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      Wnt/β-catenin 信號通路在牙損傷修復中的作用

      2023-03-28 02:59:38史聰翀田婧君
      生物醫(yī)學工程與臨床 2023年1期
      關鍵詞:切牙牙本質(zhì)牙髓

      史聰翀,謝 濤,田婧君,楊 雁

      外傷、齲損等可造成牙損傷繼而引起牙髓壞死甚至牙松動脫落, 嚴重影響患者的面部美觀和身心健康,甚至誘發(fā)醫(yī)療糾紛。據(jù)統(tǒng)計,中國約有5 億人患有不同程度的牙缺失[1],但有限的修復方式及諸多副作用難以滿足臨床需求, 因此如何有效實現(xiàn)或加快牙組織損傷修復成為亟待解決的問題。 牙本質(zhì)既是保護牙髓的有力屏障,又具有再生修復的生理基礎,因此誘導牙本質(zhì)再生是重建完整牙結(jié)構的重要內(nèi)容,也是實現(xiàn)全牙器官再生的突破口。 牙間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSC)定向分化為成牙本質(zhì)細胞的過程,伴隨一系列與增殖分化相關基因的時空表達及精密的程序性調(diào)控機制,是研究牙本質(zhì)發(fā)育及修復再生的關鍵內(nèi)容。 Wnt/β-catenin 信號通路是一條在不同物種間相似、在進化上相對保守的信號通路之一,目前認為Wnt 通路主要有3 種途徑。 經(jīng)典Wnt通路在牙發(fā)育的多個階段發(fā)揮重要作用[2~4]。 前期研究證實Wnt/β-catenin 信號通路在調(diào)控成年小鼠切牙MSC[5,6]的增殖及分化中發(fā)揮非常重要的作用,但該通路對牙損傷后的修復作用卻鮮有報道[7~10]。 故筆者研究旨在通過建立切牙損傷小鼠模型, 并通過Wnt/βcatenin 信號通路激活劑氯化鋰(LiCl)及其抑制劑Dickkopf 相關蛋白1(Dickkopf 1,DKK1)干預小鼠切牙損傷模型[11,12],采用蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin,HE)染色法從大體形態(tài)學觀察切牙損傷修復情況;蛋白免疫印跡(Western blot)和定量反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈式反應 (quantificational reverse transcription-polymerase chain reaction,qRT-PCR)檢測Wnt10a、人體內(nèi)有AXIN2 編碼的蛋白(Axis inhibition protein 2,Axin2)[13]、βcatenin 及牙本質(zhì)涎磷蛋白(dentin sialophosphoprotein,DSPP)的表達;在Wnt/β-catenin 信號通路激活與抑制狀態(tài)下觀察牙本質(zhì)形成相關因子的變化,分析牙本質(zhì)形成與Wnt/β-catenin 信號通路被激活或抑制之間是否存在相關性;同時明確在Wnt 家族中Wnt10a 與牙損傷后牙本質(zhì)修復密切相關;通過小鼠切牙損傷實驗初步研究Wnt/β-catenin 信號通路在牙損傷修復中的作用,為臨床應用及優(yōu)化牙再生策略等組織工程技術領域的發(fā)展提供更多的動物體內(nèi)實驗數(shù)據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 實驗材料

      1.1.1 實驗動物

      選擇雌性昆明小鼠40 只,鼠齡6 ~8 周,體質(zhì)量18 ~22 g。由昆明醫(yī)科大學實驗動物學部提供,動物使用許可證號SYXK(滇)K2015-0002。按照常規(guī)方法飼養(yǎng)。

      1.1.2 主要試劑及器材

      DKK1 重組蛋白(H00022943-P01)(臺灣Abnova,中國);LiCl(C8381)和HE 染色試劑盒(北京Solaibio,中國);Wnt10a、Axin2、β-catenin 和DSPP 抗體(Millipore,美國); Wnt10a、Axin2、β-catenin 和DSPP引物 (擎科生物公司, 中國); qRT-PCR 試劑盒(Genecopoeia,美國)。

      磨牙手柄(蘇州美鸚電子科技有限公司,中國);熒光顯微鏡(Zeiss,德國);熒光定量PCR 儀(Thermo Fisher,美國)。

      1.2 方法

      1.2.1 實驗分組與切牙損傷小鼠模型建立

      實驗采用完全隨機法分為Control 組、Model 組、LiCl 組(Wnt/β-catenin 信號通路激活組)和DKK1 組(Wnt/β-catenin 信號通路抑制組)4 組, 每組10 只。Control 組:無切牙損傷。 除Control 組外,其余組使用臨床慢速機頭在小鼠右側(cè)切牙制備缺損,同時使用無菌0.9%氯化鈉溶液(生理鹽水)冷卻,鉆至肉眼觀察到明顯的紅色穿髓點,缺損直徑為1.0 ~1.5 mm,深度為0.5 ~1.0 mm。

      1.2.2 治療方法

      Control 組:不使用藥物。Model 組:在切牙損傷側(cè)、牙周膜局部注射0.9%氯化鈉溶液(生理鹽水)。LiCl 組:在切牙損傷側(cè)、牙周膜局部注射LiCl(0.75 g/L),劑量0.2 mL/kg,1 次/2 天。DKK1 組:在切牙損傷側(cè)、牙周膜局部注射DKK1 蛋白,劑量0.2 μg/kg,1 次/2 天。 每天觀察并記錄小鼠切牙愈合情況,于切牙損傷后第7 天脫頸處死所有小鼠。 另外5 只小鼠取損傷切牙側(cè)牙髓進行Western blot 和qRT-PCR 檢測, 檢測步驟如下所述。

      1.2.3 病理檢查

      每組分別取5 只處死小鼠, 取損傷側(cè)完整切牙;去除附著在上面的軟組織,將其置于4%多聚甲醛溶液中4 ℃條件下過夜,于10%乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetie acid,EDTA)(pH 7.4)中脫鈣處理4周,石蠟包埋制成切片,行HE 染色。觀察成牙本質(zhì)細胞及修復性牙本質(zhì)的形成情況。

      1.2.4 定量反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈式反應檢測

      通 過qRT-PCR 分 別 檢 測Wnt10a、β-catenin、Axin2 及DSPP 的mRNA 水平變化。具體方法如下:每組分別取5 只處死小鼠。每組分別取1 份損傷側(cè)新鮮牙髓組織采用Trizol 法提取總RNA,然后進行逆轉(zhuǎn)錄反應,再用2×Universal Blue SYBR Green qPCR Master Mix 試劑盒進行qPCR 反應, 反應程序為:95 ℃預變性1 min;95 ℃變性20 s,55℃退火20 s,72 ℃延伸30 s,40 個循環(huán);72 ℃延伸5 min;4 ℃條件下保存。

      相關引物序列如下:Wnt10a,正向5'-GGCAGATGGAGGTGTGTGTG-3',反向5'-AGGAAGTATGGCCGGGTGTT-3';β-catenin,正向5'-CCTTCACAACCTTTCTCACCAC-3',反向5'-ACAGACAGCACTTTCAGCACTC-3';Axin2,正向5'-TGGACTTCTGGTTTGCTTGTAA-3', 反向5'-TCTCGTATGTAGGTCTTGGTGG-3';DSPP,正向5'-CTCTGTGGCTGTGCCTCTTCTA-3',反向5'-CAGTGTTCCCCTGTTCGTTTAC-3';GAPDH,正向5'-CTTTGGCATTG TGGAAGGGCTC-3',反向5'-GCAGGGATGATGTTCTGGGCAG-3'。

      1.2.5 Western blot 檢測

      按Western blot 常規(guī)操作檢測Wnt10a、β-catenin、Axin2 及DSPP 蛋白水平,相關抗體均按照1 ∶1 000稀釋。 具體方法如:取一份牙髓組織經(jīng)過提取總蛋白→蛋白濃度測定和變性→SDS-PAGE 電泳→轉(zhuǎn)膜→封閉→孵育抗體→顯影。

      1.3 統(tǒng)計學方法

      應用SPSS 13.0 軟件進行分析。 所有的數(shù)值均采用均數(shù)± 標準差表示,多個樣本比較時,用單因素方差分析(One-Way ANOVA),用Dunnet-t 檢驗進行兩兩比較處理。 P <0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。 采用GraphPad Prism 8.0 軟件制作柱狀圖。

      2 結(jié)果

      2.1 4 組小鼠牙本質(zhì)-牙髓損傷后的恢復情況比較

      用磨牙鉆頭在小鼠切牙模擬穿髓后可見明顯缺損(圖1A)。 損傷后第4 天各組均有切牙恢復的小鼠出現(xiàn),損傷后第6 天LiCl 組10 只小鼠切牙缺損全部恢復, 第7 天Model 組10 只小鼠均未觀察到切牙缺損;但DKK1 組至損傷后第7 天只有3 只小鼠切牙恢復, 與Model 組對比,LiCl 組恢復速度顯著加快,DKK1 組則明顯減慢(圖1B)。

      圖1 小鼠切牙恢復情況大體病理圖和恢復曲線Fig.1 Diagrams of gross pathological and restoration curve of incisor in mice

      2.2 4 組大鼠牙損傷病理組織比較

      HE 染色結(jié)果顯示,與Control 組(圖2A1)比較,LiCl 組牙釉質(zhì)和牙本質(zhì)均得到良好修復 (圖2C1);Model 組次之,損傷處牙釉質(zhì)仍有小面積空白區(qū)(圖2B1);DKK1 組損傷處牙釉質(zhì)有大面積的空白區(qū),幾乎未修復(圖2D1)。 Control 組成牙本質(zhì)細胞、牙髓細胞排列整齊(圖2A2),LiCl 組成牙本質(zhì)細胞與牙髓細胞交界處細胞數(shù)量增加,圖片顯示呈一條深染的藍線(圖2C2),Model 組也有此現(xiàn)象(圖2B2),但不及LiCl組明顯,Control 組和DKK1 組則無此現(xiàn)象(圖2D2)。

      圖2 4 組切牙損傷HE 染色對比Fig.2 Comparison of HE staining of incisor injury in 4 groups

      2.3 4 組Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP mRNA 表達比較

      RT-PCR 結(jié)果表示,Control 組與Model 組相比,Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP mRNA 表達水平均下降,且β-catenin 和Axin2 下降顯著(P<0.05);LiCl組與Model 組相比,Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP表達水均上升,而DKK1 組均下降,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。 見表1。

      表1 4 組Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP mRNA 表達水平比較Tab.1 Comparison of mRNA expression levels of Wnt10a,β-catenin,Axin2 and DSPP in 4 groups

      2.4 4 組Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP 蛋白表達比較

      Western blot 結(jié)果顯示,與Control 組相比,Model組Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP 蛋白表達水平均下降,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05);與Model 組相比,Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP 蛋白表達水平在LiCl 組上升,在DKK1 組下降,差異均有統(tǒng)計學 意義(P<0.05)。 見表2、圖3。

      表2 4 組Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP 蛋白表達水平比較Tab.2 Comparison of protein expression levels of Wnt10a,β-catenin,Axin2 and DSPP in 4 groups

      圖3 4 組Wnt10a、β-catenin、Axin2 和DSPP 蛋白表達水平電泳圖Fig.3 Electrophoretogram of Wnt10a, β-catenin, Axin2 and DSPP protein expression levels in 4 groups

      3 討論

      牙損傷是人類常見的疾病,可引發(fā)多種不良并發(fā)癥,不僅影響人們發(fā)音、咬合、咀嚼等功能,還可因美觀問題帶來一系列的心理問題;但目前臨床有限的修復方式越來越難以滿足患者的期望值,因此牙損傷后如何快速有效的修復一直深受科學研究領域的重視。筆者研究利用小鼠切牙損傷模型作為研究對象,通過Wnt/β-catenin 途徑的LiCl 活化或DKK1 抑制,研究該通路在牙損傷修復過程中的作用。

      小鼠切牙在一生中不斷生長,這種持續(xù)的生長包括了由上皮干細胞產(chǎn)生的成釉細胞和由MSC 分化而來的牙本質(zhì)細胞和牙髓細胞的持續(xù)更新,位于切牙近端區(qū)域的MSC, 首先形成增殖活躍的轉(zhuǎn)運擴增細胞(transit amplifying cells,TAC), 再分化形成牙髓細胞和成牙本質(zhì)細胞, 牙本質(zhì)由成牙本質(zhì)細胞礦化而成,以保持終身和持續(xù)的切牙生長。這為研究牙損傷修復提供了極佳的模型[14~18]。 有實驗研究發(fā)現(xiàn),小鼠切牙MSC 增殖分化的周期大約為1 個月, 筆者實驗的前期研究[19]利用譜系追蹤也證實了這一點,結(jié)合實驗中具體觀察到的結(jié)果,將實驗周期設定為1 周,旨在研究牙損傷修復過程中Wnt/β-catenin 通路是否為重要的影響因素。DSPP 是牙本質(zhì)形成的特異性標記蛋白[20]。β-catenin、Axin2 是存在于多種細胞中Wnt/β-catenin通路的重要調(diào)節(jié)因子,能在胚胎發(fā)育過程中階段性特異性地表達[21~23]。 該通路的重要成員Wnt10a 也在牙發(fā)育中發(fā)揮重要作用,Wnt10a 與根分叉的形成密切相關[24],Wnt10a 基因突變可引起先天性缺牙[10]。 此外,Wnt10a 在分泌性成牙本質(zhì)細胞中被檢測到, 且能與成牙本質(zhì)細胞的DSPP 共聚集[25]。 所以筆者實驗的qRT-PCR及Western blot 選擇這幾個重要因子作為檢測Wnt/β-catenin 通路變化及牙本質(zhì)形成的指標。

      筆者實驗發(fā)現(xiàn), 切牙損傷后第7 天,4 組的修復情況出現(xiàn)較大差異,LiCl 組修復情況最為理想,DKK1組幾乎未修復, 提示W(wǎng)nt/β-catenin 通路在切牙損傷后的修復過程中發(fā)揮重要作用,激活該通路可加快局部修復過程, 反之則出現(xiàn)抑制。 HE 染色顯示,在Model 組和LiCl 組中,成牙本質(zhì)細胞與牙髓細胞交界處出現(xiàn)染色加深、 細胞數(shù)量增加的現(xiàn)象,LiCl 組更為明顯,推測與損傷后MSC 增殖分化加快修復有關,激活Wnt/β-catenin 通路可加速小鼠牙本質(zhì)-牙髓損傷修復過程,反之則減慢。 Western blot 和qRT-PCR 檢測Wnt/β-catenin 通路相關因子表達結(jié)果均顯示,Li-Cl 干預可以顯著提高Axin2 及β-catenin mRNA 水平和蛋白水平表達, 且遠高于DKK1 組及Model 組。DKK1 干預可以顯著降低Axin2 及β-catenin mRNA水平和蛋白水平表達,且遠低于Model 組。 結(jié)果提示LiCl 干預可以明顯激活Axin2 和β-catenin, 同樣在DKK1 干預的情況下可以明顯抑制Axin2 和βcatenin, 說明牙周膜局部注射LiCl、DKK1 是明確可以影響切牙中Wnt/β-catenin 以影響切牙中信號通路的激活或者抑制。在LiCl 組,Wnt10a 及DSPP 的表達明顯高于Control 組,DKK1 組則相反, 提示W(wǎng)nt/βcatenin 通路對切牙損傷后的修復和調(diào)控DSPP 的表達相關。 同時在筆者實驗中,對多個Wnt 家族成員進行檢驗,證實Wnt10a 在牙損傷修復的過程中變化最為明顯,且與DSPP 的變化高度一致,提示W(wǎng)nt10a 可能是DSPP 的上游調(diào)節(jié)蛋白,調(diào)控DSPP 的表達,這與Yamashiro T 等[25]體外實驗研究結(jié)果一致。 然而,對于Wnt10a 如何調(diào)控DSPP 的表達, 繼而影響牙損傷后修復的過程,是否存在和其他信號通路的協(xié)同作用尚需進一步的實驗研究。

      綜上,筆者實驗成功構建了切牙牙本質(zhì)-牙髓損傷小鼠模型, 通過牙周膜局部注射0.2 mL/kg 劑量的LiCl 溶液 (0.75 g/L) 或注射0.2 μg/kg 劑量的DKK1蛋白可成功激活或抑制牙本質(zhì)-牙髓損傷小鼠模型的Wnt/β-catenin 信號通路。 通過多種實驗方法 (RTPCR、Western blot、HE 染 色 等), 檢 測Wnt10a、βcatenin、Axin2 和DSPP mRNA 及蛋白水平表達結(jié)果發(fā)現(xiàn),Wnt/β-catenin 信號通路在切牙損傷后的修復過程中確實發(fā)揮重要作用,激活該通路能加快局部修復過程,反之則會抑制修復過程;同時Wnt10a 明顯參與了這一過程,作為DSPP 的上游調(diào)節(jié)因子,其可能通過Wnt/β-catenin 通路激活后促進DSPP 蛋白的表達, 進而促進修復性牙本質(zhì)的形成及成熟和鈣化,但其深入的分子機制需進一步設計相關的實驗進行研究。 筆者研究豐富了對Wnt/β-catenin 通路的相關研究,為后續(xù)實驗奠定了基礎,也為臨床牙損傷修復治療的研究提供了新線索。

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