白艷梅,張立佳,汪 洋,劉麗君,謝瑞龍,段建華,李翠枝
(內蒙古伊利實業(yè)集團股份有限公司,內蒙古 呼和浩特 010110)
隨著工業(yè)化的發(fā)展,越來越多的化學合成物產生,這些化學物質給人類帶來方便的同時也會造成不可忽視的傷害。最近幾年備受關注的環(huán)境污染物壬基酚是洗滌劑、紡織產品、皮革涂飾和包裝材料中常見的化工原料。研究發(fā)現(xiàn),壬基酚也是一種具有擬雌激素作用的環(huán)境污染物,不易降解,長期暴露在自然環(huán)境中可通過食物鏈進入人體,擾亂機體激素分泌,可導致人類性早熟及免疫力下降等,尤其是對剛發(fā)育的嬰幼兒更加明顯[1-2]。而最新研究發(fā)現(xiàn),大鼠暴露于壬基酚環(huán)境中可增強肝臟、腎臟和心臟功能的損傷[3-4]。乳粉是嬰幼兒的主要食物來源,乳粉安全對嬰幼兒健康至關重要。食品及食品包裝材料中禁止添加壬基酚,但乳粉的加工、運輸、包裝等各環(huán)節(jié)可能存在壬基酚污染的風險[5-8]。近幾年壬基酚被各國列為環(huán)境污染物,并出臺嚴格的管控標準,美國國家環(huán)保局推薦,淡水中壬基酚的含量不應高于6.6 μg/L,咸水中不應高于1.7 μg/L,目前我國食品中尚無限量標準。壬基酚作為環(huán)境污染物,容易引起食品安全風險,威脅著人民的身體健康,作為乳品企業(yè),為保障人民的飲食健康,需制定嚴格的質量體系,監(jiān)控每個環(huán)節(jié),降低食品安全風險。雖然針對壬基酚的生態(tài)環(huán)境風險相關研究較多,但國內沒有可依據(jù)的乳制品相關國家檢測標準。2014年食藥監(jiān)食監(jiān)三便函[2014]73號通知《國家食品安全監(jiān)督抽檢和風險監(jiān)測》針對嬰幼兒食品及食用植物油等食品指定了檢驗方法,該方法使用凝膠滲透色譜(gel permeation chromatography,GPC)法凈化處理,經研究發(fā)現(xiàn),該方法對乳粉中包埋在內部的壬基酚提取效率較低。2019年國家市場監(jiān)督管理總局發(fā)布食品補充檢驗方法BJS 201913《食品中辛基酚等5 種酚類物質的測定》,該方法采用塑料材質的固相萃取柱,具有本底污染嚴重、穩(wěn)定性差等相關問題[9]。因此,亟需建立一種準確、穩(wěn)定的乳粉中壬基酚檢測方法。
壬基酚殘留的檢測方法主要為氣相色譜-質譜法[10-13]、液相色譜-質譜法[14-16]等,檢測對象主要為包裝材料[17-20]、食品和環(huán)境水[21-23]等,其中氣相色譜-質譜法對目標物進行衍生化處理,衍生化方法過程繁瑣,前處理時間長,限制了該方法的使用。液相色譜-質譜法在大氣壓條件下電離,對目標物進行準確分析,靈敏度高、檢測時間短,是目前檢測壬基酚的常用方法。調研發(fā)現(xiàn),檢測乳粉中壬基酚的文獻較多,如直接提取上機檢測、有機試劑提取后凝膠色譜法除脂、冷凍除脂、塑料固相萃取柱除脂[24-28]等。直接提取法快速、簡單但本底值高,基質效應強,污染檢測儀器。凝膠色譜法除脂試劑消耗量大,檢測成本高。冷凍除脂法耗時且除脂效果不明顯。采用塑料固相萃取柱存在壬基酚溶出風險,導致本底值高,影響定量結果。本研究通過乳粉質控樣進行方法準確性評價,解決了現(xiàn)行方法乳粉基質中壬基酚提取效率差、前處理流程復雜、操作時間長、有機試劑消耗量大、凈化設備昂貴等不足。本研究建立一種使用高效液相色譜-串聯(lián)質譜法檢測乳粉中壬基酚的方法,對乳粉中的壬基酚殘留量進行檢測,為乳粉產品風險管控提供有力技術支持。
乳粉為市場隨機抽取的6 種乳粉;質控樣為內蒙古伊利集團自主制備,壬基酚理論添加量33.36、300.00 μg/kg,每個添加量6 份。
二氯甲烷(色譜純)、甲醇(液相色譜-質譜級)、乙腈(液相色譜-質譜級) 上海安譜實驗科技股份有限公司;氯化鈉(分析純) 天津福晨化學試劑有限公司;4-壬基酚(純度100%) 德國Dr.Ehrenstorfer公司;3,6,3-壬基酚-13C6內標(純度100%) 默克化學試劑公司;水為GB/T 6682—2008《分析實驗室用水規(guī)格和試驗方法》規(guī)定的一級水;ProElut PAEs Glass固相萃取柱(500 mg,6 mL) 迪馬科技有限公司。
QTRAP 6500高效液相色譜-串聯(lián)三重四級桿質譜儀(配備電噴霧電離源) 美國AB Sciex公司;AL204分析天平(感量0.01 mg/0.1 mg) 瑞士Mettler-Toledo公司;KQ-300DE超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;渦旋振蕩器 德國IKA公司;Thermo冷凍離心機美國賽默飛公司;Biotage氮吹儀 瑞典拜泰齊公司。
1.3.1 樣品處理
稱取1 g試樣(精確到0.1 mg),置于40 mL玻璃離心管中,加入3 mL 40~50 ℃溫水將其充分溶解,準確加入100 μL 1 μg/mL 3,6,3-壬基酚-13C6內標中間液混勻,靜置10 min,加入10 mL乙腈,渦旋振蕩10 min,添加2 g氯化鈉,渦旋振蕩5 min使其充分混勻。超聲提取15 min后,0~4 ℃、4 000 r/min離心15 min,取上清液,待凈化。
1.3.2 固相萃取凈化
依次用6 mL二氯甲烷和6 mL乙腈活化固相萃取柱,取1.3.1節(jié)的上清液5 mL轉移至固相萃取柱,自然流干,再用4 mL乙腈淋洗固相萃取柱,抽干,收集全部流出液置于玻璃離心管中,在40 ℃水浴下氮氣吹干,1 mL甲醇復溶,0~4 ℃、4 000 r/min離心15 min,取上清液上機分析。
實驗中所用的器具均為玻璃材質,使用前用馬弗爐400 ℃烘烤4 h。
1.3.3 液相色譜條件
色譜柱:ACQUITY UPLC BEH C18(2.1 mm×50 mm,1.7 μm)或其他等效柱;流速0.3 mL/min;進樣量2 μL;柱溫40 ℃;流動相A:超純水,流動相B:甲醇;梯度洗脫程序見表1。
表1 流動相梯度洗脫程序Table 1 Mobile phase gradient elution procedure
1.3.4 質譜分析條件
質譜條件:電噴霧離子源,負離子掃描模式;多反應監(jiān)測;離子化電壓-4 500 V;離子源溫度500 ℃;輔助加熱器壓力50 psi(345 kPa);噴霧氣壓力50 psi(345 kPa)。離子采集參數(shù)見表2。
表2 質譜參數(shù)Table 2 Mass spectrometric parameters
1.3.5 標準工作液配制
稱取壬基酚10 mg,甲醇定容并稀釋為100 μg/mL的標準溶液,-20 ℃保存。再將100 μg/mL的標準溶液用甲醇稀釋至1 μg/mL,得壬基酚外標中間工作液,0~8 ℃保存,有效期3 個月。
精密量取3,6,3-壬基酚-13C6儲備液1 mL,置于100 mL容量瓶,甲醇稀釋、定容,得1 μg/mL壬基酚內標中間工作液,0~8 ℃保存,有效期3 個月。
混合標準工作液:分別準確吸取壬基酚中間工作液(1 μg/mL)適量,加入同位素內標中間工作液(1 μg/mL),逐級稀釋得到系列標準工作液,質量濃度分別為2、5、10、20、40、80、100、200 ng/mL,質量濃度由低到高進行檢測,以外標定量離子峰面積/內標離子峰面積-質量濃度作圖,得到標準曲線回歸方程。
1.3.6 結果計算
試樣中壬基酚的含量按下式計算。
式中:X為試樣中壬基酚殘留量/(μg/kg);ρ為試樣上機溶液中壬基酚殘留量/(ng/mL);ρ0為空白實驗中壬基酚殘留量/(ng/mL);V為樣液最終定容體積/mL;n為稀釋倍數(shù);m為試樣質量/g。
利用高效液相色譜-串聯(lián)三重四極桿質譜儀Analyst工作站軟件對壬基酚進行定性及定量分析,Excel軟件對實驗數(shù)據(jù)進行處理和統(tǒng)計學分析。
稱取1.0 g乳粉質控樣(壬基酚含量300 μg/kg)各4 份,分別加入0、2、3、4 mL水,均加入10 mL乙腈,比較提取率。由圖1可知,質控樣采用乙腈直接提取的提取率較低,為40%~60%,隨著水的加入,提取率呈上升趨勢,加水量3、4 mL時提取率均達到100%左右,最終選擇加水3 mL溶解。實驗證明,加水后乳粉中的壬基酚更容易被乙腈溶劑提取,主要原因為乳粉為干性樣品,加水后能使其充分溶解分散,加上乙腈的沉淀蛋白作用,使提取率明顯提升。為了提高結果準確度,選擇加水3 mL溶解后再進行提取。
圖1 加水量對提取率的影響(n=6)Fig.1 Effect of the amount of added water on the extraction efficiency of nonylphenol (n = 6)
加標回收率是實驗室在分析檢測過程中常用的一種質量控制方式,當加標回收率在一定范圍時,表明該分析方法適用[29]。取空白基質乳粉加入壬基酚標準工作液,壬基酚添加量為10 μg/kg,分別用乙酸乙酯-環(huán)己烷(1∶1,V/V)和乙腈提取后比較加標回收率。由表3可知,基質加標后分別用乙酸乙酯-環(huán)己烷和乙腈進行提取,加標回收率沒有明顯差異,均符合國標規(guī)定。
表3 壬基酚加標回收率比較(n=6)Table 3 Effect of extraction solvents on the recovery of nonylphenol (n = 6)
另取已知添加量的低、高濃度壬基酚乳粉質控樣,分別選擇乙酸乙酯-環(huán)己烷(1∶1,V/V)和乙腈2 種溶劑提取,比較質控樣實際提取量。由表4可知,用乙酸乙酯-環(huán)己烷溶液和乙腈提取質控樣,壬基酚測定結果差異較大,乙酸乙酯-環(huán)己烷溶液提取目標物效果較差,而乙腈提取效果明顯改善。
表4 質控樣提取率比較Table 4 Comparison of extraction efficiencies of different solvents for nonylphenol from quality control sample
乙酸乙酯-環(huán)己烷溶液提取率低的原因為主要檢測游離態(tài)壬基酚,對乳粉包埋壬基酚提取效果較差。而當乙腈作為提取溶劑時,在有效提取目標物的同時具有沉淀蛋白的作用,對游離態(tài)壬基酚與包埋壬基酚提取效果均較優(yōu),綜合考慮選用乙腈作為提取溶劑。
采用PAEs固相萃取柱,由于填料含硅膠,水會影響固相萃取柱的柱效,凈化時需控制水量。利用氯化鈉在乙腈中的溶解能力弱及易溶于水的性能,可以使兩相分層,同時減少目標物在水中的溶解。稱取1 g質控樣(壬基酚含量300 μg/kg),加入3.0 mL水溶解,加入10 mL乙腈提取,加入不同質量的氯化鈉(0、2、3、4 g),其余操作不變,比較提取效果。由圖2可知,由于氯化鈉的加入使乙腈層與水層分離明顯,且壬基酚更完全地溶于乙腈層中,提高了提取效率。不加氯化鈉時,壬基酚測定值為250 μg/kg,氯化鈉添加量2、3 g時壬基酚提取效率明顯提升。綜合考慮,為了提高壬基酚測定結果準確度,選擇氯化鈉添加量2 g進行測定。
圖2 氯化鈉添加量對提取率的影響(n=6)Fig.2 Effect of the amount of added sodium chloride on the extraction efficiency of nonylphenol (n = 6)
通過陰性樣品加標和乳粉質控樣,考察PAEs玻璃固相萃取柱(PSA/硅膠串聯(lián),500 mg,6 mL)、炭黑固相萃取柱(Carbon,500 mg,6 mL)、聚苯乙烯-二乙烯基苯固相萃取柱(HLB,500 mg,6 mL)3 種固相萃取柱對結果的影響。由表5可知:HLB和Carbon固相萃取柱本底含量超過定量限(5.0 μg/kg),影響結果的準確性,而PAEs柱低于檢出限(1 ng/mL);PAEs固相萃取柱加標回收率和質控樣回收率均為100%。HLB和Carbon固相萃取柱回收率和質控樣回收率較低。為了提高方法的準確度,綜合考慮,選擇PAEs玻璃固相萃取柱進行前處理。
表5 3 種固相萃取柱的比較Table 5 Comparison of purification efficiencies of three kinds of solid phase extraction column
2.5.1 標準曲線、檢出限和定量限
由表6可知,本方法的壬基酚標準曲線相關系數(shù)大于0.99,乳粉中壬基酚的定量限為5.0 μg/kg,滿足信噪比(RS/N)≥10的要求。
表6 壬基酚標準曲線、檢出限和定量限Table 6 Standard curve, limit of detection and limit of quantification for nonylphenol
2.5.2 方法的加標回收率和精密度
選取不含壬基酚的基質樣品進行加標回收率實驗,分別添加5、40、300 μg/kg共3 個水平的壬基酚標準溶液,每個加標水平做6 次平行實驗。由表7可知,壬基酚的加標回收率為81.10%~107.39%,相對標準偏差為1.97%~9.73%,說明該方法測定乳粉中壬基酚殘留時具有較好的準確度和精密度。
表7 壬基酚的加標回收率與相對標準偏差(n =6)Table 7 Recoveries and RSDs of nonylphenol from spiked sample (n = 6)
取市售的多品牌乳粉進行分析,樣本數(shù)量40 個,壬基酚含量均小于5 μg/kg,表明目前大部分乳粉企業(yè)對工藝、運輸及包裝材料的控制非常嚴格,消費者可放心食用。
采用質控樣進行檢測方法的準確度評價,優(yōu)化提取試劑和凈化條件,提升了準確度和檢測效率,采用同位素內標法建立高效液相色譜-串聯(lián)質譜法測定乳粉中壬基酚的定量檢測方法。結果表明,乳粉中壬基酚添加量5~300 μg/kg時,加標回收率為81.10%~107.39%,相對標準偏差為1.97%~9.73%,此方法具有較好的精密度和準確度。采用簡單的固相萃取柱替換傳統(tǒng)的凝膠色譜儀等昂貴的前處理設備,解決了乳粉基質中壬基酚提取率低的難題,前處理簡單、節(jié)約成本、靈敏度高,適用于乳粉基質中的檢測,為乳制品企業(yè)食品安全風險監(jiān)測提供了技術保障。