亞油酸氧化引起大足黑山羊肌原纖維蛋白保水性變化的機(jī)制研究

鐘玉潔，武煊，江依，田冰，楊吉霞，陳應(yīng)娟，陶曉奇，3*

1(西南大學(xué) 食品科學(xué)學(xué)院，重慶，400715)2(重慶市動物疫病預(yù)防控制中心，重慶，401120) 3(川渝共建特色食品重慶市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，重慶，400715)

肌肉保水性的變化會導(dǎo)致肉的風(fēng)味、多汁性等隨之改變，提高加工成本，導(dǎo)致經(jīng)濟(jì)損失[1]。目前，許多研究表明蛋白氧化對肉保水性有著不可忽視的作用。BERTRAM等[2]發(fā)現(xiàn)肌原纖維蛋白(myofibrillar protein，MP)在氧化后，MP保水性下降，形成大量二聚酪氨酸，提出氧化交聯(lián)產(chǎn)物會對MP保水性產(chǎn)生消極影響。BAO等[3]研究認(rèn)為氧化對于肉蛋白的保水能力是促進(jìn)因子(氧化導(dǎo)致凈負(fù)電荷增多)和抑制因子(氧化導(dǎo)致交聯(lián)聚集)之間的平衡。ZHANG等[4]的研究也表明適度氧化有助于蛋白質(zhì)凝膠保持較高的保水性，而過高的氧化會導(dǎo)致保水性降低。

通常，肌肉中的氧化以脂質(zhì)氧化為主。脂質(zhì)氧化過程中易生成α、β-不飽和醛等次級脂質(zhì)氧化產(chǎn)物，例如丙二醛、丙烯醛等。不飽和脂肪酸易于氧化，生成多種活性氧(reactive oxygen species，ROS)物質(zhì)，形成氧化脅迫環(huán)境[5]。ROS會攻擊肌肉蛋白質(zhì)并導(dǎo)致氧化修飾，從而影響其電荷變化以及肉品的保水性[6]。ZHANG等[7]研究表明,脂質(zhì)氧化產(chǎn)生的ROS可以攻擊蛋白質(zhì)的敏感氨基酸側(cè)鏈，從而誘發(fā)MP氧化。此外，蛋白質(zhì)氧化產(chǎn)生的自由基物質(zhì)也可以轉(zhuǎn)移到脂質(zhì)部分，從而促進(jìn)脂質(zhì)氧化[8]。目前，亞油酸已被廣泛用于構(gòu)建模擬脂質(zhì)氧化系統(tǒng)。JIANG等[9]構(gòu)建亞油酸氧化體系誘導(dǎo)MP去折疊和交聯(lián)，發(fā)現(xiàn)MP凝膠保水性降低。楊玉玲等[10]通過亞油酸體系研究MP氧化對凝膠質(zhì)構(gòu)的影響，結(jié)果表明，適度氧化有助于改善凝膠特性。

我國肉用山羊中，重慶大足黑山羊因其處于特殊的自然環(huán)境與近百年的封閉養(yǎng)殖，具有營養(yǎng)豐富、肉質(zhì)鮮美等特點(diǎn)，成為國內(nèi)市場食用的優(yōu)勢品種，極具經(jīng)濟(jì)價值[11-12]。與其他肉類相比，大足黑山羊肉的多不飽和脂肪酸含量較高[13]，其中，亞油酸含量約占總脂肪酸的10.48%[12]。黑山羊肌肉組織中，MP是最主要的功能性蛋白，在肉品中起著非常重要的作用。在羊肉推廣運(yùn)輸和加工過程中，不可避免地會發(fā)生脂質(zhì)氧化和蛋白質(zhì)氧化等嚴(yán)重問題，使羊肉保水性及其制品品質(zhì)下降，造成經(jīng)濟(jì)損失。

保水性是肉制品的重要品質(zhì)屬性，MP的氧化修飾會使得保水性發(fā)生改變[4]。凈電荷的增加會引起MP膨脹并改善保水性，而結(jié)構(gòu)限制則禁止無限膨脹[14]。然而，MP氧化如何調(diào)節(jié)促進(jìn)因子和抑制因子之間的平衡來影響保水性，以及哪一個因子對這種平衡起主導(dǎo)作用還很少被探討。因此，本研究基于亞油酸氧化體系探究黑山羊肉MP的氧化修飾及對電荷與保水性的影響，以期從電荷水平深入理解MP氧化并為有效調(diào)控黑山羊肉蛋白氧化帶來的品質(zhì)劣變提供理論參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

選取重慶大足縣同一牧場(24±6)月齡的黑山羊，宰后取其背最長肌，在0～4 ℃下分割成每塊200 g，置于液氮中快速運(yùn)輸至實(shí)驗(yàn)室，保存在-80 ℃冰箱中待使用。

酒石酸鉀鈉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、氯化鈉、三氯乙酸、乙酸乙酯、甘氨酸、溴酚藍(lán)、2,4-二硝基苯肼、5,5-二硫代雙(2-硝基苯甲酸)、十二烷基硫酸鈉、亞油酸(分析純)，范德(北京)生物科技有限公司；SDS-PAGE試劑盒，北京索萊寶科技有限公司；脂肪氧合酶(分析純)，上海源葉生物科技有限公司。

1.2 儀器與設(shè)備

YP-B10002電子分析天平，上海光正醫(yī)療儀器有限公司；2K-15冷凍離心機(jī)，德國Sigma公司；F-2500熒光分光光度計(jì)、UV-16001紫外-可見分光光度計(jì)，日本島津儀器有限公司；XHF-D內(nèi)切式勻漿機(jī)、SCIENTZ-12 N真空冷凍干燥機(jī)，寧波新芝生物科技股份有限公司；DYY-8C型電泳儀，北京六一生物科技有限公司。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 MP提取

參考JIANG等[9]的方法提取MP。將黑山羊里脊肉的結(jié)締組織和筋膜剔除，切碎后加入4倍體積的磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)，11 500 r/min均質(zhì)化2 min后冷凍離心(4 ℃、3 500×g、10 min)，整個過程重復(fù)3次。隨后加入磷酸鹽緩沖液(pH 6.25、0.1 mol/L NaCl)，相同條件下均質(zhì)離心。接著加入磷酸鹽緩沖液(pH 6.0、0.1 mol/L NaCl)，均質(zhì)后用4層紗布過濾，濾液離心10 min，所得沉淀即為MP提取物，貯存在4 ℃條件下并在12 h內(nèi)使用。采用雙縮脲法測定蛋白質(zhì)濃度。

1.3.2 亞油酸氧化處理

參考JIANG等[9]的方法建立氧化體系。將MP重懸在磷酸鹽緩沖液(pH 6.0、0.6 mol/L NaCl)中，調(diào)節(jié)MP質(zhì)量濃度為10 mg/mL。在MP重懸液中加入3 750 unit/mL脂肪氧合酶和不同質(zhì)量的亞油酸，其終濃度為0(對照組)、2、5、10、15、20 mmol/L。將樣品置于4 ℃、黑暗、密封環(huán)境中孵育24 h后，加入丁基羥基甲苯終止反應(yīng)，3 500×g、4 ℃離心10 min，所得沉淀用磷酸鹽緩沖液(pH 6.0)洗滌2次，除去多余的丁基羥基甲苯和亞油酸。

1.3.3 保水性測定

參考PENG等[15]的方法并稍作修改。將MP置于離心管中，80 ℃干燥12 h。保水性計(jì)算如公式(1)所示：

(1)

式中：W0，離心管質(zhì)量，g；W1，干燥前離心管與MP沉淀質(zhì)量，g；W2，干燥后離心管與MP沉淀質(zhì)量，g。

1.3.4 Zeta電位測定

參考CAI等[16]的方法并稍作修改。將MP溶液(1 mg/mL)注入Zeta電位皿中，散射角調(diào)節(jié)為90°，平衡時間60 s，在25 ℃下進(jìn)行測試。

1.3.5 氨基酸分析

參考ZHANG等[4]的方法并稍作修改。稱取20 mg凍干MP于帶蓋消化玻璃管中，加入5 mL 6 mol/L HCl混勻，110 ℃水解24 h。冷卻后，用氮?dú)鈱⑺猱a(chǎn)物吹干。隨后用0.02 mol/L HCl定容至50 mL。取少量溶液離心后，用0.22 μm濾膜過濾。用自動氨基酸分析儀測試過濾后的溶液。

1.3.6 羰基含量測定

(2)

1.3.7 總巰基含量測定

根據(jù)WANG等[18]的方法評估總巰基含量。取1 mL 5 mg/mL MP溶液用9 mL磷酸鹽緩沖液(50 mmol/L、pH 7.0、0.6 mol/L NaCl、10 mmol/L EDTA-2 Na和8 mol/L 尿素)稀釋。取3 mL稀釋液與400 μL 1 mmol/L 2-硝基苯甲酸溶液混合，40 ℃孵育30 min后，測量溶液在412 nm處的吸光度。通過摩爾消光系數(shù)[13 600 mol/(L·cm)]計(jì)算總巰基的含量。

1.3.8 表面疏水性測定

參考CHELH等[19]的方法并稍作修改。用蒸餾水配制1 mg/mL的溴酚藍(lán)溶液。將MP溶液稀釋至5 mg/mL。分別取1 mL的稀釋液、1 mL 磷酸鹽緩沖液(對照組)與200 μL的溴酚藍(lán)混勻，充分振蕩，25 ℃ 的條件下反應(yīng) 10 min，離心(2 000×g，15 min， 4 ℃)。取0.4 mL上清液，加入3.6 mL磷酸鹽緩沖液(40 mmol/L，pH 6.8)稀釋，在 595 nm處測定吸光度。表面疏水性以溴酚藍(lán)的結(jié)合量表示，計(jì)算如公式(3)所示：

(3)

1.3.9 傅里葉紅外光譜分析

本研究以酪蛋白酸鈉為乳化劑，通過pH循環(huán)法制備丁香酚微乳，再通過海藻酸鈉對丁香酚微乳進(jìn)行修飾?？疾靸煞N微乳的粒徑分布、包封率、pH、離子、儲藏穩(wěn)定性及釋放特性。結(jié)果表明，海藻酸鈉修飾能提高丁香酚微乳平均粒徑，具有相當(dāng)丁香酚的包封率；海藻酸鈉修飾能夠顯著提高丁香酚微乳的pH穩(wěn)定性，且具有良好的離子和儲藏穩(wěn)定性；在環(huán)境pH為7.0條件下，海藻酸鈉修飾微乳的釋放速率稍高于丁香酚微乳。

參考ZHOU等[20]的方法并稍作修改。準(zhǔn)確稱取1 mg MP凍干粉末，與100 mg KBr標(biāo)準(zhǔn)品混合研磨，壓片后在400～4 000 cm-1進(jìn)行全波段掃描，掃描次數(shù)累加64次。

1.3.10 色氨酸內(nèi)源熒光分析

參考CAO等[21]的方法并稍作修改。將MP質(zhì)量濃度調(diào)節(jié)至1 mg/mL。用熒光分光光度計(jì)在300～400 nm的光譜范圍內(nèi)進(jìn)行掃描，激發(fā)波長為295 nm，掃描速度為1 500 nm/min，激發(fā)和發(fā)射狹縫寬度均為5 nm。

1.3.11 十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis ，SDS-PAGE)分析

參考JIANG等[9]的方法并稍作修改。將MP質(zhì)量濃度調(diào)節(jié)至2 mg/mL。加入3倍體積的buffer溶液(未還原狀態(tài)不添加β-巰基乙醇)制備電泳樣品，使用時取上清液進(jìn)行電泳操作。電泳完成后，將凝膠染色30 min，隨后用脫色液脫色40 min。分子質(zhì)量由蛋白質(zhì)標(biāo)記物測定(10～180 kDa)。

1.3.12 數(shù)據(jù)處理

本研究中每個處理均進(jìn)行3次平行試驗(yàn)。用SPSS統(tǒng)計(jì)軟件(19.0 版本，美國 SPSS 公司)進(jìn)行數(shù)據(jù)處理，采用單因素方差分析法進(jìn)行顯著性差異檢驗(yàn)(P<0.05表示差異顯著)。通過PeakFit 4.12分析紅外光譜，用Origin 8.5進(jìn)行數(shù)據(jù)繪圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 保水性及電荷分析

2.1.1 保水性

保水性主要取決于MP的結(jié)構(gòu)性質(zhì)與分子間相互作用力。由圖1可知，MP保水性隨著氧化強(qiáng)度的增加而顯著上升(P< 0.05)。當(dāng)亞油酸濃度為5 mmol/L時，MP保水性約為對照組(0 mmol/L)的2倍。這可能是由于低強(qiáng)度氧化時，凈負(fù)電荷增加(圖2) 導(dǎo)致保水性增加。隨著氧化強(qiáng)度的進(jìn)一步提高，MP保水性顯著下降(P< 0.05)，且均低于對照組。這與BAO等[3]對豬肉MP保水性的研究結(jié)果一致。LIU[22]的研究指出,高度氧化修飾引起的蛋白質(zhì)交聯(lián)和聚集可能是降低保水性的一個重要因素。

圖1 不同濃度亞油酸氧化體系對MP 保水性的影響Fig.1 The effect of different concentrations of linoleic acid oxidation system on MP water-holding 注：不同字母表示差異顯著(P<0.05)(下同)

2.1.2 Zeta電位

Zeta電位值可以監(jiān)測蛋白質(zhì)物理和化學(xué)狀態(tài)的細(xì)微變化，是直觀表現(xiàn)蛋白凈負(fù)電荷變化情況的重要指標(biāo)[23]。由圖2可知，電位絕對值整體呈現(xiàn)出先上升后下降的趨勢，亞油酸濃度較低時(<10 mmol/L)，MP的凈負(fù)電荷增加(P<0.05)，說明低強(qiáng)度的氧化使MP溶液體系變得穩(wěn)定，這與張海璐等[24]的研究結(jié)果相同。BAO等[3]的研究指出,輕度氧化修飾使蛋白質(zhì)凈負(fù)電荷增加，改善交聯(lián)和靜電相互作用，從而提高保水性。亞油酸濃度較高時(>10 mmol/L)，電位絕對值顯著降低(P<0.05)，這可能是因?yàn)檠趸瘡?qiáng)度過高，使得MP劇烈氧化而發(fā)生蛋白間的聚集和包埋，導(dǎo)致凈負(fù)電荷下降[16]。

圖2 不同濃度亞油酸氧化體系對MP Zeta電位值的影響Fig.2 The effect of different concentrations of linoleic acid oxidation system on MP Zeta potential

2.1.3 氨基酸分析

氧化處理后MP總氨基酸含量明顯少于對照樣品(表1)。含硫氨基酸(半胱氨酸和蛋氨酸)和脯氨酸對ROS非常敏感[25]，因此，這3種氨基酸含量大幅度下降。同時，脂質(zhì)過氧化分解產(chǎn)物與賴氨酸共價結(jié)合[26]，導(dǎo)致賴氨酸含量顯著降低。與對照組相比，高亞油酸濃度(20 mmol/L)氧化導(dǎo)致組氨酸減少了17%(P<0.05)。通常，組氨酸殘基以質(zhì)子化形式存在，帶有正電荷，且其氧化是羰基形成的原因[27](圖3)。組氨酸含量降低使MP失去正電荷，導(dǎo)致肌球蛋白和肌動蛋白絲的凈負(fù)電荷增加。此外，肽鏈斷裂后的碎片可能會對MP產(chǎn)生額外的電荷[28]。一般認(rèn)為，凈負(fù)電荷增加可以提高肉的保水性[6]。

表1 不同濃度的亞油酸氧化體系對MP氨基酸含量的影響 單位：mg/g

2.2 蛋白質(zhì)氧化分析

2.2.1 羰基和巰基

蛋白質(zhì)羰基化可以由多種途徑引發(fā)并且涉及某些氨基酸殘基的損失。通常，這些氨基酸以正電荷形式存在，損失后會增加蛋白質(zhì)的凈負(fù)電荷，從而預(yù)估蛋白質(zhì)凈電荷改變[29-30]。由圖3可知，隨著亞油酸濃度的增大，羰基含量由0.44 nmol/mg增加到2.09 nmol/mg，呈現(xiàn)連續(xù)上升趨勢(P< 0.05)，這一結(jié)果與JIANG等[9]報道的牛肉MP中羰基含量一致。UTRERA等[30]研究發(fā)現(xiàn)蛋白質(zhì)羰基化與許多功能性指標(biāo)(溶解度、保水性、起泡性等)相關(guān)，可質(zhì)子化氨基酸的損失會改變MP電荷分布和整體電子排列，引起MP分子間相互作用發(fā)生變化，從而影響蛋白質(zhì)的保水性。

MP中的半胱氨酸巰基在氧化體系中非常敏感，易提取氫原子生成硫中心自由基，從而導(dǎo)致巰基含量降低[12]。由圖3可知，與未氧化(0 mmol/L)MP相比，氧化后MP巰基含量顯著降低(P<0.05)，該值接近于ZHOU等[31]報道的豬肉氧化過程中MP巰基含量。氧化程度越高，被氧化成二硫鍵的巰基越多，測得的總巰基含量就越少。

圖3 不同濃度亞油酸氧化對MP羰基和巰基含量的影響Fig.3 Effect of different concentration linoleic acid oxidation on the carbonyl and total sulfhydryl content of MP

2.2.2 表面疏水性

蛋白質(zhì)表面疏水性是影響蛋白基團(tuán)表面正負(fù)電荷數(shù)量和排列方式變化并表征蛋白水合效應(yīng)和變性程度的重要指標(biāo)[32]。由圖4可知，隨著亞油酸濃度的增加(0～10 mmol/L)，MP表面疏水性逐漸增加(P<0.05)，這一結(jié)果反映出疏水基團(tuán)的暴露有助于增強(qiáng)表面疏水性，從而導(dǎo)致MP構(gòu)象變化。較高亞油酸濃度(>10 mmol/L)下，MP的表面疏水性降低，這是由于MP之間形成高分子聚集體，部分屏蔽了蛋白解折疊的影響，或破壞了一些非極性氨基酸[7]。這與Zeta電位絕對值的變化趨勢一致。SUN等[32]的研究表明，MP輕微氧化暴露疏水基團(tuán)，并誘導(dǎo)電離基團(tuán)數(shù)量增加，從而導(dǎo)致凈負(fù)電荷增加，改善保水性。

圖4 不同濃度亞油酸氧化對MP表面疏水性的影響Fig.4 Influence of different concentration linoleic acid oxidation on surface hydrophobicity of MP

2.2.3 二級結(jié)構(gòu)分析(傅里葉紅外光譜)

亞油酸濃度的增加沒有導(dǎo)致紅外譜線發(fā)生明顯的偏移和變化，趨勢基本保持一致。由圖5分析可知，酰胺I帶(1 600～1 700 cm-1)中呈現(xiàn)的二級結(jié)構(gòu)含量變化非常明顯。與對照相比，隨著氧化劑的增加，α-螺旋和β-折疊含量呈現(xiàn)降低趨勢，這意味著MP結(jié)構(gòu)更加松散[20]；而無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)顯著增加，β-轉(zhuǎn)角含量呈現(xiàn)先少量增加后降低趨勢。結(jié)果表明,氧化使得羊肉MP的螺旋、折疊之間相互轉(zhuǎn)化，且是有序向無序的轉(zhuǎn)變。這是因?yàn)棣?螺旋主要由肽鏈內(nèi)的氫鍵穩(wěn)定，β-折疊主要由肽鏈間的氫鍵穩(wěn)定[33]。隨著氧化程度的增加，MP膨脹，分子內(nèi)氫鍵減少[34]，導(dǎo)致α-螺旋的破壞和通過肽鏈間氫鍵穩(wěn)定的β-折疊的形成，繼而使β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)在蛋白發(fā)生解折疊后形成。本試驗(yàn)結(jié)果與SUN等[32]報道的氧化豬肉MP中，α-螺旋變化趨勢一致。

圖5 不同濃度的亞油酸氧化對MP二級結(jié)構(gòu)的影響Fig.5 The effect of different concentrations of linoleic acid oxidation on the secondary structure of MP

2.2.4 內(nèi)源熒光強(qiáng)度

蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的變化可以通過內(nèi)源熒光強(qiáng)度反映。由圖6可知，當(dāng)在295 nm激發(fā)波長時，MP 的色氨酸最大熒光發(fā)射波長(λmax)接近335 nm。隨著亞油酸濃度的增加，熒光強(qiáng)度逐漸下降。這與GAN等[35]的研究結(jié)果類似。色氨酸熒光的損失可能是由于色氨酸殘基被破壞或蛋白質(zhì)的展開將色氨酸暴露在親水性的環(huán)境中，因而導(dǎo)致熒光的淬滅[36]。上述結(jié)果與酪氨酸含量的變化趨勢一致(表1)。因此，亞油酸氧化會降低色氨酸熒光強(qiáng)度，色氨酸殘基暴露于更親水的環(huán)境，從而導(dǎo)致MP構(gòu)象變化。

圖6 不同濃度的亞油酸氧化對MP熒光強(qiáng)度的影響Fig.6 The effect of different concentrations of linoleic acid oxidation on the fluorescence intensity of MP

2.2.5 SDS-PAGE

SDS-PAGE能夠直觀地反映蛋白亞基間發(fā)生的聚集、斷裂或降解等情況。在不含有β-巰基乙醇的情況下(非還原條件，圖7-A)，MP肌球蛋白重鏈(myosin heavy chain，MHC)和肌動蛋白(actin)條帶濃度隨著亞油酸濃度的增加逐漸變淺，同時濃縮膠頂端條帶變深，這說明氧化促進(jìn)MHC和actin間的交聯(lián)和聚集，使得MP分子質(zhì)量過大而不能進(jìn)入濃縮膠。在含有β-巰基乙醇的情況下(還原條件，圖7-B)，大部分消失的MP組分逐漸復(fù)原，表明MP聚合物通過二硫鍵促進(jìn)蛋白質(zhì)交聯(lián)。該結(jié)果與總巰基含量變化趨勢相一致。然而，圖7-B仍然可以觀察到濃縮膠頂端有聚合物堆積，這表明非蛋白質(zhì)二硫鍵也參與了蛋白質(zhì)交聯(lián)。一方面，脂質(zhì)氧化可通過多種途徑引起蛋白質(zhì)交聯(lián)，如色氨酸-色氨酸交聯(lián)和二聚酪氨酸交聯(lián)等[37-38]；另一方面，氧化激活了μ-鈣蛋白酶等內(nèi)源酶，使肌球蛋白重鏈和肌動蛋白降解為分子質(zhì)量更小的蛋白。ZENG等[39]的研究表明蛋白質(zhì)降解是引起MP腫脹的重要因素，從而影響MP的保水性。

3 結(jié)論

本研究采用不同濃度的亞油酸對黑山羊MP進(jìn)行氧化，以探究不同程度的氧化修飾對羊肉MP電荷水平、結(jié)構(gòu)變化的影響。研究證明，MP氧化會導(dǎo)致結(jié)構(gòu)和電荷總量的改變，從而改變MP和水分子間的相互作用[40](圖8)。隨著亞油酸濃度升高，氧化加劇，巰基含量顯著降低，進(jìn)而導(dǎo)致MP二級結(jié)構(gòu)之間發(fā)生轉(zhuǎn)化。其中，α-螺旋結(jié)構(gòu)遭到破壞，無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)形成，MP結(jié)構(gòu)趨向于不穩(wěn)定。MP表面疏水性先升高后降低，水合效應(yīng)增強(qiáng)。氧化后帶電氨基酸含量均有一定程度的下降，組氨酸側(cè)鏈被羰基化，正電荷減少，羰基含量顯著升高，因此MP中的凈負(fù)電荷隨著氧化而增加。低濃度氧化(5 mmol/L)條件下，促進(jìn)因子占據(jù)主導(dǎo)地位，凈負(fù)電荷的升高使蛋白與水的相互作用力增強(qiáng)，有助于改善肉蛋白的保水性；而高濃度氧化(10 mmol/L)條件下，抑制因子占據(jù)主導(dǎo)地位，蛋白結(jié)構(gòu)劇烈變化導(dǎo)致的蛋白質(zhì)交聯(lián)和聚集使得MP的保水性降低。由此可見，亞油酸對黑山羊MP的氧化修飾會導(dǎo)致蛋白表面電荷及深層結(jié)構(gòu)的變化，進(jìn)而影響MP的保水性。