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      大興安嶺南麓東北馬鹿種群遺傳多樣性分析

      2023-08-16 13:02:46郭金昊劉鑫鑫張明海
      野生動(dòng)物學(xué)報(bào) 2023年3期
      關(guān)鍵詞:馬鹿微衛(wèi)星雜合

      李 崢,郭金昊,劉鑫鑫,張明海

      (東北林業(yè)大學(xué)野生動(dòng)物與自然保護(hù)地學(xué)院,哈爾濱,150040)

      由于人類活動(dòng)和自然環(huán)境變化,野生動(dòng)物的生存面臨諸多威脅,如棲息地喪失、生境破碎化等嚴(yán)重威脅著野生動(dòng)物的擴(kuò)散和繁衍[1],甚至導(dǎo)致種群近交風(fēng)險(xiǎn)上升、遺傳多樣性喪失,從而使種群對(duì)環(huán)境變化的響應(yīng)及適應(yīng)能力下降[2]。遺傳多樣性水平往往與種群的穩(wěn)定和健康息息相關(guān),遺傳變異水平較高的種群對(duì)環(huán)境變化的適應(yīng)能力更強(qiáng),即使在種群數(shù)量下降后仍具備很強(qiáng)的恢復(fù)潛力[3]。遺傳多樣性水平的高低是衡量種群健康狀況的重要依據(jù),是進(jìn)行種群管理與保護(hù)決策的重要工具之一[4]。

      東北馬鹿(Cervus elaphus xanthopygus)是我國北方森林生態(tài)系統(tǒng)中具有代表性的有蹄類動(dòng)物,在維持森林和草原生態(tài)系統(tǒng)的平衡與穩(wěn)定中發(fā)揮重要作用,曾廣泛分布于黑龍江省大小興安嶺、完達(dá)山、老爺嶺及張廣才嶺,吉林省長白山地區(qū),大興安嶺南麓內(nèi)蒙古和河北省森林—草原過渡帶地區(qū)[5-9]。然而由于非法盜獵、森林資源過度利用以及自然環(huán)境變化,許多生境逐漸不適合馬鹿的生存與活動(dòng),由此導(dǎo)致野生種群數(shù)量下降,分布區(qū)退縮,部分地區(qū)馬鹿種群甚至出現(xiàn)斑塊化分布,近親繁殖、遺傳多樣性喪失的風(fēng)險(xiǎn)日益增大[10-11]。

      大興安嶺南麓高格斯臺(tái)罕烏拉國家級(jí)自然保護(hù)區(qū)(以下簡稱“高格斯臺(tái)保護(hù)區(qū)”)是我國重要的馬鹿分布區(qū),馬鹿平均密度為1.11只/km2,是目前野生馬鹿種群密度最高的地區(qū)[12-13],對(duì)野生馬鹿種群的恢復(fù)和歷史分布區(qū)的重建具有重要意義。因此,本研究通過分子糞便學(xué)技術(shù)對(duì)分布在高格斯臺(tái)保護(hù)區(qū)內(nèi)的馬鹿進(jìn)行遺傳學(xué)研究,評(píng)估馬鹿種群遺傳多樣性現(xiàn)狀,為馬鹿種群保護(hù)及健康狀況監(jiān)測(cè)等工作提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 樣品采集

      樣品均來自高格斯臺(tái)保護(hù)區(qū),保護(hù)區(qū)隸屬于內(nèi)蒙古赤峰市阿魯科爾沁旗。2021年12月—2022年1月,根據(jù)馬鹿在保護(hù)區(qū)的分布現(xiàn)狀,確定采樣區(qū)域(圖1)。選擇樣線調(diào)查法跟蹤馬鹿新鮮足跡鏈,并收集馬鹿新鮮糞便,同時(shí)GPS 定位。共采集新鮮糞便樣品 246 份,肌肉對(duì)照樣品1 份(來自野外發(fā)現(xiàn)的自然死亡雌性馬鹿個(gè)體)。所有樣品放置在超低溫冰箱-80 ℃保存。

      圖1 馬鹿糞便采樣點(diǎn)示意圖(內(nèi)蒙古高格斯臺(tái)保護(hù)區(qū))Fig.1 Fecal sample collection sites of red deer(Gaogesitai Reserve in Inner Mongolia)

      1.2 DNA提取及物種鑒定

      糞便DNA 提取使用QIAamp Fast DNA Stool Mini Kit(Qiagen,Germany),按操作說明進(jìn)行。選擇mtDNACyt b引物[14-15],L14724:5′-CGAGATCTGAAAAACCATCGTTG-3′;H15149:5′-AAACTGCAGCCCCTCAGAATGATATTTGTCCTCA-3′用于糞便DNA 的PCR 擴(kuò)增(400~500 bp)。擴(kuò)增體系20 μL:2×RapidTaqMaster Mix 10 μL,10 μmol/L Forward Primer 0.8 μL,10 μmol/L Reverse Primer 0.8 μL,25~50 ng/μL DNA 2 μL,ddH2O 6.4 μL。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性3 min;95 ℃變性30 s,53 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,35 個(gè)循環(huán);最后72 ℃終延伸5 min,4 ℃保存,每次擴(kuò)增均用肌肉DNA 作陽性對(duì)照。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR 擴(kuò)增結(jié)果后,將含有目的條帶的擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行純化并雙向測(cè)序。所得序列使用DNAStar 軟件進(jìn)行正反序列的拼接、比對(duì)和校正。最后在NCBI數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行Blast同源比對(duì),以確定糞便的物種來源。

      1.3 個(gè)體識(shí)別

      根據(jù)東北馬鹿已有研究結(jié)果,選取9 對(duì)微衛(wèi)星引物(ETH225、T501、T156、BM848、T530、C143、DM45、N、T507[16])用于東北馬鹿個(gè)體識(shí)別。所有引物合成時(shí),上游引物5′端均進(jìn)行熒光標(biāo)記(Fam、Hex、Tamra或Rox),下游引物不標(biāo)記(表1)。擴(kuò)增體系20 μL:2×RapidTaqMaster Mix 10 μL,10 μmol/L Forward Primer 0.8 μL,10 μmol/L Reverse Primer 0.8 μL,25~50 ng/μL DNA 6 μL,ddH2O 2.4 μL。反應(yīng)條件同物種鑒定方法。采用多管PCR 擴(kuò)增法,對(duì)每個(gè)位點(diǎn)進(jìn)行3~7 次重復(fù)的陽性PCR,得到的產(chǎn)物使用ABI 3730XL 測(cè)序儀(Applied Biosystems Inc.,America)進(jìn)行基因掃描和判讀等位基因大小。使用軟件Excel mircosatellite tool kit 尋找數(shù)據(jù)中相匹配的基因型[17]。判斷不同樣品屬于同一個(gè)體的依據(jù)是:所有位點(diǎn)上的基因型均相同,或只有1個(gè)位點(diǎn)的1個(gè)等位基因不同[18]。

      表1 用于東北馬鹿個(gè)體識(shí)別的9對(duì)微衛(wèi)星引物信息Tab.1 Details of nine microsatellite loci used for red deer individual identification

      1.4 性別鑒定

      性別鑒定使用SRY12 和BMC1009 兩對(duì)引物對(duì)糞便DNA 進(jìn)行復(fù)合擴(kuò)增,其中引物SRY12 擴(kuò)增Y 染色體中的SRY 區(qū)域片段,引物BMC1009 擴(kuò)增常染色體微衛(wèi)星位點(diǎn),作為反應(yīng)的陽性對(duì)照[19-20]。使用SRY 引物對(duì)所有樣本再次單獨(dú)擴(kuò)增,以避免因引物間互相干擾造成的擴(kuò)增失?。ū?)。根據(jù)PCR 結(jié)果中條帶的出現(xiàn)情況對(duì)東北馬鹿的性別進(jìn)行判別。

      表2 東北馬鹿性別鑒定引物信息Tab.2 Gender primer sequences of red deer

      1.5 遺傳數(shù)據(jù)分析

      對(duì)于mtDNA 序列,使用軟件DnaSP 6.12 分別計(jì)算變異位點(diǎn)數(shù)(variable sites,S)、單倍型數(shù)量(number of haplotypes,H)、單倍型多樣性(haplotype diversity,Hd)和核苷酸多樣性(nucleotide diversity,Pi)[21]。

      對(duì)于微衛(wèi)星數(shù)據(jù),使用GenAlEx 6.5將等位基因數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)化為分析軟件所需的各種格式,并計(jì)算等位基因數(shù)(number of alleles,Na)、有效等位基因數(shù)(effective allele number,Ne)、觀測(cè)雜合度(observed heterozygosity,Ho)和期望雜合度(expected heterozygosity,He)[22]。應(yīng)用Cervus 3.0 計(jì)算微衛(wèi)星位點(diǎn)的多態(tài)信息含量(polymorphism information contents,PIC);使用GIMLET 1.3.3[23]計(jì)算9 個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)的聯(lián)合PID值,即無親緣關(guān)系或同胞個(gè)體之間具有相同基因型的概率;使用Microchecker 2.2.0.3[24]檢測(cè)微衛(wèi)星位點(diǎn)是否存在無效等位基因(null allele)。使用GENEPOP 4.0[25]測(cè)算總體和每個(gè)位點(diǎn)是否偏離哈迪溫伯格平衡(Hardy-Weinberg equilibrium,HWE),同時(shí)檢驗(yàn)各位點(diǎn)間連鎖不平衡(linkage disequilibrium,LD),LD 和HWE 檢驗(yàn)通過馬爾科夫鏈法(Markov chain method)生成p值,并使用Bonferroni法對(duì)顯著性進(jìn)行校正[26]。

      2 結(jié)果

      2.1 物種鑒定及個(gè)體識(shí)別

      共采集糞便樣品246 份,其中成功提取DNA 樣品222 份,樣品利用率為90.24%。222 份樣品成功擴(kuò)增Cyt b基因,擴(kuò)增產(chǎn)物為424 bp。序列經(jīng)過正反拼接、校正及Blast 比對(duì)后,最終鑒定出209 份馬鹿DNA樣本。

      GIMLET 分析結(jié)果顯示,9 個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)的聯(lián)合Prod(unbias)為6.398×10-10,即使出現(xiàn)雙胞胎,誤判概率Prod(sibs)只有0.047 3%。當(dāng)2 個(gè)多態(tài)性最高的位點(diǎn)擴(kuò)增失敗時(shí),Prod(sibs)增加到0.460 0%,仍小于1.000 0%(圖2)。因此,9個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)中至少有7 個(gè)位點(diǎn)擴(kuò)增成功才可用于后續(xù)分析。209 份馬鹿樣品中獲得了203 個(gè)成功擴(kuò)增的微衛(wèi)星樣本,基因分型利用率為97.13%?;? 個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn),同時(shí)結(jié)合線粒體和性別鑒定結(jié)果,個(gè)體識(shí)別結(jié)果顯示 203份馬鹿糞便樣本屬于182只不同的馬鹿個(gè)體。

      圖2 9個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)按照pID順序的個(gè)體基因型相似概率曲線Fig.2 Probability of identity(pID)curve generated by nine microsatellite loci

      根據(jù)擴(kuò)增結(jié)果,最終在182 只馬鹿個(gè)體中鑒定出雌性馬鹿125 只,雄性馬鹿57 只,雌雄性比為2.19∶1。

      2.2 基于mtDNA的遺傳多樣性

      182 條Cytb序列(424 bp)共檢出5 個(gè)變異位點(diǎn),包括4個(gè)轉(zhuǎn)換位點(diǎn)和1個(gè)顛換位點(diǎn)(C/A,350 bp處),未發(fā)現(xiàn)插入或缺失位點(diǎn)。5個(gè)變異位點(diǎn)中,單一變異位點(diǎn)2 個(gè)(128、367 bp),簡約信息位點(diǎn)3 個(gè)(250、295、350 bp)。(G+C)整體含量較低,為37.8%,存在AT偏倚性,符合脊椎動(dòng)物線粒體堿基的組成特點(diǎn)。

      182 條序列共測(cè)定3 個(gè)單倍型,分布頻率分別為78.0%、21.4%和0.5%,研究地區(qū)整體單倍型多樣性指數(shù)(Hd)為(0.347±0.035),核苷酸多樣性指數(shù)(Pi)為(0.248±0.025)%。

      2.3 基于微衛(wèi)星標(biāo)記的遺傳多樣性

      根據(jù)多態(tài)信息含量(PIC)對(duì)9 個(gè)擴(kuò)增位點(diǎn)進(jìn)行篩選。當(dāng)PIC<0.250 時(shí),認(rèn)為多態(tài)性較低,故舍去C143位點(diǎn)。最終選擇8 個(gè)高度多態(tài)位點(diǎn)(PIC>0.500)的擴(kuò)增數(shù)據(jù)進(jìn)行后續(xù)分析(表3)。各位點(diǎn)檢測(cè)結(jié)果顯示未發(fā)現(xiàn)無效等位基因及等位基因丟失等情況,說明基因分型結(jié)果可靠,可用于后續(xù)分析。

      表3 8個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)的遺傳多樣性參數(shù)Tab.3 Genetic diversity indicators for the eight microsatellite loci

      Hardy-Weinberg 平衡檢測(cè)結(jié)果顯示,研究地區(qū)整體水平顯著偏離Hardy-Weinberg 平衡,但固定系數(shù)為負(fù)值(Fis=-0.062),證明不存在無效等位基因或近交的影響。連鎖不平衡分析結(jié)果顯示8 個(gè)位點(diǎn)間不存在連鎖不平衡,可進(jìn)行后續(xù)種群遺傳學(xué)分析。

      研究區(qū)域整體種群平均等位基因數(shù)(Na)為(7.40±0.47);平均有效等位基因數(shù)(Ne)為(4.40±0.30),有效等位基因與等位基因數(shù)二者差異顯著(p<0.01)。等位基因豐富度(AR)為4.537;平均多態(tài)信息含量(PIC)為0.691。平均期望雜合度(He)為(0.729±0.016);平均觀測(cè)雜合度(No)為(0.768±0.029),觀測(cè)雜合度與期望雜合度之間存在差異(p<0.05)。

      3 討論

      野生動(dòng)物的性比既是估計(jì)物種生存力的重要指標(biāo),又是描述種群結(jié)構(gòu)的重要參數(shù),深入了解珍稀瀕危野生動(dòng)物的性比對(duì)制定保護(hù)與管理策略具有重要指導(dǎo)意義[27]。本研究表明,大興安嶺南麓森林—草原過渡帶馬鹿種群雌雄性比為2.19∶1,與楊淼[28]和張沼等[29]對(duì)內(nèi)蒙古地區(qū)馬鹿的研究結(jié)果一致,均顯示雌性高于雄性,符合馬鹿一雄多雌的交配體制。

      本研究選擇線粒體與核微衛(wèi)星2 種分子標(biāo)記,從不同角度對(duì)種群遺傳多樣性狀況進(jìn)行評(píng)價(jià)。單倍型多樣性(Hd)與核苷酸多樣性(Pi)是衡量線粒體DNA 多樣性水平的重要參數(shù)[30]。已有學(xué)者利用線粒體Cytb基因?qū)︸R鹿部分亞種進(jìn)行遺傳多樣性研究,如劉鑫鑫[31]研究表明東北地區(qū)的馬鹿野生群體單倍型多樣性較高(Hd=0.586),核苷酸多樣性相對(duì)較低(Pi=0.305%);劉艷華等[32]研究表明西藏東南部分布的西藏馬鹿(Cervus elaphus wallichi)整體遺傳多樣性較高(Hd=0.897,Pi=2.781%);塔依爾江·麥麥提等[33]發(fā)現(xiàn)塔里木馬鹿(Cervus elaphus yarkandensis)3 個(gè)地理種群的遺傳多樣性不平衡(Hd=0.845,Pi=1.500%)。本研究在182 只馬鹿個(gè)體中發(fā)現(xiàn)3 個(gè)單倍型,單倍型多樣性(0.347)和核苷酸多樣性(0.248%)均低于西藏馬鹿、塔里木馬鹿及分布在黑龍江和吉林地區(qū)的馬鹿。根據(jù)對(duì)比國內(nèi)其他馬鹿亞種基于線粒體Cyt b基因的研究結(jié)果(表4),結(jié)合種群遺傳多樣性水平的判定標(biāo)準(zhǔn)(Hd≥0.500,Pi≥0.500%)[34-35],研究地區(qū)東北馬鹿線粒體DNA 多樣性水平處于中等偏低水平。

      表4 中國馬鹿種群遺傳多樣性參數(shù)Tab.4 Comparison of genetic diversity of red deer populations in China

      微衛(wèi)星位點(diǎn)的多態(tài)信息含量(PIC)是衡量遺傳標(biāo)記所提供信息含量的參數(shù),根據(jù)Botstein等[43]提出的多態(tài)信息含量標(biāo)準(zhǔn),本研究選擇的9 個(gè)微衛(wèi)星位點(diǎn)中僅有C143 位點(diǎn)PIC=0.180<0.250,表明C143 位點(diǎn)提供的遺傳信息相對(duì)匱乏,故最終確定其他8 個(gè)高度多態(tài)位點(diǎn)用于遺傳多樣性分析。研究結(jié)果顯示整體種群平均等位基因數(shù)(Na)為7.40,平均有效等位基因數(shù)(Ne)為4.40,二者差異顯著(p<0.01),可能存在等位基因丟失的風(fēng)險(xiǎn)。研究區(qū)域整體種群觀測(cè)雜合度(Ho)為0.768,期望雜合度(He)為0.729。雜合度作為有效量化遺傳多樣性水平的參數(shù)[44],與其他地區(qū)馬鹿亞種研究結(jié)果相比較,發(fā)現(xiàn)本研究地區(qū)馬鹿遺傳多樣性處于中等偏低水平。

      線粒體表達(dá)的遺傳多樣性水平低于微衛(wèi)星標(biāo)記,這可能與標(biāo)記方法本身有關(guān)。微衛(wèi)星標(biāo)記的進(jìn)化速度高于線粒體DNA。相比之下,線粒體DNA 的整體結(jié)構(gòu)、大小及基因排列相對(duì)保守,一般不發(fā)生重組。線粒體DNA 為單倍體母系遺傳,有效種群大小僅為核DNA 的1/4,因此,對(duì)瓶頸效應(yīng)等種群變化較為敏感[45],本研究表明大興安嶺南麓馬鹿種群歷史上可能經(jīng)歷了瓶頸效應(yīng)?;贑yt b測(cè)序結(jié)果可知,本研究檢出的單倍型數(shù)量相對(duì)較少,Hap3 僅有1 只個(gè)體構(gòu)成,稀有單倍型比例達(dá)33.33%。20世紀(jì)50年代,由于林業(yè)資源采伐、放牧和狩獵,本地區(qū)野生馬鹿種群數(shù)量急劇下降。直到本世紀(jì)初期,經(jīng)過合理的管理措施,馬鹿種群數(shù)量才逐漸恢復(fù)。因此,為了馬鹿種群的可持續(xù)發(fā)展,有必要對(duì)稀有單倍型實(shí)施監(jiān)測(cè),并且加強(qiáng)管理和保護(hù)該地區(qū)的馬鹿種群,防止遺傳多樣性進(jìn)一步下降,甚至喪失。

      致謝:感謝內(nèi)蒙古高格斯臺(tái)罕烏拉國家級(jí)自然保護(hù)區(qū)錢宏遠(yuǎn)局長、石光磊副局長對(duì)本研究調(diào)查工作的大力支持,感謝保護(hù)區(qū)業(yè)務(wù)部、資源部及科研管理部以阮行舟、寶音達(dá)來等為主要代表的全體參與者的熱心幫助和大力配合。

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