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    虎杖苷對THP‐1細胞增殖及凋亡的影響及其作用機制研究

    2022-07-25 05:41:28王春美祁文靜任艷嬌盛光耀
    中國當(dāng)代兒科雜志 2022年7期
    關(guān)鍵詞:虎杖細胞周期空白對照

    王春美 祁文靜 任艷嬌 盛光耀

    (鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院兒童醫(yī)院,河南鄭州 450052)

    急性單核細胞白血?。╝cute monocytic leukemia,AML‐M5)是急性髓細胞白血?。╝cute myelogenous leukemia,AML)的一種亞型,約占兒童AML 的11.5%~27.5%,盡管化療可使80%的患兒獲得完全緩解[1],但因其較高的復(fù)發(fā)率及治療相關(guān)的病死率,5 年無病存活率僅為40%~50%[2],顯著低于其他亞型AML。因此積極探索新的治療策略,提高其預(yù)后,具有重要的理論和現(xiàn)實意義?;⒄溶帐菑闹兴幓⒄鹊母稍锔o中提取的單體,體外具有抗腫瘤作用。本課題組前期研究證實,虎杖苷可有效抑制AML‐M5細胞株THP‐1細胞增殖并誘導(dǎo)其凋亡[3],但具體機制不明。PI3K/AKT/mTOR信號通路在白血病的發(fā)病中起重要作用,本研究進一步探討虎杖苷是否通過該信號通路影響THP‐1的增殖及凋亡。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    THP‐1細胞株(上海碧云天生物技術(shù)研究所),虎杖苷(北京Solarbio 公司),RPMI 1640 培養(yǎng)基(美國Corning 公司),Gibco 胎牛血清(美國Invitrogen 公司),DMSO(上海索寶生物科技有限公司),兔抗人PI3K、兔抗人AKT、鼠抗人p‐AKT、鼠抗人mTOR、鼠抗人p‐mTOR、兔抗人p70 S6K、兔抗人p‐p70 S6K、鼠抗人GAPDH 抗體(美國Abcam公司),山羊抗兔IgG‐HRP、山羊抗鼠IgG‐HRP抗體及CCK‐8試劑盒(上海碧云天生物技術(shù)研究所),Annexin V‐FITC 凋亡檢測試劑、細胞周期檢測試劑盒(美國BD 公司)。虎杖苷溶解于DMSO 中,稀釋至10 mmol/L,儲存于4°C 冰箱中,實驗過程中根據(jù)需要稀釋至不同濃度。

    1.2 細胞培養(yǎng)

    THP‐1細胞使用含10%胎牛血清RPMI‐1640培養(yǎng)基(含0.05 mol/L 2‐巰基乙醇、100 U/mL 青霉素、100 μg/mL 鏈霉素),置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。將處于指數(shù)增殖期的細胞用于實驗。

    1.3 CCK‐8法檢測細胞增殖

    在96 孔板中接種細胞懸液(100 μL/孔,約含有4 000個細胞)。加入不同濃度的虎杖苷(0、1.9、3.9、7.81、15.63、31.25、62.5、125、250、500、1 000、2 000 μmol/L)處理,每組設(shè)置5個平行復(fù)孔;之后將培養(yǎng)板放在培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)24 h、48 h,向每孔加入10 μL CCK‐8 溶液,培養(yǎng)箱內(nèi)孵育4 h,酶標(biāo)儀檢測450 nm 波長的吸光度值。細胞增殖活力(%) = [(A-A空白)/A0-A空白]×100(A:孔內(nèi)含有細胞、CCK‐8溶液和不同濃度虎杖苷溶液的吸光度值;A空白:孔內(nèi)無細胞,但含有細胞培養(yǎng)基和CCK‐8 溶液的吸光度值;A0:孔內(nèi)含有細胞、CCK‐8 溶液,但未施加虎杖苷溶液的吸光度值)。實驗獨立重復(fù)3次。

    1.4 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡

    將處于指數(shù)增殖期的細胞接種于6孔板中孵育過夜,設(shè)立空白對照組(細胞中未施加虎杖苷溶液處理)和虎杖苷處理組,每組設(shè)3個平行復(fù)孔,48 h 后收集細胞。用1 mL 預(yù)冷的PBS 重懸細胞,顯微鏡下調(diào)細胞密度為2×105/mL~5×105/mL,取195 μL 細胞懸液至干凈無菌的試管中,并加入5 μL Annexin V‐FITC,暗室中孵育10 min;室溫1 000 r/min 離心5 min,棄去上清液,重懸細胞于190 μL 的結(jié)合液中;加入5 μL 的PI 染色液,混勻后上流式細胞儀檢測。實驗獨立重復(fù)3次。

    1.5 流式細胞術(shù)檢測細胞周期

    細胞培養(yǎng)及分組同1.4 小節(jié)。離心收集空白對照組和虎杖苷處理48 h 的細胞,4℃預(yù)冷PBS 洗滌1 次,1 500 r/min 離心5 min,棄上清;加入4℃預(yù)冷的70%乙醇1 mL 固定過夜;次日1 500 r/min 離心5 min,棄去固定液,加入0.5 mL 的PBS 重懸細胞;依 次 加 入RNaseA (終 濃 度50 μg/mL)、500 μL PI(100 μg/mL),避光孵育30 min;使用流式細胞儀檢測,CellQuest軟件檢測G0/G1、S和G2/M期的細胞。實驗獨立重復(fù)3次。

    1.6 Western blot法檢測相關(guān)蛋白的表達

    細胞培養(yǎng)及分組同1.4 小節(jié)。離心收集空白對照組和虎杖苷處理48 h 的細胞,冰上靜置30 min以充分裂解,12 000 r/min 離心5 min,迅速將上清(蛋白提取液)轉(zhuǎn)移至預(yù)冷新EP管中,即為細胞總蛋白。Bradford 法測定蛋白濃度。蛋白樣本經(jīng)10%的SDS‐PAGE 電泳分離,半干轉(zhuǎn)至PVDF 膜上,含5%脫脂奶粉的TBST 溶液4℃封閉過夜。一抗(PI3K、 AKT、 p‐AKT、 mTOR、 p‐mTOR、 p70 S6K、p‐p70 S6K、GAPDH 抗 體,p‐p70 S6K 按1∶500 稀釋,PI3K、p‐AKT、p‐mTOR 按1∶1 000稀釋,p70 S6K 按1∶2 000 稀釋,AKT、mTOR、GAPDH 按1∶3 000 稀釋)室溫孵育2 h,TBST 溶液洗滌10 min×3 次,TBS 溶液洗滌10 min×1 次;相應(yīng)的二抗(1∶3 000 稀釋)室溫孵育2 h,TBST溶液洗滌10 min×3 次,TBS 溶液洗滌10 min×1次,ECL發(fā)光液處理后暗室內(nèi)曝光,膠片于室溫下自然風(fēng)干;掃描儀掃描結(jié)果保存,Image J 軟件分析灰度值結(jié)果,蛋白表達水平以目的蛋白與內(nèi)參蛋白灰度值比值表示,實驗獨立重復(fù)3次。

    1.7 統(tǒng)計學(xué)分析

    采用SPSS 25.0 統(tǒng)計學(xué)軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學(xué)分析。符合正態(tài)分布的計量資料用均數(shù)±標(biāo)準差(±s) 表示,2 組間比較采 用兩樣本t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 虎杖苷對THP‐1細胞增殖的影響

    用不同梯度濃度的虎杖苷(0、1.9、3.9、7.81、 15.63、 31.25、 62.5、 125、 250、 500、1 000、2 000 μmol/L)分別處理THP‐1 細胞24 h、48 h,結(jié)果顯示:在48 h時,虎杖苷對THP‐1細胞增殖有抑制作用,其半數(shù)抑制濃度(median inhibitory concentration,IC50) 約 為1 800 μmol/L(圖1)。因此選擇1 800 μmol/L 的虎杖苷處理THP‐1細胞48 h用于后續(xù)實驗。

    圖1 虎杖苷對THP‐1細胞增殖的影響

    2.2 虎杖苷對THP‐1細胞凋亡的影響

    細胞凋亡結(jié)果顯示,1 800 μmol/L 的虎杖苷處理THP‐1 細胞48 h 后,細 胞 凋 亡率為11.68%±0.25%,顯著高于空白對照組(6.20%±0.54%),差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=18.360,P<0.001),見圖2。

    圖2 虎杖苷對THP‐1細胞凋亡的影響 右上象限為晚期凋亡細胞,右下象限為早期凋亡細胞,細胞凋亡結(jié)果為早期凋亡+晚期凋亡細胞總和。

    2.3 虎杖苷對THP‐1細胞周期的影響

    細胞周期結(jié)果顯示,1 800 μmol/L 的虎杖苷處理THP‐1細胞48 h后,細胞出現(xiàn)G0/G1期至S期的阻滯,表現(xiàn)為G0/G1期的細胞比例較空白對照組明顯上升(P<0.001),S 期的細胞比例較空白對照組顯著下降(P<0.001),但G2/M 期的細胞比例在兩組間差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.389),見表1、圖3。

    圖3 虎杖苷對THP‐1細胞周期的影響

    表1 虎杖苷對THP‐1細胞周期的影響 ( ±s,%)

    表1 虎杖苷對THP‐1細胞周期的影響 ( ±s,%)

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    2.4 虎杖苷對THP‐1 細胞中PI3K/AKT/mTOR/p70 S6K信號通路中相關(guān)基因蛋白表達的影響

    Western blot 結(jié)果顯示,1 800 μmol/L 的虎杖苷處理THP‐1細胞48 h后,虎杖苷組PI3K、AKT、p‐AKT、mTOR、p‐mTOR、p70 S6K、p‐p70 S6K 蛋白表達均較空白對照組顯著降低(P<0.05),結(jié)果見表2、圖4。

    表2 虎杖苷對THP‐1細胞中相關(guān)蛋白表達的影響 (±s)

    表2 虎杖苷對THP‐1細胞中相關(guān)蛋白表達的影響 (±s)

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    圖4 Western blot檢測兩組信號通路相關(guān)蛋白表達的電泳圖

    3 討論

    目前兒童AML‐M5的治療手段主要是化療和造血干細胞移植,化療在AML‐M5治療中仍處于基礎(chǔ)地位,但化療過程中可能出現(xiàn)骨髓抑制、因粒細胞減少或缺乏而發(fā)生各種嚴重感染,以及原發(fā)耐藥而導(dǎo)致化療無效等。近年來,采用傳統(tǒng)中藥等植物提取物治療腫瘤引起了大家的廣泛關(guān)注。目前植物來源的長春新堿、紫杉醇、依托泊苷、喜樹堿等早已廣泛應(yīng)用于臨床,從傳統(tǒng)中藥提取的抗腫瘤藥物如姜黃素、黃連素、冬凌草甲素等也已被證實體外具有抗腫瘤作用。從植物中篩選提煉新型抗腫瘤藥物,研究其抗腫瘤作用并探討其機制,已成為腫瘤領(lǐng)域的研究熱點之一。

    虎杖苷是從虎杖的干燥根莖中提取的第4種單體,又名白藜蘆醇苷,研究表明虎杖苷有多種生物學(xué)作用,如抗血小板聚集、抗休克、抗心肌缺血/再灌注損傷、肝臟保護、神經(jīng)保護、肺臟保護、抗感染、免疫調(diào)節(jié)等作用[4-7]。近年研究發(fā)現(xiàn),虎杖苷亦具有抗腫瘤作用[8-9],但大都是關(guān)于實體瘤的,其對AML‐M5的研究相對較少,具體機制仍不清楚。

    本研究首先使用不同濃度的虎杖苷處理THP‐1細胞,觀察其對THP‐1 細胞增殖的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),在48 h 時虎杖苷可顯著抑制THP‐1 細胞的增殖,IC50 濃度為1 800 μmol/L,和本課題組既往研究的IC50 濃度不完全一致[3],考慮與細胞株和虎杖苷來源不同有關(guān),既往實驗細胞株和虎杖苷來源于上海中科院細胞庫和美國Santa Cruz 公司,本次實驗細胞株和虎杖苷來源于上海碧云天生物技術(shù)研究所和北京Solarbio 公司,但結(jié)果均提示虎杖苷可有效抑制THP‐1細胞的增殖。

    使用1 800 μmol/L 濃度的虎杖苷處理THP‐1 細胞48 h 后,細胞的凋亡率顯著升高,同時細胞周期出現(xiàn)G0/G1期至S 期的阻滯,G0/G1期的細胞比例明顯上升,S期的細胞比例顯著下降,提示虎杖苷可能是通過阻滯細胞周期和誘導(dǎo)細胞凋亡發(fā)揮抗腫瘤作用的。

    PI3K/AKT/mTOR 是細胞內(nèi)重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,參與調(diào)控細胞增殖、生長、分化、凋亡等多個環(huán)節(jié),影響多種惡性腫瘤的發(fā)生、發(fā)展及轉(zhuǎn)歸,并且與腫瘤細胞的耐藥相關(guān)[10-11],針對該信號通路相關(guān)分子的靶向藥物研究是近年研究的熱點。既往研究表明,PI3K/AKT/mTOR 信號通路的異?;顒釉诩毙运柘蛋籽〉陌l(fā)病中起重要作用[12-13],對PI3K/AKT/mTOR 信號通路抑制劑的研究是近年研究的熱點。本研究結(jié)果顯示,使用1 800 μmol/L濃度的虎杖苷處理THP‐1 細胞48 h 后,PI3K、AKT、p‐AKT、mTOR、p‐mTOR、p70 S6K、p‐p70 S6K蛋白表達均顯著降低,提示虎杖苷可有效抑制PI3K/AKT/mTOR 信號通路,可能是虎杖苷抑制THP‐1細胞增殖,并誘導(dǎo)細胞凋亡的重要機制。

    綜上,虎杖苷能夠在體外抑制THP‐1細胞的增殖、阻滯細胞周期并誘導(dǎo)細胞凋亡,其作用機制可能是通過調(diào)節(jié)PI3K/AKT/mTOR 信號通路而實現(xiàn)的。本研究進一步闡明了虎杖苷的抗腫瘤作用,為虎杖苷治療AML‐M5 的臨床應(yīng)用提供了實驗室依據(jù)。

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