然發(fā)酵制成的極具地方特色的谷物發(fā)酵制品,口感酸爽細(xì)膩,具有開(kāi)胃助消化的功效,在內(nèi)蒙古、廣西、山西和陜西等地較為常見(jiàn)[1-3]。谷物在發(fā)酵過(guò)程中會(huì)改變自身原有的形態(tài)、風(fēng)味以及營(yíng)養(yǎng)結(jié)構(gòu),并產(chǎn)生氨基酸、維生素和有機(jī)酸等豐富的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),從而使其更易于消化[4-6]。為保證其品質(zhì)及食用方便性,多地嘗試將其開(kāi)發(fā)成商業(yè)化產(chǎn)品,然而,目前酸粥的生產(chǎn)仍主要依賴于家庭作坊式制作[7]。該模式一般采用自然發(fā)酵,由于受到地域、氣候等的影響,不同地區(qū)生產(chǎn)的產(chǎn)品所包含的微生物多樣性不同[8];此外,發(fā)酵過(guò)程使用的容器多不密封且不能人為控制溫度,發(fā)酵料液內(nèi)部微生物群亦需較長(zhǎng)時(shí)間才能達(dá)到平衡,增大了有害微生物侵襲的可能性[9]。巴彥淖爾或稱“巴盟”,屬內(nèi)蒙古自治區(qū),該地區(qū)發(fā)酵酸粥所用原料一般為糜米,制作工藝主要為糜米加水蒸煮,在米粒完全煮透前取適量米湯放涼,置于桶內(nèi)或玻璃罐中,自然發(fā)酵24~30 h即可。每次將發(fā)酵好的酸粥預(yù)留一部分作為下一次發(fā)酵的“引子”,因而明確該地區(qū)傳統(tǒng)發(fā)酵食品酸粥樣品中微生物資源構(gòu)成極其重要。

    越來(lái)越多的學(xué)者認(rèn)識(shí)到微生物的多樣性與食品中各種風(fēng)味之間存在著重要聯(lián)系。自21世紀(jì)以來(lái),以Illumina MiSeq為代表的第二代高通量測(cè)序技術(shù)因其準(zhǔn)確率高、通量高和速度快等優(yōu)點(diǎn)使其在食品微生物多樣性研究領(lǐng)域得以廣泛應(yīng)用[10-11]。電子鼻技術(shù)是一種用來(lái)檢測(cè)揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)的技術(shù)手段,具有實(shí)時(shí)、無(wú)損和快速等特點(diǎn)[12]。電子舌技術(shù)是一種用來(lái)檢測(cè)滋味的技術(shù)手段,具有客觀性強(qiáng)、檢測(cè)響應(yīng)快和標(biāo)準(zhǔn)化控制等特點(diǎn)[13]。向凡舒等[14]基于該技術(shù)解析了利川腌菜細(xì)菌群落結(jié)構(gòu),并采用電子鼻技術(shù)研究腌菜的風(fēng)味品質(zhì),結(jié)果表明,腌菜特征風(fēng)味物質(zhì)的形成可能由變形桿菌屬(Proteus)、嗜冷桿菌屬(Psychrobacter)和腸球菌屬(Enterococcus)等多種微生物共同作用產(chǎn)生;CAI W C等[15]利用高通量測(cè)序技術(shù)和電子感官技術(shù)綜合評(píng)估了3種低溫大曲的微生物結(jié)構(gòu)、微生物功能和風(fēng)味特征,結(jié)果表明,低溫大曲中高溫放線菌屬(Thermoactinomyces)、芽孢桿菌屬(Bacillus)、糖多孢菌屬(Saccharopolyspora)、鏈霉菌屬(Streptomyces)和乳桿菌屬(Lactobacillus)主要影響低溫大曲的滋味,而嗜熱子囊菌屬(Thermoascus)和復(fù)膜孢酵母屬(Saccharomycopsis)主要影響其風(fēng)味。張青等[16]利用高通量測(cè)序技術(shù)研究了巴彥淖爾酸粥細(xì)菌構(gòu)成,發(fā)現(xiàn)乳桿菌屬(Lactobacillus)和醋桿菌屬(Acetobacter)為其優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬,表明該方法應(yīng)用于酸粥類谷物發(fā)酵食品可行且地域因素對(duì)同類型發(fā)酵食品微生物組成存在一定影響,因此有必要對(duì)巴彥淖爾酸粥品質(zhì)或微生物與產(chǎn)品品質(zhì)之間的關(guān)聯(lián)性開(kāi)展深入研究。

    本研究使用高通量測(cè)序技術(shù)對(duì)巴彥淖爾酸粥進(jìn)行細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)解析,同時(shí)結(jié)合電子鼻和電子舌仿生學(xué)技術(shù)對(duì)其氣味和滋味品質(zhì)進(jìn)行分析,并對(duì)優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬與風(fēng)味品質(zhì)之間的相關(guān)性進(jìn)行研究,為酸粥菌株發(fā)掘和品質(zhì)提升提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    酸粥:于2021年6月中旬采集自內(nèi)蒙古自治區(qū)中西部巴彥淖爾市(E105°12′~109°53′,N40°13′~42°28′),共7份樣品,編號(hào)為BM1~BM7。

    DNeasy mericon Food Kit 脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)基因組提取試劑盒:德國(guó)QIAGEN公司;引物338F/806R:由武漢天一輝遠(yuǎn)生物科技有限公司合成;5×TransStartTMFastPfu Buffer、脫氧核糖核苷三磷酸(deoxyribonucleoside triphosphate,dNTPs)Mix和FastPfu Fly DNA聚合酶:北京全式金生物技術(shù)有限公司;參比溶液、陰離子溶液、陽(yáng)離子溶液和內(nèi)部溶液:日本Insent公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    MiSeq PE300高通量測(cè)序平臺(tái):美國(guó)Illumina公司;Nanodrop2000紫外可見(jiàn)分光光度計(jì):美國(guó)Nano Drop公司;Veriti FAST梯度聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀:美國(guó)ABI公司;UVPCDS8000凝膠成像分析系統(tǒng):美國(guó)ProteinSimple公司;PEN3電子鼻(配置10個(gè)金屬氧化傳感器):德國(guó)Airsense公司;SA 402B電子舌:日本Insent公司。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1 MiSeq高通量測(cè)序

    將酸粥樣品振蕩均勻,使用DNeasy mericon Food Kit DNA基因組提取試劑盒從酸粥樣品中提取細(xì)菌基因組DNA,并采用Nanodrop 2000紫外可見(jiàn)分光光度法測(cè)量其濃度和質(zhì)量,將條帶清晰且OD260nm/OD280nm值介于1.8~2.0之間的DNA進(jìn)行細(xì)菌16S rRNA V3-V4區(qū)的PCR擴(kuò)增,其中正向引物為338F(5'-ACTCCTACGGGAGCAGCAG-3'),反向引物為806R(5'-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3'),參照WANG Y R等[17]的PCR擴(kuò)增體系及PCR擴(kuò)增程序進(jìn)行擴(kuò)增,擴(kuò)增后使用1%的瓊脂糖凝膠電泳(120 V,30 min)進(jìn)行檢測(cè),將檢測(cè)合格的擴(kuò)增產(chǎn)物寄送至上海美吉生物有限公司使用Illumina MiSeq測(cè)序儀完成雙末端測(cè)序。

    1.3.2 生物信息學(xué)分析

    根據(jù)GUO Z等[18]的序列質(zhì)控條件進(jìn)行質(zhì)控以獲得高質(zhì)量序列:根據(jù)雙端序列的重疊關(guān)系首先對(duì)下機(jī)序列進(jìn)行合并、去除嵌合體以及采用兩步UCLUST法構(gòu)建操作分類單元(operational taxonomic units,OTU),通過(guò)Greengenes v13.5、核糖體數(shù)據(jù)庫(kù)項(xiàng)目(ribosomal database project,RDP)v11.5和SILVA v132數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)每個(gè)OTU進(jìn)行同源性比對(duì)注釋和微生物多樣性解析[19]。

    1.3.3 基于電子鼻技術(shù)對(duì)酸粥樣品氣味的測(cè)定

    采用電子鼻對(duì)酸粥樣品的氣味進(jìn)行測(cè)定。將酸粥樣品搖勻,吸取15 mL樣品于電子鼻樣品瓶中,45 ℃水浴保溫30 min,于室溫靜置15 min后進(jìn)行測(cè)試,并重復(fù)3次。按照RUSINEK R等[20]的方法,選取49 s、50 s和51 s時(shí)的響應(yīng)值為數(shù)據(jù)點(diǎn),并求其平均值為最終結(jié)果。其中,電子鼻配置的10個(gè)傳感器分別為W1C(芳香型化合物)、W5S(氮氧化合物)、W3C(芳香型化合物)、W6S(對(duì)氫氣有選擇性)、W5C(烷烴芳香成分)、W1S(甲烷)、W1W(有機(jī)硫化物和萜烯類)、W2S(乙醇)、W2W(有機(jī)硫化物)和W3S(烷烴類)。

    1.3.4 基于電子舌技術(shù)對(duì)酸粥樣品滋味的測(cè)定

    采用電子舌對(duì)酸粥樣品的滋味進(jìn)行測(cè)定。將酸粥樣品8 000 r/min 離心15 min后,取上清液于樣品瓶中,4 ℃?zhèn)溆谩0凑誈AO B H等[21]的方法對(duì)樣品中5個(gè)基本味(酸、苦、澀、咸、鮮)和3個(gè)回味(苦味、澀味和鮮味的回味)進(jìn)行測(cè)定,重復(fù)測(cè)定4次,選取后3次有效數(shù)據(jù)并求取平均值作為最終結(jié)果。

    1.3.5 數(shù)據(jù)處理

    使用Origin 2017軟件對(duì)酸粥樣品中優(yōu)勢(shì)細(xì)菌門、屬以及核心OTU的相對(duì)含量和電子鼻、電子舌雷達(dá)圖進(jìn)行分析,并對(duì)各樣品中OTU的出現(xiàn)次數(shù)進(jìn)行水平階梯圖的繪制;使用R軟件的“vioplot”安裝包對(duì)樣品中各滋味品質(zhì)的響應(yīng)值進(jìn)行小提琴圖繪制;使用Cytoscape軟件對(duì)酸粥中優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬與各氣味、滋味指標(biāo)之間相關(guān)系數(shù)絕對(duì)值>0.5的相關(guān)性進(jìn)行網(wǎng)絡(luò)圖的繪制。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 酸粥樣品的細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)分析

    以細(xì)菌16S rRNA V3-V4區(qū)為測(cè)序靶點(diǎn),通過(guò)Illumina MiSeq高通量測(cè)序后7份酸粥樣品共產(chǎn)生了265 424條高質(zhì)量序列,經(jīng)兩步UCLUST分析,共得到1 633個(gè)OTU,序列分別隸屬于3個(gè)門、5個(gè)綱、10個(gè)目、16個(gè)科和24個(gè)屬。將平均相對(duì)含量≥1.00%的細(xì)菌門或?qū)贇w為優(yōu)勢(shì)細(xì)菌門或?qū)?,相?duì)含量<1.00%的細(xì)菌門或?qū)贇w為其他?;陂T水平的酸粥樣品中細(xì)菌菌群組成相對(duì)含量見(jiàn)圖1。

    圖1 基于門水平的酸粥樣品中細(xì)菌菌群組成Fig.1 Bacterial community composition in sour porridge samples based on phylum level

    由圖1可知,厚壁菌門(Firmicutes)和變形菌門(Proteobacteria)為酸粥樣品中的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌門,其平均相對(duì)含量分別為88.71%和9.97%,且各樣品中Firmicutes的相對(duì)含量均>70.00%,其中,樣品BM3、BM4、BM6和BM7中Firmicutes的相對(duì)含量較高,分別為95.79%、96.55%、99.65%和99.07%;不同樣品中Proteobacteria的相對(duì)含量有一定差異,其在樣品BM4、BM6和BM7中其相對(duì)含量均<1.00%,由此可見(jiàn),不同樣品間細(xì)菌門組成存在一定的差異。本研究進(jìn)一步在屬水平上對(duì)其細(xì)菌菌群組成進(jìn)行解析,基于屬水平的酸粥樣品中細(xì)菌菌群的相對(duì)含量見(jiàn)圖2。

    圖2 基于屬水平的酸粥樣品中細(xì)菌菌群組成Fig.2 Bacterial community composition in sour porridge samples based on genus level

    由圖2可知,乳桿菌屬(Lactobacillus)、醋酸桿菌屬(Acetobacter)和魏斯氏菌屬(Weissella)為酸粥樣品中的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬,其平均相對(duì)含量分別為85.45%、9.81%和1.60%,且所有樣品中Acetobacter和Weissella的相對(duì)含量均存在明顯差異。在樣品BM1、BM2和BM5中Acetobacter的相對(duì)含量均>15.0%,而在樣品BM4、BM6和BM7中相對(duì)含量均<1.0%;Weissella僅存在于樣品BM7中,其相對(duì)含量為11.19%。由此可見(jiàn),同一地區(qū)不同酸粥樣品間其細(xì)菌屬組成亦存在一定的差異。Lactobacillus和Weissella均為乳酸菌屬,隸屬于厚壁菌門,可在密閉條件下快速生長(zhǎng)繁殖,生成大量乳酸,在形成酸性無(wú)氧環(huán)境后,隨著好氧菌的死亡,進(jìn)一步將碳水化合物轉(zhuǎn)化成乳酸、乙酸和丙酸等,以改善食品的風(fēng)味并延長(zhǎng)其保質(zhì)期[22];此外,Weissella是兼性厭氧化學(xué)螯合菌,在食品發(fā)酵過(guò)程中,其可以合成酯類、有機(jī)酸和短鏈脂肪酸等風(fēng)味物質(zhì),從而提高發(fā)酵食品的產(chǎn)品質(zhì)量[23]。Acetobacter隸屬于Proteobacteria,可將乙醇和乳酸氧化為乙酸和乙酰丁酸[24]。說(shuō)明酸粥樣品中存在絕對(duì)優(yōu)勢(shì)的產(chǎn)酸菌,該研究結(jié)果與張青等[16]所分析基于門、屬水平的酸粥樣品中細(xì)菌菌群的群落組成基本一致。

    2.2 基于OTU水平的細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)分析

    本研究在細(xì)菌門、屬水平解析酸粥樣品細(xì)菌菌群組成的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步分析7份酸粥樣品中OTU的出現(xiàn)次數(shù)及核心OTU(在所有樣品中均存在的OTU)的相對(duì)含量,結(jié)果見(jiàn)圖3。

    圖3 酸粥樣品中操作分類單元的出現(xiàn)次數(shù)(A)及核心操作分類單元相對(duì)含量(B)Fig.3 Occurrence times of operational taxonomic unit (A) and relative content of core operational taxonomic unit (B) in sour porridge samples

    由圖3A可知,7份樣品中共產(chǎn)生了1 633個(gè)OTU,然而核心OTU(OTU3082、OTU4824、OTU639、OTU1596、OTU281、OTU839和OTU895)僅有7個(gè),占OTU總數(shù)的0.43%,但其中包含了63 755條高質(zhì)量序列,占質(zhì)控后合格序列總數(shù)的24.02%;在樣品中出現(xiàn)1次的OTU有822個(gè),占OTU總數(shù)的50.34%,其中包含13 297 條高質(zhì)量序列,僅占質(zhì)控合格序列總數(shù)的5.01%。由圖3B可知,OTU3082、OTU4824、OTU639、OTU1596、OTU281、OTU839和OTU895平均相對(duì)含量分別為11.63%、6.63%、4.78%、0.83%、0.09%、0.04%和0.03%。而平均相對(duì)含量>1.0%的核心OTU僅有3個(gè),其中2個(gè)核心OTU隸屬于Lactobacillus,分別為OTU3082和OTU639;1個(gè)核心OTU隸屬于Acetobacter,為OTU4824。該結(jié)果進(jìn)一步說(shuō)明,在巴彥淖爾酸粥樣品中,Lactobacillus和Acetobacter為核心細(xì)菌屬。

    2.3 酸粥樣品感官特性測(cè)定結(jié)果

    2.3.1 基于電子鼻技術(shù)酸粥樣品的氣味檢測(cè)結(jié)果

    本研究進(jìn)一步采用電子鼻測(cè)定酸粥樣品氣味,電子鼻響應(yīng)雷達(dá)圖見(jiàn)圖4。

    圖4 酸粥樣品氣味電子鼻傳感器響應(yīng)雷達(dá)圖Fig.4 Response radar diagram of sour porridge samples ordor by electronic nose sensor

    由圖4可知,納入本研究的酸粥樣品在不同傳感器上的響應(yīng)強(qiáng)度不同,僅有W1W(有機(jī)硫化物和萜烯類)、W5S(氮氧化合物)和W1S(甲烷)這3個(gè)傳感器對(duì)酸粥響應(yīng)強(qiáng)度較大,均>19,而其他7個(gè)傳感器對(duì)酸粥響應(yīng)強(qiáng)度較小。其中W1W、W5S和W1S這3個(gè)傳感器對(duì)樣品BM7的響應(yīng)強(qiáng)度均為最大,分別為63.02、37.75和37.31;對(duì)樣品BM4的相應(yīng)強(qiáng)度均為最小,分別為40.27、19.63和24.03。為進(jìn)一步探究各樣本間的氣味的異同,本研究對(duì)各傳感器所測(cè)數(shù)值進(jìn)行處理,結(jié)果見(jiàn)表1。

    表1 電子鼻各傳感器對(duì)酸粥樣品氣味的響應(yīng)強(qiáng)度Table 1 Response intensity of electronic nose sensors to the odor of sour porridge samples

    由表1可知,巴彥淖爾酸粥在W1W、W5S和W1S這3個(gè)傳感器上的平均響應(yīng)值分別為51.43、27.63和29.14。由此可見(jiàn),酸粥揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)中有機(jī)硫化物和萜烯類物質(zhì)、氮氧化合物和甲烷的含量較為豐富。除W6S和W3S外,其他8個(gè)傳感器對(duì)酸粥樣品的響應(yīng)值差異均較大,變異系數(shù)均>8.0%,由此可見(jiàn),7份酸粥樣品在氣味方面存在較大差異。

    2.3.2 基于電子舌技術(shù)對(duì)酸粥樣品滋味的檢測(cè)結(jié)果

    酸粥樣品的電子舌檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖5。由圖5A可知,酸粥樣品在酸味、咸味、鮮味的回味和鮮味指標(biāo)上的差異較大。其中,樣品BM7在酸味指標(biāo)上的響應(yīng)值最大,為7.45;樣品BM3在酸味指標(biāo)上的響應(yīng)值最小,為-22.64,但其在鮮味指標(biāo)上的響應(yīng)值最大,為7.38;樣品BM4在咸味指標(biāo)上的響應(yīng)值最大,為12.21,其在鮮味的回味指標(biāo)上的響應(yīng)值亦最大,為9.05。由圖5B可知,酸粥在各滋味指標(biāo)中差異最大的是酸味,極差值為28.37;其次是咸味、鮮味的回味、澀味和鮮味,極差值分別為14.01、10.96、9.18和8.43;而在澀味回味和苦的回味上的差異較小。Lactobacillus和Acetobacter作為酸粥中的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬,可以產(chǎn)生大量的有機(jī)酸來(lái)降低pH,從而增加酸度[21,25]。由此可知,酸粥樣品中滋味品質(zhì)的差異主要是由酸味引起的。

    圖5 酸粥樣品滋味電子舌響應(yīng)雷達(dá)圖(A)及小提琴圖(B)Fig.5 Response radar diagram (A) and violin diagram (B) of sour porridge samples taste by electronic tongue

    2.4 優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬與風(fēng)味的相關(guān)性分析

    酸粥樣品風(fēng)味特征與其發(fā)酵菌群息息相關(guān),為探究不同菌群對(duì)自然發(fā)酵酸粥滋味和氣味的影響,本研究對(duì)樣品中優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬與氣味物質(zhì)、滋味進(jìn)行相關(guān)性分析,其相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)圖見(jiàn)圖6。

    圖6 酸粥樣品優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬與氣味及滋味的相關(guān)性Fig.6 Correlation between dominant bacterial genera and odor and taste of sour porridge samples

    由圖6可知,Weissella與酸粥的澀味呈現(xiàn)顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05),相關(guān)系數(shù)R2=0.998;Acetobacter與芳香型化合物的生成呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),相關(guān)系數(shù)R2=0.999,與苦的回味呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),相關(guān)系數(shù)R2=0.999;Lactobacillus與氮氧化合物的生成呈現(xiàn)顯著正相關(guān)(P<0.05),相關(guān)系數(shù)R2=0.999,與乙醇類物質(zhì)的生成呈極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01),相關(guān)系數(shù)R2=0.999。由此可見(jiàn),Acetobacter和Lactobacillus對(duì)于酸粥中芳香類風(fēng)味物質(zhì)和氮氧化合物的形成有著積極的作用,Weissella對(duì)于酸粥中酸味的形成亦發(fā)揮著積極影響。

    3 結(jié)論

    巴彥淖爾自然發(fā)酵酸粥樣品的細(xì)菌菌群組成存在一定差異,優(yōu)勢(shì)細(xì)菌門為Firmicutes和Proteobacteria,優(yōu)勢(shì)細(xì)菌屬為L(zhǎng)actobacillus、Acetobacter和Weissella,所有樣品包含7個(gè)核心OTU。就氣味和滋味品質(zhì)而言,其揮發(fā)性物質(zhì)的差異主要集中在氮氧化合物、甲烷和萜類化合物上,而其滋味差異主要體現(xiàn)在酸味方面。經(jīng)相關(guān)性分析得知,Acetobacter和Lactobacillus對(duì)酸粥芳香類風(fēng)味物質(zhì)和氮氧化合物的產(chǎn)生具有積極作用,Weissella對(duì)酸粥酸味的形成亦具有積極影響,在后續(xù)發(fā)酵酸粥工藝中,可進(jìn)一步為其滋味品質(zhì)的提升進(jìn)行研究,完善酸粥風(fēng)味和滋味品質(zhì)的雙向促進(jìn),優(yōu)化酸粥的生產(chǎn)工藝條件,提升工業(yè)化生產(chǎn)。

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