馮建海,李麗萍,李勝英
(河池學(xué)院 化學(xué)與生物工程學(xué)院,廣西 宜州 546300)
碳量子點(diǎn)是一種新型的熒光碳納米材料,一般情況下粒徑小于10 nm,因其較低的制備成本、良好的光學(xué)性能、易修飾的表面、良好的生物相容性以及較低的細(xì)胞毒性等優(yōu)點(diǎn),在生物成像、熒光探針和藥物分析等領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用[1-6]。目前研究者建立了多種制備碳量子點(diǎn)的方法[7-13],如電弧放電法、電化學(xué)法、化學(xué)氧化法、超聲處理和微波輻射法、激光刻蝕法和水熱法。其中水熱法被認(rèn)為是操作較簡單又高效的制備方法,具有可控性和調(diào)變性。因此本試驗(yàn)選用水熱法制備碳量子點(diǎn)。
鏈霉素是氨基糖苷類抗生素,具有廣譜抗菌性,目前已經(jīng)廣泛應(yīng)用于畜牧獸醫(yī)農(nóng)業(yè)領(lǐng)域[14-15]。同時(shí)鏈霉素具有耳毒性和腎毒性,因此它在動(dòng)植物性食品中的殘留已經(jīng)引起了國內(nèi)外的廣泛關(guān)注。鏈霉素的檢測方法有液相色譜法[16-17]、酶聯(lián)免疫吸附分析法[18]和色譜-質(zhì)譜串聯(lián)法[19-20],這些儀器分析法準(zhǔn)確度高,但是這些檢測方法操作較復(fù)雜,測定樣品前要進(jìn)行預(yù)處理,而同時(shí)這些方法耗費(fèi)相對(duì)太高,操作過于繁瑣,不能快速進(jìn)行檢測,所以不適于大量樣品的快速檢測。目前以碳量子點(diǎn)為熒光探針測定鏈霉素殘留的研究較少,但近年來以碳量子點(diǎn)作為熒光探針對(duì)藥物進(jìn)行檢測與分析的試驗(yàn)結(jié)果都充分體現(xiàn)了碳量子點(diǎn)在此領(lǐng)域的應(yīng)用前景以及熒光分析方法的可靠性。元曉云等[21]基于鏈霉素使CdTe量子點(diǎn)的熒光發(fā)生變化的特性,建立測定鏈霉素含量的分析方法,并成功用于黃瓜中鏈霉素殘留量的檢測。
本試驗(yàn)在相關(guān)研究的基礎(chǔ)上,以水為溶劑,葡萄糖與半胱氨酸為原料,用水熱法制備有良好熒光效果的碳點(diǎn),利用鏈霉素與碳量子點(diǎn)的配位結(jié)合,改變量子點(diǎn)的熒光強(qiáng)度。根據(jù)熒光強(qiáng)度變化與鏈霉素濃度的關(guān)系,建立測定鏈霉素含量的熒光分析法,并對(duì)測定條件進(jìn)行優(yōu)化,對(duì)提高測定藥品,動(dòng)植物等食品中鏈霉素含量的結(jié)果準(zhǔn)確性、可靠性具有較強(qiáng)的實(shí)際意義。
L-半胱氨酸(生化試劑)、葡萄糖(分析純)、Fe(NO3)3·9H2O(分析純)、鏈霉素(生化試劑):天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所;NaH2PO4·2H2O(分析純)、Na2HPO4·12H2O(分析純):西隴科學(xué)股份有限公司;Mg(NO3)2·6H2O(分析純):天津市化學(xué)試劑三廠;淀粉(藥典級(jí)):九鼎化學(xué)科技有限公司;糊精(分析純):上海麥克林生化科技有限公司;鏈霉素(標(biāo)準(zhǔn)品):阿達(dá)瑪斯試劑有限公司。
熒光分光光度計(jì)(LS-45/55):鉑金埃爾默科技有限公司;紫外可見分光光度計(jì)(Agilent8453):安捷倫科技有限公司;超聲波清洗機(jī)(KQ-2200B):鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;干燥箱(DZF-6050):上海齊欣科學(xué)儀器有限公司;超純水機(jī)(DISCV-I-18):成都艾柯水處理設(shè)備有限公司;三用紫外分析儀(ZF-1):杭州齊威儀器有限公司;低速離心機(jī)(KA-1000C):上海安亭科學(xué)儀器;電子天平(FA1004B):上海越平科學(xué)儀器有限公司。
1.3.1 碳量子點(diǎn)的制備與篩選
將0.5 g葡萄糖和一定量L-半胱氨酸溶于20 mL蒸餾水中,30℃超聲(1 800 W)10 min,溶解分散后轉(zhuǎn)至反應(yīng)釜在烘箱中180℃反應(yīng)12 h,反應(yīng)完后溶液冷卻,用0.22 μm的過濾頭過濾,除去大顆粒物,沉淀離心后,取出上清液,放入透析袋透析24 h,透析期間不斷換蒸餾水。透析后碳點(diǎn)溶液通過分子熒光光譜測定碳量子點(diǎn)溶液的熒光強(qiáng)度。
改變 L-半胱氨酸添加量(0、0.1、0.2、0.3 g)研究其對(duì)碳量子點(diǎn)溶液熒光強(qiáng)度的影響。
1.3.2 激發(fā)波長的選擇
在25℃下,將碳量子點(diǎn)溶液倒入四面透光石英比色皿中,改變激發(fā)波長(360 nm~500 nm),激發(fā)狹縫寬度和發(fā)射狹縫寬度均為10 nm,測定量子點(diǎn)的熒光強(qiáng)度,確定最優(yōu)激發(fā)波長。
1.3.3 碳點(diǎn)用量的選擇
移取一定量的碳量子點(diǎn)(0.5、1.0、1.5 mL)溶液至5 mL容量瓶中,再加入1 mL 1×10-6mol/L的鏈霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液,用超純水定容至刻度,搖勻,靜置25 min后,測定其熒光強(qiáng)度,使稀釋后的碳點(diǎn)溶液熒光強(qiáng)度在儀器量程(≤1 000)的三分之二左右。
1.3.4 溶劑pH值及反應(yīng)時(shí)間
配制NaH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液,配制不同pH值的緩沖液,取1 mL碳量子點(diǎn)和1 mL 1×10-6mol/L的鏈霉素,用緩沖溶液定容到5 mL容量瓶中,搖勻,測定用不同pH值緩沖溶液定容條件下的熒光強(qiáng)度(F),同時(shí)配制空白對(duì)比溶液(即其他條件一樣,只是不加入鏈霉素)測其熒光強(qiáng)度(F0),以 ΔF(ΔF=F/F0)和反應(yīng)時(shí)間繪制曲線,選出熒光強(qiáng)度較穩(wěn)定的pH值并確定最佳反應(yīng)時(shí)間。
1.3.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制
分別移取1mL的碳量子點(diǎn)至5mL容量瓶中,再分別加入1mL不同濃度的鏈霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液(1×10-5mol/L~1×10-8mol/L),用最佳 pH 值的 NaH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液定容至刻度線。另取一個(gè)5 mL容量瓶,不加鏈霉素溶液,只加1 mL碳量子點(diǎn),定容至刻度作為空白溶液,在25℃,選用最優(yōu)激發(fā)波長,測定反應(yīng)體系的熒光強(qiáng)度(F)與空白溶液熒光強(qiáng)度(F0),以 ΔF(ΔF=F/F0)和鏈霉素反應(yīng)濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
1.3.6 共存物的影響
取1 mL碳量子點(diǎn)、1 mL鏈霉素(1×10-6moL/L)置于5 mL容量瓶中,然后對(duì)應(yīng)容量瓶中分別加入1 mL Zn2+、Mg2+、Fe3+、淀粉和糊精溶液(藥品輔料),濃度均為1×10-4moL/L,用最佳pH值的NaH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液定容至刻度,搖勻。另取2個(gè)5 mL的容量瓶,一個(gè)只加入1 mL碳量子點(diǎn)(空白),另一個(gè)加入1 mL碳量子點(diǎn)和1 mL 鏈霉素(1×10-6moL/L),不加共存物,用同樣的NaH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液定容至刻度,搖勻。在25℃下,測定各溶液的熒光強(qiáng)度(F)與空白液熒光強(qiáng)度(F0),考察共存物對(duì)鏈霉素濃度測定的影響。
1.3.7 樣品中鏈霉素的測定
鏈霉素藥品試樣的制備:鏈霉素藥品研碎,稱取一定量樣品溶解于水中,超聲15 min后定容于100 mL容量瓶中,并根據(jù)當(dāng)前濃度逐漸稀釋到指定濃度。
采用測定一系列鏈霉素標(biāo)準(zhǔn)溶液相同的條件,測定樣品的熒光強(qiáng)度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算樣品鏈霉素的含量,同時(shí)在樣品中加入一定體積的鏈霉素標(biāo)準(zhǔn)液,同步測定體系的熒光強(qiáng)度,并計(jì)算樣品加標(biāo)回收率以及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差。根據(jù)下式計(jì)算加標(biāo)回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差。
加標(biāo)回收率/%=[(加標(biāo)試樣測定值-試樣測定值)/加標(biāo)量]×100
式中:RSD為相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差;S為標(biāo)準(zhǔn)偏差;Xi為測量值;為所測數(shù)據(jù)的算術(shù)平均值;n為測量次數(shù)。
采用EXCEL 2010軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)整理和計(jì)算,通過Origin 8.5繪圖。
圖1為不同原料量制備的碳點(diǎn)在最佳激發(fā)波長時(shí)的熒光光譜圖,圖2為用0.5 g葡萄糖和0.2 g L-半胱氨酸混合制備碳點(diǎn)的熒光光譜圖。
圖1 不同原料制備的碳點(diǎn)在最佳激發(fā)波長下的熒光光譜圖Fig.1 Fluorescence spectra of carbon dots prepared from different raw materials at optimum excitation wavelength
圖2 0.5 g葡萄糖和0.2 g L-半胱氨酸用量下制備碳點(diǎn)的熒光光譜圖Fig.2 Fluorescence spectra of carbon dots prepared with 0.5 g glucose and 0.2 g L-cysteine
加入不同量的原料制備不同的碳量子點(diǎn),研究制備條件對(duì)碳量子點(diǎn)熒光強(qiáng)度的影響。由圖1可知,隨著半胱氨酸用量的增加,最佳發(fā)射波長逐漸紅移,但熒光強(qiáng)度先增強(qiáng)后減弱。由圖2可知,隨著激發(fā)波長從380 nm增加到500 nm,熒光碳點(diǎn)溶液的發(fā)射波長熒光強(qiáng)度先升高后降低,峰的位置也隨之紅移,這是由于不同能級(jí)通過不同官能團(tuán)形成的不同“表面態(tài)”和溶液中不同粒徑碳點(diǎn)共存有關(guān),符合文獻(xiàn)[22]報(bào)道的碳量子點(diǎn)具備激發(fā)獨(dú)立性的特點(diǎn)。由圖1和圖2可知,0.5 g葡萄糖和0.2 g L-半胱氨酸用量下混合制備碳點(diǎn)的最佳激發(fā)波長偏長波方向,且其在最佳激發(fā)波長440 nm下具有最高的發(fā)射熒光強(qiáng)度,因此本試驗(yàn)采用0.5 g葡萄糖和0.2 g L-半胱氨酸用量下制備碳量子點(diǎn)并選用其最優(yōu)激發(fā)波長440 nm測定溶液熒光強(qiáng)度。
碳量子點(diǎn)紫外-可見吸收光譜圖見圖3。
圖3 碳量子點(diǎn)紫外-可見吸收光譜圖Fig.3 Ultraviolet-visible absorption spectra of carbon quantum dots
所制備碳量子點(diǎn)在白熾光條件下碳量子點(diǎn)的顏色為淡黃棕色,在黑暗中用365 nm紫外光照射時(shí),碳量子點(diǎn)有熒光效果,顏色為淡藍(lán)色。如圖3所示,在250 nm~270 nm波長之間有一個(gè)吸收峰,說明形成的碳量子點(diǎn)存在共軛結(jié)構(gòu)[23],這是歸于碳量子點(diǎn)sp2區(qū)域的 π-π*躍遷[23-24]。
圖4為碳量子點(diǎn)用量對(duì)熒光強(qiáng)度的影響。
由圖4所知,加入碳點(diǎn)量為0.5 mL時(shí),熒光強(qiáng)度較低;加入碳點(diǎn)量為1 mL時(shí),熒光強(qiáng)度較適中;加入碳點(diǎn)1.5 mL時(shí),熒光強(qiáng)度較強(qiáng),考慮到鏈霉素或其他因素對(duì)碳量子點(diǎn)溶液造成的熒光猝滅或增強(qiáng)現(xiàn)象及儀器的檢測強(qiáng)度范圍(≤1 000),所以在定容至5 mL容量瓶的情況下,加入1 mL的碳量子點(diǎn)較適宜。
圖4 碳量子點(diǎn)用量對(duì)熒光強(qiáng)度的影響Fig.4 Effect of the amount of carbon quantum dots on fluorescence intensity
探討NaH2PO4-Na2HPO4緩沖溶液配制的3個(gè)pH 值(6.9、7.1、7.4)下,加入鏈霉素后碳點(diǎn)熒光強(qiáng)度的穩(wěn)定性,結(jié)果如圖5所示。
圖5 pH值及反應(yīng)時(shí)間對(duì)熒光體系的影響Fig.5 Effect of pH value and reaction time on fluorescence system
鏈霉素是弱堿性有機(jī)物,在偏中性環(huán)境中較穩(wěn)定。從圖5可知,pH值為6.9、7.1、7.4時(shí),溶液在15 min的時(shí)間內(nèi)可以達(dá)到穩(wěn)定狀態(tài),并持續(xù)較長時(shí)間。緩沖溶液pH值為6.9和7.1時(shí),碳點(diǎn)溶液都有稍強(qiáng)的熒光增強(qiáng)或明顯的猝滅效果,而緩沖液pH值為7.4時(shí),熒光強(qiáng)度無明顯熒光增強(qiáng)或猝滅現(xiàn)象而且穩(wěn)定,所以確定后續(xù)試驗(yàn)在pH7.4的緩沖溶液中進(jìn)行。
試驗(yàn)研究在鏈霉素濃度為2×10-7moL/L時(shí),考察濃度均為 2×10-5moL/L 的共存物(Zn2+、Mg2+、Fe3+、淀粉、糊精)對(duì)體系熒光強(qiáng)度的影響,結(jié)果如圖6所示。
由圖 6 可知,Mg2+、Zn2+、Fe3+、淀粉和糊精對(duì)體系熒光強(qiáng)度的影響相對(duì)較小,可忽略其存在。
圖6 共存物質(zhì)對(duì)鏈霉素的熒光強(qiáng)度測定干擾圖Fig.6 Interference of fluorescence intensity determination of streptomycin by coexisting substances
在定容于5 mL容量瓶中碳量子點(diǎn)的用量為1 mL,緩沖溶液的pH值為7.4,熒光測試激發(fā)波長為440 nm檢測條件下,研究測定不同濃度的鏈霉素與碳量子點(diǎn)結(jié)合后,體系熒光強(qiáng)度變化的規(guī)律。以鏈霉素濃度為橫坐標(biāo),相對(duì)熒光強(qiáng)度(ΔF=F/F0)為縱坐標(biāo)做線性曲線,如圖7所示。
圖7 不同濃度的鏈霉素與體系相對(duì)熒光強(qiáng)度變化的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.7 Standard curve of relative fluorescence intensity of streptomycin with different concentrations
在 2×10-9mol/L~2×10-6mol/L,鏈霉素濃度與體系熒光強(qiáng)度F/F0呈現(xiàn)出良好的線性關(guān)系,其線性回歸方程為y=162 219x+0.812 3,相關(guān)系數(shù)為0.997 2。根據(jù)國際純粹與應(yīng)用化學(xué)聯(lián)合會(huì)(International Union of Pure and Applied Chemistry)的規(guī)定以空白的3倍標(biāo)準(zhǔn)偏差除以標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率得到了本試驗(yàn)方法的檢出限為CL=3S/K=8.62×10-10mol/L。
樣品加標(biāo)回收率檢測結(jié)果見表1。
表1 樣品加標(biāo)回收率檢測結(jié)果(n=5)Table 1 Determination results of standard recovery rate(n=5)
將鏈霉素藥品研碎,稱取一定量樣品溶解于水中,超聲15 min后定容于100 mL容量瓶中,并根據(jù)當(dāng)前濃度逐漸稀釋到指定濃度,在上述最佳試驗(yàn)條件下,平行測定5次,同時(shí)做加標(biāo)回收試驗(yàn)?;厥章试?8.30%~101.50%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差較小。所以用碳點(diǎn)法檢測鏈霉素濃度有一定的可行性。
以葡萄糖、L-半胱氨酸為原料,采用水熱法一步合成熒光碳量子點(diǎn),并對(duì)碳量子點(diǎn)對(duì)鏈霉素的熒光現(xiàn)象的試驗(yàn)條件進(jìn)行優(yōu)化,探討共存離子對(duì)鏈霉素?zé)晒猬F(xiàn)象的影響,同時(shí)研究碳點(diǎn)熒光現(xiàn)象與鏈霉素的濃度線性響應(yīng)范圍,并做加標(biāo)回收率試驗(yàn)。試驗(yàn)結(jié)果表明:在0.5 g葡萄糖和0.2 g L-半胱氨酸用量下,以此條件制備的碳量子點(diǎn)作為熒光探針,檢測鏈霉素的最佳環(huán)境:定容于5 mL容量瓶中碳量子點(diǎn)的用量為1 mL,緩沖溶液的pH值為7.4,激發(fā)波長為440 nm下,測得鏈霉素對(duì)熒光碳量子點(diǎn)的熒光強(qiáng)度有較明顯的熒光變化效果且較穩(wěn)定。在此條件下鏈霉素在濃度2×10-9moL/L~2×10-6moL/L,其濃度與相對(duì)熒光強(qiáng)度呈現(xiàn)出良好的線性關(guān)系,線性回歸方程為y=162 219x+0.812 3,相關(guān)系數(shù)為0.997 2。加標(biāo)回收率在98.30%~101.50%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏較小。Zn2+、Mg2+、Fe3+、淀粉、糊精這五種共存物質(zhì)對(duì)體系熒光強(qiáng)度的影響較小,說明利用碳點(diǎn)溶液的熒光現(xiàn)象測定一定低濃度范圍的鏈霉素溶液的方法具有較高的可靠性和參考價(jià)值。