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    紫蘇葉多糖的提取工藝優(yōu)化及理化特性分析

    2023-01-30 07:37:46丁素蕓閆芝茜劉會(huì)平張曉維陳沛鞏婷婷司凱
    食品研究與開發(fā) 2023年1期
    關(guān)鍵詞:紫蘇葉蒸餾水多糖

    丁素蕓,閆芝茜,劉會(huì)平,張曉維,陳沛,鞏婷婷,司凱

    (天津科技大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,天津 300457)

    紫蘇葉為一年生草本植物紫蘇的葉片,屬被子植物亞門、雙子葉植物綱、唇形科、紫蘇屬,紫蘇的別名有很多,例如紅蘇、香蘇等[1-2]。紫蘇在我國(guó)是一種重要的經(jīng)濟(jì)作物,經(jīng)濟(jì)價(jià)值高,應(yīng)用范圍廣,在我國(guó)北方地區(qū)主要用來榨油,兼做藥用;而南方地區(qū)主要用于醫(yī)藥方向,兼做香料或食用[3]。2002年紫蘇被國(guó)家中醫(yī)藥管理局列入既可食用又可作為藥用的物品名單,成為首批“藥食同源”植物之一,可用作天然香料、化工原料、食品和藥品原料等,在工業(yè)、醫(yī)藥、保健等方面均有較大的研究?jī)r(jià)值[4-5]。

    紫蘇葉中含有蛋白質(zhì)、氨基酸以及微量元素等豐富的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)?!吨袊?guó)藥典》[6]中記載,紫蘇葉具有解表散寒、行氣和胃的功效,可以用來發(fā)汗、鎮(zhèn)痛、鎮(zhèn)咳等。中醫(yī)認(rèn)為紫蘇葉能夠緩解支氣管痙攣、擴(kuò)張皮膚血管、促進(jìn)消化液的分泌等,具有解魚蟹毒、祛暑、降血壓的作用,還可以對(duì)動(dòng)脈硬化、痢疾、消化不良等夏秋季節(jié)易發(fā)的疾病起到預(yù)防作用[7]。現(xiàn)代藥理的眾多研究表明,紫蘇葉中含有揮發(fā)油類[8]、黃酮類[9]、花青素[10]、酚酸類[11]、多糖類[12]等多種生物活性成分,具有抗氧化[13]、抗腫瘤[14]、降血糖[15]、抗炎抗菌[16]等多種藥理功能。

    目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)紫蘇葉的研究主要集中在種植技術(shù)[17]、化學(xué)成分分析[18-19]、營(yíng)養(yǎng)價(jià)值及藥用成分分析[20-22]等方面,而對(duì)紫蘇葉多糖的提取分離、理化特性等方面的研究還有待深入。本試驗(yàn)以紫蘇葉為原料,通過單因素試驗(yàn)探究料液比、提取時(shí)間以及醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響,再利用響應(yīng)面優(yōu)化提取工藝條件,并對(duì)紫蘇葉多糖的理化性質(zhì)進(jìn)行分析,以期為紫蘇葉資源的開發(fā)利用以及深加工途徑提供重要參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    紫蘇葉:安徽省六安市大別山;無水乙醇、正丁醇、三氯甲烷:江天化工技術(shù)股份有限公司;100 kDa透析袋、葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品:北京索萊寶科技有限公司。所用試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(DZF-6020):上海傳訊實(shí)業(yè)有限公司;高速粉碎機(jī)(SE-750):浙江永康市圣象電器有限公司;低速離心機(jī)(TDZ5-WS):長(zhǎng)沙湘儀儀器有限公司;冷凍干燥機(jī)(FD-1C-50):北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(RE-52A):上海亞榮生化儀器廠;掃描電子顯微鏡(SU1510):日本日立公司;差示掃描量熱儀(60Plus):日本島津公司;熱重分析儀(TGA-Q500):美國(guó)TA 公司;X-射線衍射儀(Ultima IV X):日本理學(xué)株式會(huì)社。

    1.3 紫蘇葉多糖的提取分離及純化方法

    紫蘇葉片在鼓風(fēng)干燥箱中干燥至恒重、粉碎機(jī)粉碎,過80目篩后得到紫蘇葉粉末原料。稱取適量干燥的紫蘇葉粉末,向其中加入一定比例的蒸餾水,置于100℃熱水中熱提 3 h,離心(4 000 r/min,15 min)過濾渣滓后,將3次提取后的紫蘇葉多糖上清液合并,利用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸發(fā)濃縮至初體積的1/3,再根據(jù)濃縮后的體積加入無水乙醇,將混合溶液在4℃條件下醇沉過夜(12 h)后,4 000 r/min離心 15 min,收集離心后的底層多糖混合物沉淀,吹干沉淀中殘留的乙醇,蒸餾水復(fù)溶沉淀后于8 000 r/min離心10 min以去除混合物中的不溶性雜質(zhì),最終收集上清液用冷凍干燥機(jī)在-80℃進(jìn)行冷凍干燥后得到紫蘇葉粗多糖。用Sevage法去除紫蘇葉粗多糖中的蛋白雜質(zhì),利用100 kDa透析袋進(jìn)行透析、Sephadex G-200柱層析法對(duì)紫蘇葉粗多糖進(jìn)行純化,得到均一組分的紫蘇葉多糖,將其命名為PFP(Perilla frutescens var.frutescens polysaccharide)。多糖得率的計(jì)算公式如下。

    多糖得率/%=M1/M2×100

    式中:M1為紫蘇葉粗多糖質(zhì)量,g;M2為紫蘇葉粉末樣品質(zhì)量,g。

    1.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

    采用苯酚-硫酸法[23]測(cè)定PFP中的總糖含量。準(zhǔn)確稱量葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品,用蒸餾水配制成0.1 mg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液。取6只干凈試管根據(jù)表1加入試劑,將試劑混勻后靜置10 min,然后30℃水浴20 min,反應(yīng)全部結(jié)束后于490 nm處測(cè)定吸光度,繪制葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線,溶液配制見表1。

    表1 溶液配制Table 1 Solution preparation

    1.5 樣品中總糖含量的測(cè)定

    用1.4中的方法進(jìn)行PFP的配制,把測(cè)得的吸光度代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算出PFP的總糖含量。

    1.6 單因素試驗(yàn)

    1.6.1 料液比對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響

    在5個(gè)燒杯中分別加入適量的紫蘇葉粉末,按照1 ∶10、1 ∶20、1 ∶30、1 ∶40、1 ∶50(g/mL)的料液比用蒸餾水溶解,在溫度為100℃條件下水提4 h,提取3次。結(jié)束后4 000 r/min離心15 min,收集上清液,加入上清液體積1.5倍的乙醇進(jìn)行醇沉12 h,8 000 r/min離心5 min、凍干后稱重,計(jì)算出不同料液比提取下的紫蘇葉多糖得率。

    1.6.2 提取時(shí)間對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響

    在5個(gè)燒杯中分別加入適量的紫蘇葉粉末,按料液比1∶30(g/mL)加入蒸餾水溶解,在100℃下分別提取 1、2、3、4、5 h,提取 3 次。結(jié)束后 4 000 r/min 離心15 min,收集上清液,加入上清液體積1.5倍的乙醇進(jìn)行醇沉12 h,8 000 r/min離心5 min、凍干后稱重,計(jì)算出不同提取時(shí)間下的紫蘇葉多糖得率。

    1.6.3 醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響

    在5個(gè)燒杯中分別加入適量的紫蘇葉粉末,按料液比1∶30(g/mL)加入蒸餾水,在100℃下提取4 h,提取3次,結(jié)束后4 000 r/min離心15 min,收集濃縮3次提取后的紫蘇葉多糖上清液,向其中加入乙醇使最終濃度分別為50%、60%、70%、80%、90%,8 000 r/min離心5 min、凍干后稱重,計(jì)算出不同醇沉濃度下的紫蘇葉多糖得率。

    1.7 響應(yīng)面優(yōu)化提取工藝方法

    根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,使用Design-Expert 8.0軟件根據(jù)Box-Behnken原理設(shè)計(jì)試驗(yàn)?zāi)P?,考察各因素?duì)紫蘇葉多糖得率的影響,確定紫蘇葉多糖的最佳提取條件。試驗(yàn)因素和水平見表2。

    表2 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)各因素水平編碼Table 2 The factors and levels of response surface experiment design

    1.8 理化特性分析

    1.8.1 差示掃描量熱分析

    稱取3 mg PFP樣品放入坩堝中,用壓片機(jī)壓緊后置于差示掃描量熱儀(differential scanning calorimetry,DSC)進(jìn)行熱特性檢測(cè),溫度范圍25℃~200℃,升溫速率10℃/min。

    1.8.2 熱穩(wěn)定性分析

    稱取2 mg PFP樣品放入托盤中,需保證PFP全部放入樣品盤中,邊緣無外漏,利用熱重分析儀(thermo gravimetric analyzer,TGA)對(duì)PFP的熱穩(wěn)定性進(jìn)行檢測(cè),溫度范圍25℃~600℃,升溫速度10℃/min,根據(jù)TGA曲線對(duì)PFP的熱解進(jìn)行分析。

    1.8.3 X-射線衍射分析

    取50 mg PFP樣品,將表面壓平后置于X-射線衍射儀(X-ray diffractometer,XRD)檢測(cè)板上進(jìn)行X射線掃描,掃描條件:2θ變化范圍 5°~90°,速度 2°/min。

    1.9 數(shù)據(jù)分析

    利用SPSS 22.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,所有數(shù)據(jù)均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。使用Origin 2018進(jìn)行圖表的制作與處理。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

    2.1.1 料液比對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響

    圖1為料液比對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響。

    圖1 料液比對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響Fig.1 Effect of solid-liquid ratio on yield of polysaccharides from Perilla frutescens var.frutescens

    由圖1可知,紫蘇葉多糖得率隨著蒸餾水體積的增加呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。當(dāng)料液比為1∶30(g/mL)時(shí),紫蘇葉多糖得率達(dá)到最高,為(5.18±0.13)%,繼續(xù)增加蒸餾水的比例,多糖得率反而降低,這可能是因?yàn)槎嗵且酝獾钠渌镔|(zhì)溶出量變多,與多糖呈現(xiàn)競(jìng)爭(zhēng)關(guān)系從而導(dǎo)致多糖得率降低[8]。結(jié)果表明,當(dāng)料液比為1∶30(g/mL)時(shí),紫蘇葉多糖溶出的最多,因此選擇1∶30(g/mL)的料液比進(jìn)行后續(xù)響應(yīng)面試驗(yàn)。

    2.1.2 提取時(shí)間對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響

    圖2為提取時(shí)間對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響。

    圖2 提取時(shí)間對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響Fig.2 Effect of extraction time on yield of polysaccharides from Perilla frutescens var.frutescens

    由圖2可知,隨著提取時(shí)間的不斷延長(zhǎng),多糖不斷溶出,當(dāng)提取時(shí)間達(dá)到4 h時(shí),多糖得率達(dá)到(4.95±0.13)%。繼續(xù)延長(zhǎng)提取時(shí)間,多糖得率降低至(4.87±0.10)%,提取時(shí)間的長(zhǎng)短對(duì)紫蘇葉多糖的得率也有影響,當(dāng)提取時(shí)間太短,會(huì)導(dǎo)致提取過程不充分,因此多糖的得率較低,若時(shí)間過長(zhǎng),溶質(zhì)會(huì)出現(xiàn)溶解平衡現(xiàn)象,得率便會(huì)維持基本不變[24]。因此選擇提取4 h進(jìn)行后續(xù)響應(yīng)面試驗(yàn)。

    2.1.3 醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響

    圖3為醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響。

    圖3 醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響Fig.3 Effect of alcohol precipitation on yield of polysaccharides from Perilla frutescens var.frutescens

    從圖3可以看出,醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率也有一定影響。當(dāng)濃度為60%時(shí),紫蘇葉多糖的得率最高,為(5.02±0.06)%,隨著乙醇濃度的增大,得率有所下降,可能是乙醇增加了體系中溶液的總量,降低了體系中紫蘇葉多糖溶液的濃度,從而不利于沉淀的形成,因此選擇60%醇沉濃度進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。

    2.2 響應(yīng)面結(jié)果分析

    2.2.1 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果與分析

    根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,利用Design-Expert 8.0軟件設(shè)計(jì)三因素三水平17組響應(yīng)面試驗(yàn),優(yōu)化紫蘇葉多糖的提取條件。試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見表3。

    表3 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 3 Results of Box-Behnken design

    續(xù)表3 響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)Continue table 3 Results of Box-Behnken design

    2.2.2 方差分析和二次多項(xiàng)回歸方程擬合

    利用Design-Expert 8.0軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元回歸擬合,得到二次回歸方程為Y=5.24+0.19A+0.051B+0.14C+0.012AB+0.093AC+0.025BC-0.59A2-0.30B2-0.68C2。表4為響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果方差分析。

    表4 方差分析Table 4 Variance analysis

    由表 4可知,F(xiàn)值為302.58,p<0.01,表示該回歸模型極顯著,擬合情況較好,能夠良好地反映出各因素對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響。失擬項(xiàng)p>0.05,表明此模型擬合度良好,非試驗(yàn)因素對(duì)試驗(yàn)結(jié)果影響不大。相關(guān)系數(shù)R2和校正決定系數(shù)R2(Adj)分別為0.997 4和0.994 1,表示此模型能較好預(yù)測(cè)紫蘇葉多糖得率,試驗(yàn)結(jié)果與分析結(jié)果差異較小,具有較高的可信度。由F值可知,3個(gè)因素對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響程度為A>C>B,即料液比>醇沉濃度>提取時(shí)間。

    2.2.3 各因素交互作用分析

    各因素交互作用的響應(yīng)面和等高線如圖4所示。

    圖4 各因素交互作用對(duì)多糖得率的影響Fig.4 Effects of interaction of various factors on the yield of polysaccharides

    由圖4可知,響應(yīng)面的開口均向下,曲面呈中間凸四周凹的形狀,說明曲面有最高點(diǎn),即存在最優(yōu)條件。響應(yīng)面圖可以直觀反映出各因素對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響,曲面越陡,影響越大,曲面越平緩,影響越小??梢园l(fā)現(xiàn)料液比與醇沉濃度對(duì)紫蘇葉多糖得率的影響高于其他2組,且交互作用顯著,與表4方差分析結(jié)果一致。

    2.2.4 驗(yàn)證試驗(yàn)

    根據(jù)響應(yīng)面試驗(yàn)得出紫蘇葉多糖最佳提取條件為料液比1∶31.66(g/mL)、提取時(shí)間4.09 h、醇沉濃度61.14%,此時(shí)紫蘇葉多糖得率為5.27%。在實(shí)際提取過程中將提取修正條件為料液比1∶30(g/mL)、提取時(shí)間4 h、醇沉濃度60%,利用修正條件重復(fù)3次提取紫蘇葉多糖,多糖得率為(5.22±0.17)%。實(shí)際得率與預(yù)測(cè)得率相差較小,說明用此模型預(yù)測(cè)紫蘇葉多糖得率可行。

    2.3 紫蘇葉多糖的總糖含量測(cè)定

    根據(jù)1.4中試驗(yàn)方法測(cè)定葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線,結(jié)果如圖5所示。

    圖5 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.5 Standard curve of glucose

    由圖5可知,標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為y=5.02x+0.1153,R2=0.9992,經(jīng)計(jì)算得出PFP總糖含量為(89.73±0.23)%。

    2.4 理化特性分析

    2.4.1 差示掃描量熱分析

    差示掃描量熱法常被用來檢測(cè)物質(zhì)的熱穩(wěn)定性,該方法可以分析不同溫度下物質(zhì)物理性質(zhì)的變化[25]。圖6為PFP的差示掃描量熱圖。

    圖6 PFP的差示掃描量熱圖Fig.6 Differential scanning calorimetry spectrum of PFP

    由圖6可以發(fā)現(xiàn),PFP在75.5℃處出現(xiàn)一個(gè)吸熱峰,可能是紫蘇葉多糖在保存過程中吸潮,水分蒸發(fā)而產(chǎn)生。在整個(gè)升溫過程中,多糖沒有出現(xiàn)放熱峰,說明紫蘇葉多糖具有良好的熱穩(wěn)定性。

    2.4.2 熱穩(wěn)定性分析

    利用熱重分析儀對(duì)PFP的熱解過程進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果如圖7所示。

    圖7 PFP的熱重結(jié)果分析Fig.7 TGA analysis of PFP

    由圖7可知,PFP的熱解過程主要分為2個(gè)階段:第一階段在44.78℃,出現(xiàn)1個(gè)失重峰,這個(gè)失重峰可以理解為PFP樣品失去了吸附水,失重為9.394%,這可能是由于PFP在制備或者后續(xù)樣品的較長(zhǎng)保存時(shí)間中發(fā)生了吸潮。第二階段熱解過程在200℃~400℃,此階段的失重最為明顯,表明PFP在200℃~400℃范圍內(nèi)發(fā)生劇烈的分解,這同樣說明在200℃以下PFP具有較好的熱穩(wěn)定性。

    2.4.3 X-射線衍射分析

    X-射線衍射圖譜能反映樣品的晶體結(jié)構(gòu),晶體結(jié)構(gòu)越強(qiáng),衍射峰越強(qiáng)。通常晶體會(huì)出現(xiàn)尖又窄的特征峰,非晶體的峰型多表現(xiàn)為寬而彌散[26]。圖8為PFP的XRD圖譜。

    圖8 PFP的X-射線衍射結(jié)果Fig.8 X-ray diffraction pattern of PFP

    從圖8可以看出,在21°左右出現(xiàn)1個(gè)較寬的衍射峰,這是PFP主要的結(jié)晶反射區(qū),譜圖中沒有尖峰出現(xiàn),這表明PFP無結(jié)晶現(xiàn)象,是一種無定型結(jié)構(gòu)。

    3 結(jié)論

    本研究通過單因素試驗(yàn)和響應(yīng)面優(yōu)化確定了紫蘇葉多糖的最佳提取工藝條件為料液比1∶30(g/mL)、提取時(shí)間4 h、醇沉濃度60%,此條件下得率最高,達(dá)到(5.22±0.17)%。經(jīng)分離純化后的均一組分多糖PFP的總糖含量為(89.73±0.23)%。理化特性試驗(yàn)結(jié)果表明PFP有較好的熱穩(wěn)定性,其熱解過程主要分為2個(gè)階段,無結(jié)晶現(xiàn)象,是一種無定型結(jié)構(gòu)??傮w而言,通過此提取條件得到的紫蘇葉多糖得率較高,熱穩(wěn)定性較好,對(duì)紫蘇葉多糖的研究有進(jìn)一步探索,并為紫蘇葉的應(yīng)用開發(fā)提供一定參考。

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