李嘉佳,王磊,曹玉早,王世平*
(1. 上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院,上海 200240;2. 東海縣石梁河鎮(zhèn)金朵種植家庭農(nóng)場(chǎng),江蘇連云港 222000)
溫度是影響植物新陳代謝等生理功能的主要因素之一,在適宜的溫度下,植物組織中的不同蛋白質(zhì)會(huì)堆疊成特定的形狀,行使不同功能[1]。極端的溫度變化會(huì)導(dǎo)致具有功能的蛋白質(zhì)變性失活,最終造成植物新陳代謝速率下降,果實(shí)產(chǎn)量及品質(zhì)降低[2]。據(jù)報(bào)道,每年全球農(nóng)作物產(chǎn)量損失有超過(guò)半數(shù)都是由極端溫度造成的, 隨著全球氣候的日益變暖,溫室效應(yīng)逐漸加劇,高溫對(duì)農(nóng)作物的危害更加嚴(yán)重[3]。因此,如何減輕極端氣候?qū)χ参锏膫Γ瑢?shí)現(xiàn)高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)栽培一直是學(xué)者們追求的目標(biāo)。
‘美樂(lè)’葡萄是世界范圍內(nèi)種植最廣泛的品種之一,具有早熟、多產(chǎn)、口感細(xì)膩等優(yōu)良性狀,可用來(lái)釀制美味而柔滑的葡萄酒,也可平衡其他葡萄酒的酸澀,極大提高葡萄酒的品質(zhì),獲得更高的市場(chǎng)效應(yīng)[4-5]。但是‘美樂(lè)’耐熱性較差,夏季的高溫也成為制約其生長(zhǎng)發(fā)育最主要的環(huán)境因子,若長(zhǎng)期處于高溫環(huán)境下,會(huì)抑制樹(shù)體光合作用,延緩果皮著色,釀制的酒口感變劣,品質(zhì)變差,影響了該品種的的應(yīng)用[6]。噴施外源植物激素是快速提高植株抗逆性,緩解熱脅迫對(duì)細(xì)胞膜傷害的有效措施[7-8]。脫落酸(ABA)是促進(jìn)果皮著色和果實(shí)糖分積累的最重要的內(nèi)源植物激素。已有研究表明,向轉(zhuǎn)色前葡萄果實(shí)噴施一定濃度的ABA和乙烯類(lèi)物質(zhì)(乙烯利)可以顯著緩解高溫脅迫下葡萄果實(shí)的上色困難,固酸比下降等問(wèn)題[9-11]。油菜素內(nèi)酯(BR)具有在極低濃度下促進(jìn)植株?duì)I養(yǎng)生長(zhǎng)的功效,并且對(duì)果實(shí)膨大、糖分積累、果皮著色方面也有顯著的促進(jìn)作用[12]。但遺憾的是,對(duì)外源BR及24-表油菜素內(nèi)酯(EBR)能否通過(guò)調(diào)控內(nèi)源BR的合成來(lái)緩解熱脅迫下‘美樂(lè)’葡萄上色困難,從而提高果實(shí)品質(zhì)方面還未有系統(tǒng)的研究,分子機(jī)制也仍待進(jìn)一步揭示。
本研究以盆栽?xún)赡晟摹罉?lè)’葡萄為試材,探究EBR對(duì)熱脅迫下果實(shí)次生代謝物合成及抗氧化能力的影響,著重聚焦EBR是否會(huì)通過(guò)影響內(nèi)源BR的合成來(lái)緩解熱脅迫下葡萄果皮上色困難的問(wèn)題,以期在未來(lái)葡萄栽培過(guò)程中通過(guò)轉(zhuǎn)色前果實(shí)浸泡EBR的方式來(lái)提高葡萄抗熱脅迫的能力,恢復(fù)受熱脅迫傷害的表型,進(jìn)而整體提高釀酒葡萄的品質(zhì)。
2022年3月5日將兩年生‘美樂(lè)’植株移栽于10 L栽培容器中,挑選長(zhǎng)勢(shì)相近且無(wú)病蟲(chóng)害的植株,置于上海交通大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物學(xué)院玻璃溫室中,栽培土壤由園土和蛭石按1∶1比例混合而成,土壤肥水和病蟲(chóng)害管理一致。待果實(shí)轉(zhuǎn)色前2周左右,挑選長(zhǎng)勢(shì)健壯的9株進(jìn)行試驗(yàn),調(diào)整果穗數(shù)和葉片數(shù),使總果粒數(shù)與總?cè)~片數(shù)比介于1.2~1.5,供后續(xù)處理。在果實(shí)轉(zhuǎn)色前1周,參考預(yù)備試驗(yàn)篩選的處理溫度,設(shè)置對(duì)照(Control,25 ℃/12 h,25 ℃/12 h),熱脅迫(HT,50 ℃/12 h,25 ℃/12 h)及熱脅迫 + EBR(HT+EBR,50 ℃/12 h,25 ℃/12 h)3組處理,不間斷處理14 d。每個(gè)處理使用3株冬季修剪完畢的盆栽葡萄,每株保留3~4穗果,每穗保留60粒,并定期澆灌霍格蘭營(yíng)養(yǎng)液。此外,EBR處理在首次高溫脅迫后6 h進(jìn)行,將未轉(zhuǎn)色的葡萄整穗果浸泡在2 L的0.5 mg·L-1EBR溶液(現(xiàn)用現(xiàn)配),每穗浸泡時(shí)間持續(xù)3 min,待果穗完全沒(méi)有EBR溶液滴落后,再重復(fù)該步驟一次。
本試驗(yàn)共設(shè)置5個(gè)采樣時(shí)間點(diǎn),分別為DAT0(處理后0 d,HT及EBR處理后6 h進(jìn)行采樣)、DAT3(處理后3 d,轉(zhuǎn)色前期)、DAT7(處理后7 d,轉(zhuǎn)色中期)、DAT11(處理后11 d,轉(zhuǎn)色完成)、DAT15(處理后15 d,成熟期)。在每個(gè)采樣時(shí)間點(diǎn),隨機(jī)在每穗葡萄上中下部各采集3粒,每個(gè)處理采果數(shù)量不低于20粒。在測(cè)定完果實(shí)基本品質(zhì)指標(biāo)后(粒質(zhì)量、果實(shí)縱徑、果實(shí)橫徑、可溶性固形物、可滴定酸),所有果實(shí)經(jīng)液氮冷凍后置于-80 ℃冰箱,用于后續(xù)果實(shí)花色苷、酚類(lèi)等次生代謝產(chǎn)物、抗氧化酶活性的測(cè)定及RNA的提取。
1.2.1 酚類(lèi)物質(zhì)的測(cè)定
隨機(jī)選擇5粒完整果實(shí),用液氮研磨成粉末后,稱(chēng)取0.10 g,加入1 mL pH 7.8的PBS緩沖液,4 ℃、12000 r·min-1下離心10 min,取上清液進(jìn)行果實(shí)類(lèi)黃酮、總酚、抗壞血酸、白藜蘆醇的測(cè)定,使用由北京索萊寶生物科技有限公司生產(chǎn)的Elisa試劑盒進(jìn)行檢測(cè)。每處理重復(fù)3次。
1.2.2 抗氧化酶活性的測(cè)定
取0.10 g凍干葡萄粉末于1 mL pH 7.8的PBS緩沖液中進(jìn)行冰浴勻漿處理,4 ℃、12000 r·min-1下離心10 min,取上清液進(jìn)行果實(shí)內(nèi)超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化物酶(POD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)和苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性的測(cè)定,使用北京索萊寶生物科技有限公司生產(chǎn)的Elisa試劑盒進(jìn)行檢測(cè)。每處理重復(fù)3次。
1.2.3 總花色苷的測(cè)定
先將葡萄果實(shí)研磨成粉末,準(zhǔn)確稱(chēng)取0.10 g,加入6 mL含1%HCl的甲醇溶液,渦旋振蕩混勻2 min,4 ℃避光浸提過(guò)夜。在加入4 mL ddH2O后,將溶液在3800 r·min-1下離心10 min。收集上清液并加入1 mL氯仿,混勻,然后將混合物在13000 r·min-1下離心5 min。最后,使用分光光度計(jì)在530 nm和657 nm下分別測(cè)量水相中的花色苷含量,并使用等式 (A530-A657)·g-1得到總花色苷含量。每個(gè)處理重復(fù)3次。
1.2.4 內(nèi)源BR含量的測(cè)定
取0.50 g果肉組織粉末于5 mL pH 7.8的PBS緩沖液以及5 mL的1 mol Tris-HCl中進(jìn)行冰浴勻漿處理,經(jīng)過(guò)4 ℃、6000 r·min-1離心15 min 后,取上清液進(jìn)行果實(shí)內(nèi)BR含量的測(cè)定,使用上海研啟生物科技有限公司生產(chǎn)的Elisa試劑盒進(jìn)行檢測(cè)。每個(gè)處理重復(fù)3次。
1.2.5 qRT-PCR
RNA提取試劑盒(TaKaRa,大連,中國(guó))用于提取在不同處理的不同采樣期的葡萄果實(shí)中的總RNA。BIO-RADXR凝膠成像分析系統(tǒng)(美國(guó),加利福尼亞州,BIO-Rad)用于檢測(cè)提取的RNA的純度和完整性。使用CFX connect實(shí)時(shí)PCR檢測(cè)系統(tǒng)(Bio-Rad,CA,USA)進(jìn)行qRT-PCR,并遵循以下既定程序:95 ℃(20 s),然后95 ℃(39個(gè)循環(huán),15 s),55 ℃(15 s),最后60 ℃(15 s)。基因的相對(duì)表達(dá)由2-△△Ct表示。所有基因和轉(zhuǎn)錄因子序列均從EnsemblPlants(http://plants.ensembl.org/info/about/index.html)獲得。 在Primer Premier 5.0和qPrimerDB qPCR引物數(shù)據(jù)庫(kù)中設(shè)計(jì)用于qRT-PCR的引物(https://biodb.swu.edu.cn/qprimerdb/)。
使用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件包(IBM,Armonk,NY,USA)對(duì)本研究中獲得的結(jié)果進(jìn)行差異顯著性分析。方差齊性分析采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(SE)形式,選擇單變量方差分析(one-way ANOVA,P<0.05),每個(gè)處理至少選擇3組數(shù)據(jù)。所有圖形均使用GraphPad Prism 9.0(GraphPad Software Inc.,圣地亞哥,美國(guó)),TBtools(CAN,CHN)和Visio 2020(Microsoft,SEA,美國(guó))繪制。
圖1為熱脅迫及EBR處理對(duì)果粒表型及果粒大小的影響。結(jié)果表明,熱脅迫顯著抑制了果粒的膨大和著色,EBR處理后果粒大小和上色程度顯著改善,且果實(shí)縱橫徑、粒質(zhì)量均在轉(zhuǎn)色完成期和果實(shí)成熟期高于對(duì)照組(圖1A、B、C)。以上表型以及果粒大小指標(biāo)說(shuō)明,熱脅迫可以抑制‘美樂(lè)’葡萄的著色及膨大,EBR對(duì)恢復(fù)果實(shí)表型,促進(jìn)果實(shí)膨大有著積極效應(yīng)。
圖2為熱脅迫及EBR處理對(duì)果實(shí)糖積累、酸代謝和多種次生代謝產(chǎn)物合成的影響。具體來(lái)說(shuō),熱脅迫顯著抑制了果實(shí)DAT3、DAT7、DAT11、DAT15時(shí)期的可溶性固形物的積累。在DAT3和DAT15時(shí)期,EBR浸泡果實(shí)后則顯著抑制了可溶性固形物在熱脅迫下的減少,但其值仍顯著低于對(duì)照組(圖2A)。此外,熱脅迫也可以顯著的降低葡萄果實(shí)內(nèi)可滴定酸的含量,EBR浸泡可恢復(fù)熱脅迫下其值的降低,但其含量仍顯著低于對(duì)照組(圖2B)。對(duì)于類(lèi)黃酮含量以及總酚含量(圖2C、2D),熱脅迫處理同樣顯著抑制了這兩種物質(zhì)的積累。在EBR處理組中,總酚含量和類(lèi)黃酮的含量較熱脅迫處理組顯著提升。此外,EBR對(duì)于緩解熱脅迫處理下抗壞血酸和白藜蘆醇這兩種次生代謝產(chǎn)物含量降低效果顯著,尤其在轉(zhuǎn)色期和成熟期(圖2E、2F)。
圖2 EBR對(duì)‘美樂(lè)’葡萄果實(shí)多種次生代謝物含量的影響Figure 2 Effect of EBR on the content of multiple secondary metabolites in 'Merlot' grape
如圖3所示,SOD、POD、CAT、PAL活性變化一致,呈現(xiàn)出總體先上升后下降的趨勢(shì),熱脅迫顯著促進(jìn)了果實(shí)DAT0和DAT15時(shí)期SOD活性的提高,顯著促進(jìn)幾乎所有采樣時(shí)期POD和CAT的活性,而抑制了果實(shí)轉(zhuǎn)色期PAL的活性。此外,EBR在促進(jìn)熱脅迫下DAT3、DAT7和DAT11時(shí)期的SOD、POD以及所有采樣時(shí)期PAL的活性提高方面發(fā)揮著重要作用。此外,EBR較熱脅迫處理組顯著降低了熱脅迫下CAT活性。
圖3 EBR對(duì)‘美樂(lè)’葡萄果實(shí)抗氧化物質(zhì)積累的影響Figure 3 Effect of EBR on the accumulation of antioxidant substances in 'Merlot' grape fruit
進(jìn)一步在轉(zhuǎn)錄水平上探究EBR對(duì)促進(jìn)熱脅迫下抗氧化相關(guān)基因表達(dá)的作用,如圖4所示。SOD,POD、CAT和PAL1的表達(dá)總體呈現(xiàn)出先上升后下降的趨勢(shì),以及熱休克基因HSFA1、HSP70呈現(xiàn)出總體不斷下降的趨勢(shì)。在DAT7、DAT11和DAT15時(shí)期,熱脅迫顯著促進(jìn)了SOD、POD、CAT的表達(dá),抑制了PAL1的表達(dá)。HSFA1和HSP70在DAT0和DAT15時(shí)期明顯上調(diào),其余時(shí)間未見(jiàn)顯著差異,且EBR處理并不能促進(jìn)這些基因在熱脅迫下表達(dá)的顯著提高。
圖4 EBR對(duì)‘美樂(lè)’葡萄果實(shí)抗氧化物質(zhì)相關(guān)基因表達(dá)量的影響Figure 4 Effect of EBR on the expression of related genes of antioxidant substances in 'Merlot' grape fruit
如圖5A所示,隨著果實(shí)的不斷成熟,總花色苷含量不斷提高,熱脅迫處理在轉(zhuǎn)色期和成熟期時(shí)期均顯著抑制了總花色苷的積累,EBR有效地逆轉(zhuǎn)熱脅迫對(duì)花色苷積累的抑制作用。
圖5 EBR對(duì)‘美樂(lè)’葡萄果皮花色苷含量及花色苷合成代謝、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的影響Figure 5 Effect of EBR on anthocyanin content, anthocyanin biosynthesis and metabolism, and signal transduction of 'Merlot' grape
進(jìn)一步在轉(zhuǎn)錄水平上研究熱脅迫及EBR處理對(duì)‘美樂(lè)’葡萄花色苷合成代謝及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的影響,如圖5B所示。結(jié)果發(fā)現(xiàn),花色苷合成的上游基因PAL、C4H、CHS、CHI變化趨勢(shì)較為一致,即隨著果實(shí)成熟,它們的表達(dá)量先增加后減少。隨著葡萄果實(shí)的不斷成熟,負(fù)責(zé)調(diào)控花色苷合成的下游基因的F3H不斷上調(diào),下游基因LDOX和DFR先上調(diào)后下調(diào)。此外,在轉(zhuǎn)色期DAT15時(shí)期,熱脅迫較對(duì)照組降低了上述大部分基因的表達(dá)。而在DAT0后及DAT3時(shí)期,EBR對(duì)熱脅迫下這些基因表達(dá)量的上調(diào)起促進(jìn)作用。在大部分的采樣時(shí)間點(diǎn),熱脅迫促進(jìn)了5GT的表達(dá),而抑制了3GT的表達(dá),EBR在顯著上調(diào)它們的表達(dá)方面做出貢獻(xiàn)。同時(shí)發(fā)現(xiàn),負(fù)責(zé)調(diào)控原花青素(兒茶素)合成的基因LAR呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì),以及負(fù)責(zé)調(diào)控原花青素(表兒茶素)的基因ANR隨著果實(shí)的成熟呈現(xiàn)上調(diào)的趨勢(shì),且在大多數(shù)采樣時(shí)間,熱脅迫處理均可以促進(jìn)它們的表達(dá)。經(jīng)過(guò)EBR浸泡果實(shí)后,DAT3時(shí)期的LAR、DAT7時(shí)期的ANR上調(diào)趨勢(shì)更顯著。此外,誘導(dǎo)二氫黃酮醇生成黃酮醇的基因FLS的表達(dá)量先上升后下降;在大部分采樣時(shí)間,熱脅迫處理顯著下調(diào)了它的表達(dá)量;在EBR浸泡果實(shí)后,表達(dá)量雖上調(diào),但整體水平仍低于對(duì)照組。
對(duì)與花色苷信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)密切相關(guān)的4個(gè)轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)進(jìn)行測(cè)定(圖5C)。結(jié)果表明,MYB5A、MYB5B、mybA1、MYB14有一致的變化趨勢(shì),呈現(xiàn)先上升后下降。在大多數(shù)的采樣時(shí)間點(diǎn),熱脅迫下調(diào)了這些基因的表達(dá),EBR則有效地逆轉(zhuǎn)了熱脅迫對(duì)它們表達(dá)的抑制作用,尤其是在DAT3和DAT7。
如圖6所示,葡萄果實(shí)內(nèi)源BR含量隨著果實(shí)成熟而不斷增加,在DAT7和DAT15時(shí)期,熱脅迫顯著提高了內(nèi)源BR的含量。而在大部分的采樣點(diǎn),EBR處理組相較于熱脅迫處理組,內(nèi)源BR含量無(wú)明顯提高,但其含量仍顯著高于對(duì)照組。
圖6 EBR對(duì)‘美樂(lè)’葡萄果實(shí)內(nèi)源BR含量的影響Figure 6 Effect of EBR on endogenous BR content of 'Merlot' grape
進(jìn)一步在轉(zhuǎn)錄水平上分析熱脅迫和EBR對(duì)BR合成代謝關(guān)鍵基因表達(dá)的影響。如圖7所示,上游基因DWF4和CPD表現(xiàn)出較為一致的變化趨勢(shì),在大多數(shù)采樣時(shí)間點(diǎn),熱脅迫都顯著提高了它們的表達(dá)量,且在果實(shí)DAT11和DAT15時(shí)期,EBR對(duì)于上調(diào)這兩個(gè)基因表達(dá)量的作用效果也是顯著的。而B(niǎo)R合成上游基因DET2則表現(xiàn)出先略微下降,后逐步提升的趨勢(shì)。在大多數(shù)采樣點(diǎn),熱脅迫下它的表達(dá)都顯著高于對(duì)照組,在果實(shí)DAT0和DAT11時(shí)期,EBR顯著上調(diào)它的表達(dá)。下游基因ROT3,BR6OX1,BR6OX2的表達(dá)量在熱脅迫處理組和EBR處理組的轉(zhuǎn)色期較對(duì)照組上調(diào)。調(diào)控BR代謝的BAS1會(huì)隨著果實(shí)不斷成熟先上調(diào)后下調(diào),在大多數(shù)的采樣時(shí)間點(diǎn),熱脅迫顯著上調(diào)了其表達(dá),而EBR處理在絕大多數(shù)的采樣時(shí)期較對(duì)照組上調(diào)了它們的表達(dá)。
圖7 EBR對(duì)‘美樂(lè)’葡萄果實(shí)內(nèi)源BR合成代謝的影響Figure 7 Effect of EBR on endogenous BR biosynthesis of 'Merlot' grape fruit
通過(guò)相關(guān)性試驗(yàn)進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn),隨著‘美樂(lè)’葡萄果實(shí)的不斷發(fā)育成熟,內(nèi)源BR的積累與果實(shí)的膨大,糖分的積累和花色苷的富集關(guān)系最為密切(圖8)。令人意外的是,內(nèi)源BR的積累與多種抗氧化物質(zhì)的積累呈負(fù)相關(guān),遂推測(cè)EBR緩解了熱脅迫對(duì)葡萄果實(shí)的傷害,提高其抗氧化能力并不是通過(guò)促進(jìn)內(nèi)源BR合成這條途徑完成的,具體的驗(yàn)證仍待進(jìn)一步開(kāi)展。
圖8 內(nèi)源BR與品質(zhì)相關(guān)指標(biāo)的關(guān)聯(lián)程度Figure 8 Correlation between endogenous BR and quality-related parameters
熱脅迫亦稱(chēng)高溫脅迫,是指環(huán)境溫度升高到植物適宜溫度以上,對(duì)植物的能量代謝、生長(zhǎng)發(fā)育產(chǎn)生的脅迫現(xiàn)象[13]。隨著溫室效應(yīng)的日趨嚴(yán)重,熱脅迫是葡萄植株生長(zhǎng)發(fā)育面臨的最大問(wèn)題之一,輕則會(huì)導(dǎo)致植株的氧化受傷,代謝失調(diào),嚴(yán)重時(shí)會(huì)影響植株的生長(zhǎng)發(fā)育及果實(shí)品質(zhì)[3]。綜合本試驗(yàn)結(jié)果可知,熱脅迫確實(shí)會(huì)顯著抑制釀酒葡萄‘美樂(lè)’的果實(shí)膨大、果皮著色、糖分積累、抗氧化酶活性提高。EBR的應(yīng)用可以通過(guò)促進(jìn)與花色苷合成密切相關(guān)的結(jié)構(gòu)基因以及轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá),減輕熱脅迫造成的果皮著色困難的程度,通過(guò)上調(diào)部分抗氧化基因的表達(dá)量,緩解熱脅迫對(duì)細(xì)胞膜造成的傷害,提高抗氧化能力。此外,EBR促進(jìn)果實(shí)內(nèi)源BR的積累,上調(diào)負(fù)責(zé)內(nèi)源BR合成的大部分下游基因的表達(dá),以應(yīng)對(duì)葡萄果實(shí)代謝失衡、品質(zhì)下降的現(xiàn)象。最后,相關(guān)性分析進(jìn)一步佐證了我們的推測(cè):BR與葡萄果實(shí)多種次生代謝產(chǎn)物的合成密切相關(guān),尤其體現(xiàn)在果實(shí)膨大、果皮著色與糖分積累方面。
首先,高溫主要引起生物膜的物理化學(xué)狀態(tài)和蛋白質(zhì)分子構(gòu)型的可逆變化,由于類(lèi)囊體膜對(duì)熱特別敏感,光合作用失調(diào)是熱脅迫的最初指標(biāo)[14]。高溫造成植物光合作用受到抑制,最后導(dǎo)致細(xì)胞和個(gè)體的死亡[15]。前人研究證實(shí),EBR處理葡萄葉片后,受熱脅迫(42 ℃)損害嚴(yán)重的葉片表型慢慢恢復(fù),光合速率提高,并伴隨著抗氧化相關(guān)的SOD、POD、CAT等物質(zhì)含量的增加,植株對(duì)抗熱脅迫的能力顯著增強(qiáng)[16]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,熱脅迫處理下果實(shí)內(nèi)的多種次生代謝產(chǎn)物(類(lèi)黃酮、總酚、白藜蘆醇)含量顯著降低,果實(shí)內(nèi)與抗逆能力相關(guān)的SOD、POD及CAT含量在一定時(shí)期內(nèi)顯著增加,果實(shí)清除自由基的能力相應(yīng)提高。EBR對(duì)于減輕果實(shí)品質(zhì)下降及抗氧化能力提高方面發(fā)揮著重要作用,在果實(shí)轉(zhuǎn)色期和成熟期,EBR顯著促進(jìn)了熱脅迫下可溶性固性物的積累。在轉(zhuǎn)色完成和成熟期,EBR減輕了熱脅迫果實(shí)內(nèi)抗壞血酸和白藜蘆醇減少的表型。在大部分采樣時(shí)期,EBR進(jìn)一步促進(jìn)了葡萄果實(shí)內(nèi)SOD和POD的積累。此外,我們發(fā)現(xiàn)EBR對(duì)促進(jìn)總酚以及類(lèi)黃酮的積累在轉(zhuǎn)色期和成熟期較明顯。基于此,推測(cè)熱脅迫處理加速了轉(zhuǎn)色期和成熟期‘美樂(lè)’葡萄膜脂過(guò)氧化,且與清除自由基相關(guān)的抗氧化酶活性也相應(yīng)提高。EBR不僅促進(jìn)了多種反映果實(shí)品質(zhì)的次生代謝產(chǎn)物的合成,而且更進(jìn)一步的加速了多種抗氧化物質(zhì)的富集,雖然與抗氧化能力提高有關(guān)基因的表達(dá)量較熱脅迫處理組沒(méi)有明顯的上調(diào),但熱脅迫對(duì)果實(shí)表型及品質(zhì)的損害還是在EBR處理下有所減輕。
其次,高溫必然會(huì)引起植物內(nèi)源激素含量的變化[17],諸如脫落酸(ABA)和茉莉酸(JA)這兩種已被廣泛報(bào)道與抗逆性提高相關(guān)的植物激素,它們的含量在經(jīng)過(guò)熱脅迫后會(huì)顯著提高[18-20]。而與植株生長(zhǎng)發(fā)育相關(guān)的生長(zhǎng)素(IAA)和細(xì)胞分裂素(CTK)在經(jīng)過(guò)熱脅迫后會(huì)顯著降低[21-22]。雖然BR也被證實(shí)與提高植株抗逆性密切相關(guān),但由于BR在果實(shí)內(nèi)含量極低,很少有研究系統(tǒng)地討論EBR對(duì)熱脅迫處理后葡萄內(nèi)源BR含量變化的影響。本試驗(yàn)結(jié)果證實(shí)了熱脅迫處理的確可以顯著提高大部分采樣時(shí)期果實(shí)內(nèi)源BR的含量。EBR處理過(guò)后,在轉(zhuǎn)色前期和成熟期,內(nèi)源BR含量較熱脅迫處理組提高,但兩個(gè)處理組并沒(méi)有顯著的差異。進(jìn)一步在轉(zhuǎn)錄水平上研究熱脅迫和EBR處理對(duì)內(nèi)源BR合成代謝關(guān)鍵基因表達(dá)量的影響發(fā)現(xiàn),熱脅迫促進(jìn)了BR合成最關(guān)鍵的兩個(gè)下游基因(BR6OX1與BR6XO2)在轉(zhuǎn)色完成和成熟期的表達(dá),且促進(jìn)了BR代謝相關(guān)基因(BAS1)表達(dá)量在大部分采樣時(shí)期的上調(diào),推測(cè)雖然BR合成和分解的速率在經(jīng)過(guò)熱脅迫后都有了提高,但是整體上BR合成的速率還是要快于BR分解的速率,最終導(dǎo)致熱脅迫促進(jìn)葡萄成熟期果實(shí)內(nèi)源BR積累的表型。
眾所周知,葡萄果皮著色困難是熱脅迫后最明顯的表型之一,持續(xù)高溫會(huì)嚴(yán)重阻礙多種有機(jī)營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的積累,從而造成果皮花色苷含量的減少[23-25]。本研究結(jié)果不僅從表型上提供了熱脅迫嚴(yán)重阻礙‘美樂(lè)’葡萄果皮著色的理論依據(jù),而且也得出了經(jīng)過(guò)熱脅迫后,果皮花色苷在轉(zhuǎn)色期和成熟期顯著降低的結(jié)論,并且在轉(zhuǎn)錄水平上進(jìn)一步解釋了這個(gè)現(xiàn)象,即在果實(shí)轉(zhuǎn)色期和成熟期,熱脅迫顯著抑制了花青素合成下游基因3GT的表達(dá),而促進(jìn)了原花青素合成關(guān)鍵基因ANR和LAR的表達(dá),EBR的應(yīng)用則可以有效緩解大部分時(shí)期熱脅迫對(duì)葡萄著色的抑制作用。根據(jù)上述結(jié)果推測(cè),熱脅迫會(huì)更傾向促進(jìn)原花青素的合成,而抑制與果皮著色有關(guān)的花青素的合成,最終產(chǎn)生相較對(duì)照組著色不良的表型,而EBR則可以通過(guò)上調(diào)大部分與花青素合成相關(guān)的基因來(lái)緩解熱脅迫處理造成果皮著色困難的現(xiàn)象。
綜上所述,本試驗(yàn)在轉(zhuǎn)色前對(duì)釀酒葡萄‘美樂(lè)’實(shí)施熱脅迫處理(最高54 ℃,最低46 ℃,平均50 ℃)基礎(chǔ)上,并于當(dāng)天用EBR浸泡葡萄果穗,發(fā)現(xiàn)熱脅迫顯著抑制葡萄膨大、糖分積累、果皮著色及多種抗氧化酶活性增強(qiáng)。EBR處理整體上通過(guò)促進(jìn)多種次生代謝產(chǎn)物的積累緩解了熱脅迫對(duì)葡萄著色的抑制,通過(guò)提高幾種抗氧化酶的活性減輕熱脅迫對(duì)葡萄果實(shí)細(xì)胞膜的傷害。此外,我們推測(cè)EBR可通過(guò)調(diào)控內(nèi)源BR的合成促進(jìn)果皮糖及花色苷的積累,改善熱脅迫下果皮著色困難的情況,但具體的分子機(jī)制仍待進(jìn)一步探索。