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      傣藥龍血竭對腦缺血大鼠的腦保護作用

      2022-06-01 10:16:16張曉燕蔡宇宇王玉瑤孫海珍
      糧油食品科技 2022年3期
      關鍵詞:血竭腦缺血腦組織

      張曉燕,蔡宇宇,王玉瑤,孫海珍

      (黑龍江中醫(yī)藥大學 藥學院,黑龍江 哈爾濱 150000)

      龍血竭是一種紅色的樹脂,1972年在中國云南省發(fā)現的龍血竭(Longxue Jie)來源于百合目龍舌蘭科劍葉龍血樹 Dracaena cochinchinensis(Lour.)S.C.Chen 的樹脂提取物,亦稱“廣西血竭”,是民族傣藥“龍血竭”的主要來源。其藥理作用有抗炎作用:臨床上龍血竭合用美沙拉嗪能降低TNF-α、IL-6及CRP的水平,從而治療結腸炎[1],龍血竭能抑制肺組織的炎癥程度和膠原過度沉積達到急性炎癥治療[2];活血化瘀作用:研究表明PAI-1 能增加動靜脈血栓形成的風險,龍血素B能有效的阻止uPA/PAI-1復合物的形成,抑制PAI-1的活性,而產生活血化瘀作用[3-4];抗肝/肺纖維化作用:龍血竭抑制 IL-2和上調 IL-5等炎癥因子,降低透明質酸和轉氨酶而產生降低肝/肺纖維化的作用[5-6]。降糖、降脂作用:龍血竭的有效成分總黃酮能降低三酰甘油、總膽固醇,降低 IL-6,提高胰島素產生降糖降脂的作用[7]。目前臨床應用于心血管疾病[8],皮膚科疾病[9-11],婦產科疾病[12-13],消化系統(tǒng)疾病[14-15]和肛腸科疾病[16-17]等。

      腦缺血(Cerebral Ischemia,CI)是微循環(huán)障礙性疾病。臨床顯示,老年人是缺血性腦卒中的易患人群,可能與并發(fā)癥高血壓,高血脂有關[18]。腦卒中具有較高發(fā)病率、致死率、致殘率、復發(fā)率特點[19],中醫(yī)認為,腦和五臟具有密切的聯(lián)系,產生腦卒中病癥時,有害物質可運送到重要器官,導致器官損傷。中藥多成分,多靶點和良反應少[20],因此在臨床生有著重要意義。本文研究中藥龍血竭抗腦缺血藥效作用,為今后龍血竭在心腦血管疾病和神經保護領域奠定基礎。

      1 材料與方法

      1.1 試驗材料

      1.1.1 藥品與試劑

      龍血竭(龍血竭制成粉末,批號:20191106):廣西中醫(yī)藥研究院;腦心通膠囊(規(guī)格0.4 g/粒,批號:1911166):陜西步長制藥有限公司;2%TTC染液(批號 20190925):北京索萊寶科技有限公司;羧甲基纖維素鈉(CMC-Na,批號:20090514):天津市光復精細化工研究所;GSH-Px(批號:A005-1)、SOD(批號:A001-3)、MDA(批號:A003-1)、CAT(批號:A007-1-1)試劑盒:南京建成生物工程研究所;蘇木精-伊紅染液(HE,批號202105):武漢賽維爾生物科技有限公司。

      1.1.2 試驗動物

      Sprague-Dawley大鼠,SPF級,雌雄各半,9周歲,體質量(260±20) g,由黑龍江中醫(yī)藥大學試驗動物中心提供,合格證號:SCXK(黑)2018-007,飼養(yǎng)條件:溫度 25 ℃,濕度 50%,晝夜間隔12 h,自由飲水。

      1.2 儀器與設備

      XW-80A渦旋混合器:上海琪特分析儀器有限公司;CM-36型圓形水浴氮吹儀:北京成萌偉業(yè)科技有限公司;M200 PRO酶標儀:瑞士帝肯集團公司;YD1508R輪轉式病理切片機:德國徠卡公司;TB-P1自動包埋機:上海名元實業(yè)有限公司。

      1.3 試驗方法

      1.3.1 造模

      大鼠術進食供水12 h,以10%水合氯醛溶液腹腔注射大鼠,將四肢和頭部固定在試驗臺上,頸正中剪開皮膚約2 cm切口,鈍性分離,暴露左側頸總動脈(CCA)、頸內動脈(ICA)、頸外動脈(ECA)。分離出CCA,找到動脈Y型分叉,取縫合線于左側CCA遠心端和近心端及ECA處掛線備用。用微動脈夾暫時夾閉 ICA,然后近心端結扎CCA、ECA。在CCA分叉處,近心端約4 mm處傾斜45度剪切口,將線栓(魚線剪成5 cm長的線段,5 mm以下蘸取石蠟)從切口處朝 ICA入顱方向插入,感到有輕微阻力即停止。扎緊,縫合,將魚線尾部露出體外。用燈照射保持肛溫為37 ℃,90 min后將魚線拔出約2 cm并剪去露出體外部分。假手術組僅將大鼠皮膚切開,剝離暴露CCA、ECA及ICA后縫合。

      1.3.2 模型判斷指標

      采用Zea Longa5 級評分標準評價(無神經功能損傷(0分),對側前肢伸展障礙(1分),向手術對側打圈(2分),行走時向手術對側傾倒(3分),意識昏迷(4分)),篩選成功模型(大于0分),未入選大鼠棄之。

      1.3.3 動物分組與給藥

      將有效造模大鼠隨機分為六組,分別為假手術組(Sham)、模型組(Model)、龍血竭組(高(DBH)、中(DBM)、低(DBL)組)和腦心通膠囊組(NXT),每組20只,灌胃劑量按照1 mL/100g計算,灌胃 1次/d,連續(xù)灌胃14 d。

      假手術組(Sham)和模型組(Model)給予生理鹽水。

      龍血竭組:將其分為高(DBH)、中(DBM)、低(DBL)組,是通過取適量龍血竭混懸于0.5%羧甲基纖維素鈉水溶液中,配制成濃度的分別2.16、1.08、0.54 g/kg的混懸液。

      腦心通膠囊組(NXT):規(guī)格為每粒 0.4 g,根據劑量換算,用純水配制成濃度為54 mg/kg的混懸液。

      1.3.4 檢測指標

      1.3.4.1 神經功能評分 在術后第 1、4、7、14 d參照改良神經功能缺損評分(mNSS),神經功能評分在0~18分之間,0分為正常;1~6分為輕度神經功能缺損;7~12分為中度缺損;13~18分為重度缺損。具體評分標準見表1。

      表1 神經功能評分標準Table 1 Nerve function scoring criteria

      1.3.4.2 腦組織含水量(%)及腦梗死體積測定腦組織含水量:各組隨機選取6只大鼠,于第7 d灌胃給藥后進行斷頭取腦,精密稱濕重,后80 ℃干燥至恒重,稱三次取均值。

      腦組織含水量(%)=(腦組織濕重–腦組織干重)/腦組織濕重×100%

      腦梗死體積(%)=(非缺血側半球面積–缺血側半球未梗死面積)/全腦面積×100%

      1.3.4.3 HE染色和 TTC染色 將各組大鼠在術后第 14 d行神經功能缺損評分后,隨機選取 12只,隨機取6只用水合氯醛腹腔麻醉,打開胸腔、暴露心臟,剪開右心耳,自左心尖灌注0.9%氯化鈉溶液,當右心耳流出無血色液體,斷頭取腦,大鼠的腦組織于–20 ℃冰箱中20 min后進行常規(guī)的TTC染色。其余6只進行相同步驟,通過氯化鈉處理后,用4%多聚甲醛從左心尖灌注,當全身僵硬,迅速斷頭,取腦,置于4%多聚甲醛固定液中,進行HE染色。

      1.3.4.4 對血清中的氧化應激水平的影響 將各組大鼠禁食供水12 h,水合氯醛腹腔注射麻醉,經腹主動脈采血,置于10 mLEP管室溫靜置1 h后,4 ℃,4 000 r/min離心10 min,合并同組大鼠血清。采用酶標儀對SOD、MDA、GSH-PX、CAT進行活性檢測。

      1.4 數據分析

      神經功能行為學評分和腦組織含水量采用單因素方差分析(ANOVA),用spss25.0進行計算,結果用均數±標準差(X±S)表示,作圖使用Graphpad Prism9,圖像分析采用Image Pro Plus 6.0,兩組間采用t檢驗,當P<0.05時,表示有顯著性差異,具有統(tǒng)計學意義。

      2 結果與分析

      2.1 試驗結果

      2.1.1 對神經功能的影響

      Sham組大鼠的神經功能從輕微損傷恢復至正常;Model組的神經功能缺損明顯且損傷長期存在。給藥組與Model組相比,給藥組神經功能評分降低趨勢一致,均有顯著改善(P<0.01);第14 d DBH/M組的神經受損恢復最好,且優(yōu)于NXT組,見表2。

      表2 各組大鼠神經功能評分比較Table 2 Comparison of neurological function scores in rats

      2.1.2 對腦組織含水量及腦梗死體積的影響

      相比 Sham 組,Model組大鼠腦組織含水量顯著增加(P<0.01)。給藥組大鼠腦組織含水量較Model組均低,具有顯著的統(tǒng)計學差異(P<0.05或P<0.01),HBH與NXT兩者的含水量基本相同,表明龍血竭可降低腦組織含水量,見表3。

      表3 各組大鼠腦組織含水量Table 3 Percentage of brain water content in rats

      Sham組可見均勻紅色腦組織切片,腦組織切片未見梗死病灶(0.00%±0.00),與Sham組相比,Model組大鼠術側腦組織梗死明顯且體積較大(45.13%±4.05,P<0.01);與 Model組相比,各給藥組白色梗死區(qū)域均相對減少,尤其是 DBH(32.42%±2.57,P<0.01)和 DBM 組(34.84%±3.30,P<0.05)。治療效果優(yōu)于 NXT組。認為龍血竭能夠不同程度的改善腦組織供血不足,降低大鼠缺血側腦梗死體積,見圖1。

      圖1 腦梗死體積Fig. 1 Cerebral infarction volume

      2.1.3 對腦組織學的影響

      Sham組細胞完整,分布均勻,細胞核居中,核仁清晰。Model組中有明顯組織結構異常,結構紊亂,細胞分布不均勻,可見大量細胞核移位及固縮,排列稀疏,血管周圍V-R腔增寬。相比Model組,各給藥組僅皮層少數細胞固縮,且DBH/M組可見異常變化較少,個別神經元固縮,皮層固縮細胞數量減少,小膠質細胞有顯著修復,見圖2。

      圖2 腦組織HE染色切片圖Fig. 2 HE stained sections of brain tissue

      2.1.4 對氧化應激的影響

      與Sham組相比,Model組SOD活力下降顯著(P<0.01),GSH-PX及CAT活力有所下降(P<0.05),MDA含量上升不明顯(P>0.05)。與Model相比,龍血竭組SOD、GSH-PX活力均有顯著提高(P<0.05 或P<0.01),且 DBH組能顯著降低MDA含量(P<0.05)。其中,NXT組降低 MDA含量無統(tǒng)計學差異(P>0.05),提高 CAT、SOD活力作用有顯著差別(P<0.05),見表4。

      表4 對CI大鼠氧化應激水平的影響Table 4 Effects on oxidative stress levels in CI rats

      2.2 試驗分析

      近年來大腦中動脈栓塞模型(MCAO廣泛應用于腦缺血動物模型,因為它與人腦缺血相似,不需要顱骨切除,損傷小。腦缺血再灌注能使腦部造成更大的損傷,更好地模擬腦缺血的行為改變和病理特征[21],由于腦缺血復雜的發(fā)病機制,包括興奮毒性、離子失衡、氧化應激和炎性反應等[22],防治腦缺血的問題也在更深層次的探索當中。腦缺血缺氧后,腦組織代謝異常、腦內氧化應激與自由基的過量產生,細胞膜通透性增加,低氧環(huán)境導致白細胞滲入低氧組織細胞水腫,引起血腦屏障滲漏和水腫,導致腫瘤壞死因子升高,從而引發(fā)細胞炎性因子釋放,損傷腦組織中內皮細胞、神經元、膠質細胞,引起細胞酸中毒,能量代謝障礙等。隨后導致神經細胞的凋亡,缺血再灌注期間神經功能的下降[23-26]。

      當中樞神經系統(tǒng)被破壞,所產生的有害物質超出自生調節(jié),由于腦部對缺血缺氧非常敏感,因此腦組織會產生微循環(huán)障礙,細胞膜通透性增加,引起腦組織含水量增加,細胞形態(tài)發(fā)生改變。HE染色法是組織學、胚胎學、病理學教學與科研中最基本,最廣泛的技術方法[27]。蘇木精染液為堿性,使細胞核內的染色質與胞質內的核酸顯紫藍色;伊紅為酸性染料,使細胞質和細胞外基質中的成分著紅色。由試驗[28]表明,頸動脈狹窄解除能夠降低腦組織含水量,也使血腦屏障的通透性降低含水量。本試驗中龍血竭組降低腦組織含水量,其可能是通過降低血腦屏障通透性而產生的效果。根據文獻[29]可知,給藥組多數神經細胞結構、形態(tài)改變相對較輕,核固縮少,排列整齊,這與本試驗的結果一致,可推斷出龍血竭能改善海馬體組織,從而達到腦保護作用。腦缺血再灌注后引起一系列的氧化應激反應[30-31],并且氧化應激負荷時,自由基產生過量,導致有害產物丙二醛(MDA)等水平升高,病情加重。而SOD、CAT、GSH-Px能清除過氧化物,起到保護細胞膜結構和功能的完整性[32]的作用。由研究[33-34]表明,不同濃度羽扇豆醇,能使血清 SOD和 GSH水平升高,MDA水平降低,從而增加抗氧化物酶活性,有效減少氧化應激損傷,與本試驗結果一致,且DBH組降低MDA水平遠遠優(yōu)于NXT組,表明龍血竭組有較好的腦保護作用。

      嚴重腦缺血能大面積腦梗塞,當達到四分之三梗阻會出現偏癱、偏身感覺障礙和嗜睡等現象[35],TTC是脂溶性光敏感復合物,1958 年開始用來檢測哺乳動物組織的缺血梗塞[36]。正常組織中脫氫酶活性高可與TTC反應顯紅色,缺血組織顯白色。梁萍[37]研究中提到,腦梗死面積減小能恢復腦部神經和記憶,本試驗龍血竭組能減少腦阻塞面積,且治療效果優(yōu)于 NXT組,有顯著性差異(P<0.05),說明也有同樣的腦保護作用。

      3 結論

      龍血竭可降低腦組織含水量和血腦屏障通透性,減輕神經細胞形態(tài)和結構的改變,抑制海馬體組織的損傷,從而達到腦組織的保護作用;提高機體的氧化應激能力,增強人體的防御力和神經血管的結構和功能,改善腦缺血再灌注組織病理損傷;龍血竭還能縮小腦梗死面積,恢復大鼠的記憶和神經。說明龍血竭對大鼠腦缺血疾病有一定的保護作用。

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