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    木薯查爾酮合酶MeCHS基因家族特征與表達分析

    2023-03-18 08:07:20安飛飛齊劍雄陳松筆羅秀芹蔡杰薛晶晶
    熱帶作物學(xué)報 2023年12期
    關(guān)鍵詞:查爾類黃酮塊根

    安飛飛 齊劍雄 陳松筆 羅秀芹 蔡杰 薛晶晶

    摘??要:查爾酮合酶(chalcone?synthase,?CHS)是類黃酮合成途徑的第一個限速酶,在植物花色形成、生長發(fā)育以及非生物脅迫中發(fā)揮著重要作用。為明確木薯MeCHS基因家族的特性及在木薯塊根采后腐爛(PPD)中的表達,本研究利用生物信息學(xué)方法對木薯MeCHS基因家族成員進行理化性質(zhì)、蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)等分析。采用實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測MeCHS基因在不同品種、不同組織及塊根PPD過程中的表達情況,同時克隆并構(gòu)建3個高表達的MeCHS基因的亞細胞定位載體并進行煙草瞬時轉(zhuǎn)化以確定其定位。在木薯基因組中共鑒定出5個MeCHS基因家族成員,蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)以α-螺旋和不規(guī)則卷曲為主。qRT-PCR分析發(fā)現(xiàn):MeCHS基因表達具有明顯的組織特異性,在莖中表達水平最高;在木薯中主要表達的MeCHS基因為MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3,且3個基因隨著SC8塊根貯藏時間的延長表達量逐步升高。將成功克隆得到的MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3基因經(jīng)農(nóng)桿菌介導(dǎo)瞬時轉(zhuǎn)化煙草下表皮細胞,顯微觀察表明3個基因均定位于細胞質(zhì),與預(yù)測結(jié)果相符。該研究結(jié)果可為進一步揭示木薯MeCHS基因家族的功能與提高木薯塊根耐PPD能力提供理論依據(jù)。

    關(guān)鍵詞:木薯;查爾酮合酶;qRT-PCR;克?。槐磉_分析中圖分類號:S533;S435.33??????文獻標識碼:A

    Characteristics?and?Expression?Analysis?Of?Chalcone?Synthase?MeCHS?Family?in?Cassava

    AN?Feifei1,2,?QI?Jianxiong1,?CHEN?Songbi2,?LUO?Xiuqin1,?CAI?Jie2,?XUE?Jingjing2*

    1.?Tropical?Crops?Genetic?Resources?Institute,?Chinese?Academy?of?Tropical?Agricultural?Sciences?/?Key?Laboratory?of?Conservation?and?Utilization?of?Cassava?Germplasm?Resources,?Ministry?of?Agriculture?and?Rural?Affairs,?Haikou,?Hainan?571101,?China;?2.?Sanya?Research?Institute,?Chinese?Academy?of?Tropical?Agricultural?Sciences,?Sanya,?Hainan?572025,?China

    Abstract:?Chalcone?synthase?(CHS)?is?the?first?limiting?enzyme?in?flavonoid?synthesis?pathway?and?plays?an?important?role?in?flower?color?formation,?growth?and?development,?and?abiotic?stress.?In?order?to?clarify?the?characteristics?of?cassava?MeCHS?gene?family?and?its?expression?in?cassava?postharvest?physiological?deterioration?(PPD),?the?MeCHS?gene?family?was?analyzed?using?bioinformatics,?including?physicochemical?property?and?subcellular?location.?qRT-PCR?was?carried?out?to?detect?the?expression?levels?of?MeCHS?genes?in?different?varieties,?different?tissues?and?PPD?process.?The?genes?with?significant?relative?expression?were?selected?for?cloning?and?subcellular?localization?verification.?A?total?of?5?MeCHS?gene?members?were?identified?in?the?cassava?genome.?The?secondary?structure?analysis?showed?that?the?MeCHS?gene?family?was?mainly?composed?of?α-helices?and?random?coils.?Tissue?specific?expression?indicated?that?the?expression?levels?of?MeCHS?genes?were?higher?in?stems.?The?major?expressed?MeCHS?genes?in?cassava?were?MeCHS1,?MeCHS2?and?MeCHS3;?and?the?expression?levels?of?these?three?genes?were?gradually?increase?with?PPD.?MeCHS1,?MeCHS2?and?MeCHS3?were?successfully?cloned;?and?fluorescence?transient?expression?showed?that?MeCHS1,?MeCHS2?and?MeCHS3?were?localized?in?the?cytoplasm,?which?was?consistent?with?the?predicted?results.?This?study?will?provide?a?theoretical?basis?for?further?revealing?the?function?of?MeCHS?gene?family?and?improving?the?PPD?tolerance?of?cassava.

    Keywords:?cassava;?chalcone?synthase;?qRT-PCR;?cloning;?expression?analysis

    DOI:?10.3969/j.issn.1000-2561.2023.12.003

    類黃酮是植物體內(nèi)廣泛存在的一類重要的次生代謝物,主要包括花青素、異黃酮、黃酮醇等。查爾酮合酶(CHS)是催化類黃酮生物合成的第一個限速酶,催化4-香豆酰輔酶A與丙酚CoA生成4,5,7-三羥基黃烷酮,產(chǎn)生各種黃酮類化合物,也可在查爾酮異構(gòu)酶的催化下衍生成各類黃酮化合物[1]。目前CHS基因在擬南芥、水稻、甜橙、鐵皮石斛、蘋果、虎杖等物種中得到鑒定和克隆[2-7]。CHS基因也參與植物對非生物脅迫的響應(yīng),對花色形成、生長發(fā)育、激素調(diào)節(jié)都會產(chǎn)生影響[8]。研究發(fā)現(xiàn)CHS基因的表達受茉莉酸甲酯、脫落酸、水楊酸的誘導(dǎo)[9-11],同時過表達該類基因可提高植物的耐鹽及耐旱性[12-13]。

    木薯(Manihot?esculenta?Crantz)是世界亞熱帶和熱帶地區(qū)近10億人的主要糧食作物,在我國“一帶一路”倡議中發(fā)揮積極作用[14]。木薯塊根在收獲后1~3?d就開始發(fā)生腐爛,稱為“采后生理腐爛”(postharvest?physiological?deterioration,?PPD)[15]。木薯PPD是由塊根收獲時的機械傷害引起的一系列生理生化反應(yīng),屬于植物非生物脅迫的一種。傷害可誘導(dǎo)類黃酮化合物積累[16-17],表兒茶素可以作為PPD的標記代謝物[18],柚皮苷和山奈酚可抑制PPD過程中超氧化物歧化酶(SOD)活性[19],但具體的作用機制尚未明晰。推測塊根類黃酮代謝物積累抑制了機械傷害帶來的活性氧(ROS)爆發(fā),進而延緩塊根PPD發(fā)生。CHS作為類黃酮生物合成的第一個限速酶,了解其結(jié)構(gòu)特征及其表達特性對探索類黃酮生物合成以及木薯塊根發(fā)生腐爛的遺傳調(diào)控至關(guān)重要。目前,木薯CHS基因家族尚未報道,且其在木薯塊根PPD調(diào)控中的機制研究甚少,前期研究發(fā)現(xiàn)抑制木薯MeCHS3的表達,其塊根PPD程度顯著加快[17]。因此,本研究利用木薯和擬南芥植物基因組數(shù)據(jù)庫,通過生物信息學(xué)方法篩選和鑒定木薯CHS基因家族成員,并對木薯CHS基因家族各成員的理化性質(zhì)、亞細胞定位等進行分析,初步揭示其在不同品種、不同組織及塊根PPD中的表達模式,同時鑒定MeCHS1~MeCHS3的亞細胞定位,為進一步揭示木薯CHS基因家族功能和提高木薯塊根的耐PPD能力奠定理論基礎(chǔ)。

    1??材料與方法

    1.1??材料

    本研究所選用的木薯材料為木薯品種SC5、SC8、SC9、SC14、SC102和SC6068,采自中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶作物品種資源研究所國家木薯種質(zhì)資源圃?;ā⑷~片、葉柄、腋芽、莖、須根、脆性胚性愈傷組織(FEC)、塊根等不同組織均來自于SC8。SC8于2022年3月種植于國家木薯種質(zhì)資源圃(儋州),植后10個月的木薯塊根用于PPD觀察。用于亞細胞定位的本生煙由本實驗室保存。

    1.2??方法

    1.2.1??MeCHS基因家族的序列獲得和比對??從擬南芥基因組網(wǎng)站TAIR(https://www.Arabidopsis.?org/)下載CHS基因的編碼序列,導(dǎo)入木薯基因組數(shù)據(jù)庫進行BLAST搜索,下載木薯CHS基因全長、CDS和蛋白序列。同時使用DNAMAN軟件對木薯CHS基因家族成員的氨基酸序列進行多重比對,利用HMMER在線軟件(https://www.?ebi.ac.?uk/Tools/hmmer/)對木薯CHS基因家族成員進行結(jié)構(gòu)域篩選,剔除不含特定結(jié)構(gòu)域的基因。

    1.2.2??MeCHS基因家族理化性質(zhì)分析??利用ExPASy在線軟件(https://web.expasy.org/prot param/)分析MeCHS基因的理化性質(zhì)。運用Cell-?PLoc?2.0(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/Cell-?PLoc-2/)和Prabi(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/)在線軟件分別預(yù)測MeCHS基因家族成員的亞細胞定位和α-螺旋、β-轉(zhuǎn)角、不規(guī)則卷曲等二級結(jié)構(gòu)。利用SingalP(https://services.healthtech.dtu.dk/servi ces/SignalP-5.0/)在線軟件進行蛋白質(zhì)信號肽預(yù)測。

    1.2.3??MeCHSs在不同組織、不同品種及PPD中的表達分析??參照RNAprep?Pure多糖多酚植物總RNA提取試劑盒(DP441,天根)提取SC8不同組織[花、幼葉、嫩葉、老葉、葉柄、腋芽、莖、須根、FEC、貯藏根(4個月、7個月、10個月)]、不同品種葉片(SC5、SC8、SC9、SC14、SC102、SC6068)以及SC8采后貯藏過程中的塊根(0、1、3、5、7?d)總RNA。cDNA第一鏈的合成參照Thermo?Scientific?RevertAid?RT試劑盒(K1691,賽默飛)說明書進行。設(shè)計MeCHSs的qRT-PCR特異引物(表1),以MeActin基因為內(nèi)參,進行qRT-PCR反應(yīng),每個樣品重復(fù)測定3次,使用2–ΔΔCT法計算MeCHSs的相對表達情況。

    1.2.4??木薯MeCHS亞細胞定位??設(shè)計MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3的全長擴增引物(表1),以SC8葉片cDNA為模板,擴增MeCHS片段,經(jīng)回收后,采用Nimble?Cloning試劑盒將片段與pNC-Green-SubN空載體連接,具體操作過程參照YAN等[20]的方法。經(jīng)過轉(zhuǎn)化Top10感受態(tài)細胞、PCR篩選陽性單克隆,測序驗證正確后的載體即為亞細胞定位所需的重組載體,測序引物如表1所示。瞬時轉(zhuǎn)化煙草,3?d后使用激光共聚焦顯微鏡觀察MeCHS的定位情況,具體操作過程參照AN等[21]的方法。

    1.3??數(shù)據(jù)處理

    采用Excel?2013和DPS?v7.05統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行分析,差異顯著性標準采用新復(fù)極差法(Duncan)。

    2??結(jié)果與分析

    2.1??MeCHS基因家族成員理化性質(zhì)分析

    從木薯基因組中共鑒定到5個CHS家族基因,分別命名為MeCHS1~MeCHS5。通過氨基酸序列比對分析發(fā)現(xiàn),MeCHS蛋白序列相似性為48.60%,5個MeCHS均含CHS基因家族的4個保守活性位點氨基酸殘基(箭頭位置),4個MeCHS均含CHS基因家族特征氨基酸序列WGVLFGFGPGLT(黑色方框),而MeCHS5特征氨基酸序列為LGILFGCGPGLT(圖1)。由表2可知,5個MeCHS蛋白的編碼氨基酸數(shù)目基本相同,在390個左右;分子質(zhì)量均在43.00?kDa左右,理論等電點在6.03~6.34之間。在5個MeCHS蛋白中,MeCHS4蛋白和MeCHS5蛋白的不穩(wěn)定指數(shù)均大于40.0,屬于不穩(wěn)定蛋白。

    2.2??MeCHS蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)分析及亞細胞定位預(yù)測

    利用Prabi工具進行MeCHS蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)分析,結(jié)果如表3所示。5個MeCHS蛋白均以α-螺旋(占比43.48%~48.34%)和不規(guī)則卷曲(占比32.22%~35.19%)為主,其次有延伸鏈和β-轉(zhuǎn)角,且各類二級結(jié)構(gòu)所占比例相近,說明木薯MeCHS蛋白家族的5個蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)非常相似。利用SingalP?5.0軟件在線分析表明,5個MeCHS蛋白均沒有信號肽。亞細胞定位預(yù)測結(jié)果顯示,5個MeCHS蛋白在細胞質(zhì)中表達(表3)。

    2.3??MeCHS基因家族表達分析

    2.3.1??不同木薯品種中MeCHSs基因的表達分析??MeCHS基因在不同木薯品種(SC5、SC8、SC9、SC14、SC102、SC6068)葉片中的表達如圖2所示。結(jié)果顯示,以SC5葉片為對照,MeCHS2和MeCHS3在SC8的葉片中表達最高,MeCHS1和MeCHS4在SC14的葉片中表達最高,MeCHS5在不同品種的葉片中幾乎均不表達。結(jié)果表明MeCHS基因的表達具有明顯的品種差異性。

    2.3.2??MeCHSs在葉片、莖等不同組織中的表達分析??利用木薯品種SC8不同組織(葉片、葉柄、腋芽、莖、花、FEC、須根、塊根)的cDNA進行MeCHS基因表達檢測。qRT-PCR分析結(jié)果顯示,以SC8葉片為對照,MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3在木薯莖中表達量最高,腋芽和花次之,在葉柄、須根和塊根表達量較低,具有明顯的組織特異性。MeCHS4和MeCHS5在SC8各個組織中表達量均不高(圖3)。

    2.3.3??MeCHSs在木薯塊根采后腐爛過程中的表達分析??在SC8塊根采后不同時間(0、1、3、5、7?d)對MeCHS基因家族成員進行qRT-PCR分析(圖4)。MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3隨著SC8塊根貯藏時間的延長表達量逐步升高,其中MeCHS2上升幅度最大,MeCHS4和MeCHS5在SC8木薯塊根貯藏過程中幾乎無變化,推測MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3參與塊根PPD調(diào)控過程。

    2.4??MeCHSs克隆及亞細胞定位

    根據(jù)已經(jīng)獲得的MeCHS1~MeCHS3基因的CDS區(qū)在線設(shè)計基因特異性引物,以SC8塊根cDNA為模板進行PCR擴增。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測得到1200?bp大小的特異條帶(圖5),經(jīng)比對,克隆獲得的MeCHS2和MeCHS3基因的CDS序列與Phytozome木薯基因組公布數(shù)據(jù)一致,而MeCHS1基因的CDS序列與數(shù)據(jù)庫存在4個堿基變化,但是不影響編碼的蛋白質(zhì)序列,這可能是由于不同木薯品種導(dǎo)致的堿基差異。

    為進一步確認MeCHS1~MeCHS3蛋白的亞細胞定位,將攜帶35S::GFP::MeCHS1~MeCHS3質(zhì)粒的農(nóng)桿菌注射煙草葉片下表皮,3?d后取注射部位周邊直徑1?cm范圍內(nèi)的葉片,在激光共聚焦顯微鏡下觀察葉片下表皮細胞中綠色熒光蛋白的定位,結(jié)果如圖6所示。綠色熒光信號表明35S::GFP::MeCHS1~MeCHS3融合蛋白均集中在細胞質(zhì)中,該結(jié)果與亞細胞定位預(yù)測結(jié)果一致。

    3??討論

    CHS是植物類黃酮合成途徑中的關(guān)鍵酶,也是與苯丙酮代謝有關(guān)的酶。到目前為止,已從白木香[22]、矮牽牛[23]等物種中分離鑒定出CHS基因,其中雙子葉植物中的CHS基因家族數(shù)目較多,如辣椒中有7個CHS基因[24],番茄中有8個CHS基因[25],而在木薯中鑒定出5個MeCHS基因。由此可見,不同物種中CHS基因在數(shù)量上存在差異,這可能與不同物種基因組大小及物種進化有關(guān)。通過生物信息學(xué)對MeCHS蛋白質(zhì)進行理化性質(zhì)分析,發(fā)現(xiàn)MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3蛋白的理化性質(zhì)并無太大差別,而MeCHS4、MeCHS5蛋白在蛋白穩(wěn)定性上差別較大,屬于不穩(wěn)定蛋白,這可能是MeCHS4與MeCHS5基因在SC8木薯各組織及塊根PPD過程中不表達的原因。

    對木薯CHS基因家族進行蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)預(yù)測發(fā)現(xiàn),MeCHS蛋白二級結(jié)構(gòu)以α-螺旋和無規(guī)卷曲為主,β-轉(zhuǎn)角則相對較少,這一結(jié)果與葡萄CHS蛋白的研究結(jié)果一致[26]。亞細胞定位預(yù)測顯示,木薯CHS蛋白主要定位于細胞質(zhì)中,煙草瞬時轉(zhuǎn)化顯示MeCHS1、MeCHS2和MeCHS定位于細胞質(zhì)中,與預(yù)測結(jié)果相符,這與紅仁核桃中JrCHS蛋白質(zhì)的定位結(jié)果一致[27]。章妮等[28]研究發(fā)現(xiàn)毛竹CHS蛋白定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng),少數(shù)定位于細胞質(zhì)。木薯CHS基因可能大多在細胞質(zhì)中起作用,但是不同物種中CHS基因家族成員在細胞器中的分布也存在一定差異。

    CHS基因的表達與器官形態(tài)建成、功能分化有著密切關(guān)系,由于表達模式的差異,使其表達具有組織特異性[26]。研究表明人參CHS基因主要在葉片中表達[9],杧果CHS1基因的相對表達量在葉和花中較高[29],葡萄CHS基因主要在根中表達[26]。利用qRT-PCR技術(shù)研究MeCHS基因在木薯不同品種以及不同組織中的表達情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在木薯中表達的MeCHS基因主要為MeCHS1、MeCHS2和MeCHS3,且木薯CHS基因在莖中表達最高,該基因家族中MeCHS4和MeCHS5在各組織中的表達水平均較低。MeCHSs在不同品種中的表達也不盡相同,在SC8葉片中的表達最高。這與前人的研究結(jié)果有相似之處,但是也存在一定的差異,表明不同物種CHS基因家族成員在不同品種、不同組織中的表達水平不盡相同。

    木薯塊根PPD是由收獲時的機械傷害引起的腐爛變質(zhì),屬于非生物脅迫的一種。AN等[17]研究發(fā)現(xiàn)大部分類黃酮代謝相關(guān)基因表達隨著PPD程度升高,包括MeCHS基因,這與本研究中MeCHS在SC8塊根儲存不同時期的表達一致,且沉默MeCHS3基因后,塊根變質(zhì)率顯著升高,表明MeCHS3與木薯塊根耐PPD能力呈正相關(guān)[17]。推測在木薯塊根在受到機械傷害后,MeCHS可通過上調(diào)表達進而增加木薯塊根中類黃酮含量,可通過ROS清除延緩木薯塊根PPD的發(fā)生[30]。后續(xù)可通過在木薯中過表達MeCHS基因進而提高木薯塊根的耐PPD能力。本研究為進一步深入研究MeCHS基因在木薯塊根PPD調(diào)控中的功能奠定基礎(chǔ),同時也可為木薯轉(zhuǎn)基因育種提供一定的參考。

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